<?xml version="1.0"?>
<feed xmlns="http://www.w3.org/2005/Atom" xml:lang="en">
	<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/api.php?action=feedcontributions&amp;feedformat=atom&amp;user=Lev+Jo%C5%A1t</id>
	<title>Wiki FKKT - User contributions [en]</title>
	<link rel="self" type="application/atom+xml" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/api.php?action=feedcontributions&amp;feedformat=atom&amp;user=Lev+Jo%C5%A1t"/>
	<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Special:Contributions/Lev_Jo%C5%A1t"/>
	<updated>2026-04-21T09:54:11Z</updated>
	<subtitle>User contributions</subtitle>
	<generator>MediaWiki 1.39.3</generator>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_pogosto_uporabljenih_plazmidov_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24421</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov pogosto uporabljenih plazmidov v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_pogosto_uporabljenih_plazmidov_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24421"/>
		<updated>2025-04-15T17:58:53Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek: [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/ Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids]&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Uvod ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V sintezni biologiji so plazmidi nepogrešljivo orodje raziskav, saj njihova uporaba omogoča lažje spreminjanje genov v primerjavi z genskim inženiringom. Med njihovim podvojevanjem lahko pride do napak, kar vodi v nastanek ponovitev, imenovanih multimeri. Ti se sčasoma pričnejo kopičiti in to lahko vpliva na različna sintetična vezja, sploh tista, ki vključujejo encime za urejanje DNA.  &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Vpliv multimernih plazmidov na stabilnost ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Čeprav je sam nastanek multimerov že proučen, še vedno ni povsem jasno, v kolikšni meri se tvorijo pri rutinski uporabi pogostih laboratorijskih sevov in plazmidov, kar večkrat oteži eksperimente. Pri multimernih plazmidih se več enakih kopij DNA poveže skupaj v eno večjo molekulo. Takšni plazmidi vsebujejo več zaporednih, skoraj identičnih ponovitev istega gena. Ko pride do mutacije (naključne spremembe) v eni od teh ponovitev, lahko ostale kopije še vedno ostanejo nespremenjene (t.i. divji tip, gre torej za nemutirano različico). Ker so vse te ponovitve še vedno fizično povezane skupaj v isti molekuli, se mutirana in nemutirana različica dedujeta skupaj. To povzroči spremembo v funkciji celotnega plazmida, ker bo nosil različne verzije istega zaporedja, kar vpliva na to, kako se bo obnašal pod določenimi pogoji, kot npr. pri selekciji z antibiotiki. Sintetična genska vezja pogosto uporabljajo encime za urejanje DNA, recimo rekombinaze, ki režejo na specifičnih mestih. Če gre za multimerni plazmid (več ponovitev na isti molekuli DNA), lahko rekombinaza zareže na različnih mestih, ali znotraj ene od ponovitev, kjer spremeni zaporedje in s tem povzroči dodatno nestabilnost, ali med različnimi ponovitvami, kjer povzroči preureditev oz. izgubo dela plazmida. To povečuje stopnjo nepredvidljivosti v eksperimentih, saj je težko natančno določiti, kakšne spremembe bodo nastale in kakšen bo njihov vpliv na celotno gensko vezje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Dejavniki, ki vplivajo na nastanek multimerov ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Na pogostost nastanka multimerov vplivajo dejavniki, ki so zapisani bodisi na samih plazmidih bodisi na kromosomu. Med najvplivnejšimi je plazmidni replikon, genetski element, ki uravnava hitrost in čas replikacije plazmida. Samo število kopij se lahko giblje od ena do več sto in se lahko kvantificira z metodami, kot je qPCR. Izvor replikacije in z njim povezani regulacijski elementi replikona določajo, ali se plazmidi v hčerinske celice razdelijo naključno (npr. ColE1) ali na reguliran način (npr. plazmidi tipa F). Poleg tega lahko na nastanek multimerov vpliva tudi kromosomsko ozadje bakterijskega seva. Mehanizem ločevanja multimerov med plazmidno replikacijo je odvisen od različnih kromosomskih rekombinaz, zlasti od RecA. Encim RecA popravlja prelome dvoverižne DNA preko homologe rekombinacije. Najprej se veže na enoverižno DNA in se nato spari s homolognim delom dvoverižne. Pri tem sodelujeta tudi protein RecF in pa kompleks RecBCD, ki izpostavi ssDNA in vključuje aktivnost helikaze in eksonukleaze. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Zaznavanje multimerov ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Zaznavanje pogostosti plazmidnih multimerov je težaven proces. Velikokrat se je ugotavljal z gelsko elektroforezo, vendar pa je bila interpretacija težavna, saj se je celo pri preverjenih vzorcih enojnih plazmidov na gelu videlo več lis. Linearni, krožni, superzviti in prekinjeni plazmidi namreč potujejo skozi agarozni gel z različnimi hitrostmi. Zaradi večjih velikosti multimeri potujejo počasneje kot monomeri, vendar jih je pri izolacijah potrebno ločiti od drugih oblik plazmidov. Poizkusi razgradnje z restrikcijo, ki se pogosto uporabljajo za preverjanje identitete in sekvence plazmidov, ne omogočajo natančnega določanja celotne dolžine. Po razgradnji multimerov velikokrat nastanejo fragmenti enake dolžine kot pri enojnih plazmidih in zato z gelsko elektroforezo ne moremo potrditi njihove prisotnosti. &lt;br /&gt;
Težko jih je zaznati tudi s Sangerjevim sekvenciranjem, ki v teoriji zazna različice, ki izhajajo iz napak podvojevanja plazmidov. Take strukturne oblike se lahko pojavijo pri nastanku multimernih plazmidov (več zaporednih kopij plazmida v eni molekuli DNA), a Sangerjeva metoda zazna predvsem prevladujočo sekvenco, zato mora biti tarčna strukturna oblika v vzorcu prisotna v visoki koncentraciji, drugače bo sekvenčni signal prekril prevladujoč &amp;quot;normalen&amp;quot; signal. Poleg tega mora biti začetni oligonukleotid, ki se uporablja pri sekvenciranju, pozicioniran zelo blizu mesta, kjer je nastala ta različica. Novejše metode, kot je sekvenciranje s kratkimi odčitki, lahko sicer zaznajo oblike, ki niso prevladujoče v vzorcu, saj omogočajo globjo pokritost vzorca (veliko število odčitkov iste regije), a ponavljajoča se zaporedja, kot je multimerni plazmid težko razločijo. To pomeni, da če ni dodatnih mutacij, se kratki odčitki ne morejo sestaviti v jasne informacije o zaporednih ponovitvah plazmidne DNA. Šele z razvojem tehnologij sekvenciranja dolgih odčitkov, kot je nanoporno sekvenciranje, se lahko preseže omejitve elektroforeze, Sangerjevega in sekvenciranja kratkih odčitkov. S posekvenciranjem celotnih plazmidov se multimeri neposredno pokažejo v histogramih dolžin in čeprav ima nanoporni pristop visoko stopnjo napake na posamezni odčitek, to ne vpliva na zaznavanje multimerov, ker je predvsem pomembna ocena, ali se dolžine odčitkov združujejo okoli celoštevilskih večkratnikov pričakovane dolžine plazmida.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Nastanek multimerov v sevih, pogosto uporabljenih v sintezni biologiji ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V študiji so preučili nastajanje multimernih plazmidov v dveh pogostih sevih E. coli, in sicer v sevu JM109, ki se uporablja za kloniranje, in v sevu divjega tipa MG1655. Preverili so njihov nastanek v štirih pogostih plazmidih, ki temeljijo na BioBrick vektorjih, in to v pColE1 (BioBrick pSB1C3), p15A (BioBrick pSB3A3), pSC101 (BioBrick pSB4A3) in bakterijskemu umetnemu kromosomu (BAC, izpeljanem iz F plazmida). Z uporabo nanopornega sekvenciranja so ugotovili, da se multimeri ne povečujejo z večanjem števila kopij plazmidov v sevu JM109, medtem ko se v večji meri pojavljajo v sevu MG1655, pri čemer delež plazmidov v obliki multimerov narašča z večanjem števila kopij plazmida in s številom prenesenih kultur (z dodatnim pasiranjem bakterij). Nasprotno pa lahko transformacija multimerov v sev JM109 povzroči nastanek čistih sevov, ki ne vsebujejo nobenih posameznih plazmidov. Prav tako so ustvarili sev MG1655 z izbrisanim genom recA (ΔrecA), ker so predpostavili, da bi delecija lahko preprečila nastanek multimerov.  Sev naj bi pokazal zelo majhno tvorbo multimerov, podobno kot sev JM109.&lt;br /&gt;
Želeli so tudi kvantitativno določiti dinamiko nastanka multimerov skozi tipičen »življenjski cikel« uporabe. V ta namen so testirali plazmide v treh točkah: pred transformacijo, po transformaciji in po rasti iz glicerolne zaloge. To je vključevalo pomnoževanje v omenjenih sevih JM109 in MG1655. Da bi upoštevali morebitne razlike, ki pridejo od različnih izvorov replikacij, so uporabili plazmide z različnim številom kopij. Pri  bakterijskem umetnem kromosomu BAC (~1 kopija), pri pSC101 (~5 kopij), pri p15A (~10–12 kopij) in pri ColE1 (~500–700 kopij).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Transformacija v sev JM109 ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Za ugotovitev porazdelitve multimerov so uporabili nanoporno sekvenciranje. Pričeli so z izolacijo enojnih plazmidov. V ta namen so plazmide najprej ločili glede na velikost z elektroforezo in nato iz gela izrezali ustrezne lise. Da bi pridobili zadostno količino so morali izvesti transformacijo v bakterije JM109 in izolirati DNA plazmidov. Ti t.i. izvorni vzorci so predstavljali stanje plazmidov, kot bi jih prejeli iz zunanjega laboratorija. Da bi zares preverili, ali so plazmidi enojni, so jih analizirali z nanopornim sekvenciranjem in ugotovili, da je v njih le do ~0,3 % dimerov. Za določitev stabilnosti enojnih plazmidov v sevu JM109, so po transformaciji za vsakega izbrali po eno kolonijo, ki so jo nato gojili čez noč v prisotnosti ustreznega antibiotika za selekcijo. Uporabili so dva različna, in sicer ampicilin za plazmide z nizkim in srednjim številom kopij in kloramfenikol za BAC in plazmide z visokim številom kopij. Iz transformirane kulture so nato neposredno izolirali plazmidno DNA, ki je predstavljala vzorce po transformaciji. Prav tako so kulturo shranili kot glicerolno zalogo in jo ponovno gojili čez noč. DNA izolirana iz te kulture, (po glicerolu) je predstavljala stanje, ki se običajno uporablja za eksperimente s sevom, ki vsebuje plazmid. Za vzorce »po transformaciji« in »po glicerolu« so ugotovili, da imajo manj kot ~0,6 % celotne DNA v obliki dimerov, višjih multimernih oblik z več kot dvema ponovitvama pa niso opazili.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Transformacija v sev MG1655D ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Izvorne vzorce so transformirali še v MG1655D, da bi raziskali dinamiko multimernih plazmidov v sevu divjega tipa. Tako kot pri JM109 so izolirali DNA tako iz začetne po transformaciji kot tudi iz ponovno vzgojene kulture iz glicerolne zaloge. Po transformaciji je bilo v BAC in plazmidih z nizkim številom kopij manj kot ~0,4 % dimerov. Pri p15A je bilo ~2 % dimerov, pri ColE1 pa 20 % dimerov, 1,3 % trimerov in 1,7 % tetramerov, kar se sklada s pričakovanji. V vzorcih po glicerolu se je delež multimernih plazmidov na splošno povečal, pri čemer je delež dimerov narasel na 6 % pri p15A in 25 % pri ColE1. Pri slednjem so opazili celo heksamere, a le v nizki frekvenci. V nadaljevanju so preverili, ali je možno nastajanje multimerov v sevu MG1655 popolnoma preprečiti. Zato so odstranili gen recA, saj je protein RecA, ki v JM109 ni prisoten, nujno potreben za nastanek multimerov. V sevu so potem opazili, da je bil delež dimerov v vseh pogojih manjši (med ~0,4–0,8 %), višjih multimernih oblik pa sploh niso zaznali, podobno kot v sevu JM109.&lt;br /&gt;
Na koncu so testirali še, ali lahko ponovna transformacija multimernih plazmidov v sev JM109 poveča delež multimernih plazmidov celo v klonirnem sevu. V ta namen so vzorce MG1655, pridobljene neposredno po transformaciji, ponovno transformirali v JM109 in izolirali DNA iz kolonij za vsak tip plazmida. Pri plazmidu z visokim številom kopij so ugotovili, da so pri eni od treh kolonij skoraj vsi plazmidi v obliki dimerov. To kaže, da je dimerska oblika v sevu JM109 stabilna.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Zaključek ==&lt;br /&gt;
Preučili so nastanek multimernih oblik plazmidov z nanopornim sekvenciranjem pri sevih JM109 in MG1655. Pokazali so, da je v klonirnem sevu JM109 nastanek multimerov minimalen, medtem ko v sevu MG1655 močno narašča s številom kopij plazmida in s številom prenesenih kultur. Z izbrisom gena recA so uspešno zmanjšali nastanek multimerov in potrdili, da transformacija multimernih plazmidov vodi v visoko multimerne kulture. Raziskava opozarja na pomen poznavanja plazmidnih sekvenc za pravilno interpretacijo eksperimentalnih podatkov in poudarja, da je, še posebej pri nemodelnih organizmih, pomembno preveriti možnost nastanka multimerov &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Literatura ==&lt;br /&gt;
[1]	E. Vaisbourd, A. Bren, U. Alon, D. S. Glass: Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids. ACS Synth. Biol. 2025.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_pogosto_uporabljenih_plazmidov_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24420</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov pogosto uporabljenih plazmidov v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_pogosto_uporabljenih_plazmidov_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24420"/>
		<updated>2025-04-15T17:46:24Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek: [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/ Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids]&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Uvod ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V sintezni biologiji so plazmidi nepogrešljivo orodje raziskav, saj njihova uporaba omogoča lažje spreminjanje genov v primerjavi z genskim inženiringom. Med njihovim podvojevanjem lahko pride do napak, kar vodi v nastanek ponovitev, imenovanih multimeri. Ti se sčasoma pričnejo kopičiti in to lahko vpliva na različna sintetična vezja, sploh tista, ki vključujejo encime za urejanje DNA.  &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Vpliv multimernih plazmidov na stabilnost in zanesljivost vezij ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Čeprav je sam nastanek multimerov že proučen, še vedno ni povsem jasno, v kolikšni meri se tvorijo pri rutinski uporabi pogostih laboratorijskih sevov in plazmidov, kar večkrat oteži eksperimente. Pri multimernih plazmidih se več enakih kopij DNA poveže skupaj v eno večjo molekulo. Takšni plazmidi vsebujejo več zaporednih, skoraj identičnih ponovitev istega gena. Ko pride do mutacije (naključne spremembe) v eni od teh ponovitev, lahko ostale kopije še vedno ostanejo nespremenjene (t.i. divji tip, gre torej za nemutirano različico). Ker so vse te ponovitve še vedno fizično povezane skupaj v isti molekuli, se mutirana in nemutirana različica dedujeta skupaj. To povzroči spremembo v funkciji celotnega plazmida, ker bo nosil različne verzije istega zaporedja, kar vpliva na to, kako se bo obnašal pod določenimi pogoji, kot npr. pri selekciji z antibiotiki. Sintetična genska vezja pogosto uporabljajo encime za urejanje DNA, recimo rekombinaze, ki režejo na specifičnih mestih. Če gre za multimerni plazmid (več ponovitev na isti molekuli DNA), lahko rekombinaza zareže na različnih mestih, ali znotraj ene od ponovitev, kjer spremeni zaporedje in s tem povzroči dodatno nestabilnost, ali med različnimi ponovitvami, kjer povzroči preureditev oz. izgubo dela plazmida. To povečuje stopnjo nepredvidljivosti v eksperimentih, saj je težko natančno določiti, kakšne spremembe bodo nastale in kakšen bo njihov vpliv na celotno gensko vezje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Dejavniki, ki vplivajo na nastanek multimerov ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Na pogostost nastanka multimerov vplivajo dejavniki, ki so zapisani bodisi na samih plazmidih bodisi na kromosomu. Med najvplivnejšimi je plazmidni replikon, genetski element, ki uravnava hitrost in čas replikacije plazmida. Samo število kopij se lahko giblje od ena do več sto in se lahko kvantificira z metodami, kot je qPCR. Izvor replikacije in z njim povezani regulacijski elementi replikona določajo, ali se plazmidi v hčerinske celice razdelijo naključno (npr. ColE1) ali na reguliran način (npr. plazmidi tipa F). Poleg tega lahko na nastanek multimerov vpliva tudi kromosomsko ozadje bakterijskega seva. Mehanizem ločevanja multimerov med plazmidno replikacijo je odvisen od različnih kromosomskih rekombinaz, zlasti od RecA. Encim RecA popravlja prelome dvoverižne DNA preko homologe rekombinacije. Najprej se veže na enoverižno DNA in se nato spari s homolognim delom dvoverižne. Pri tem sodelujeta tudi protein RecF in pa kompleks RecBCD, ki izpostavi ssDNA in vključuje aktivnost helikaze in eksonukleaze. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Zaznavanje multimerov ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Zaznavanje pogostosti plazmidnih multimerov je težaven proces. Velikokrat se je ugotavljal z gelsko elektroforezo, vendar pa je bila interpretacija težavna, saj se je celo pri preverjenih vzorcih enojnih plazmidov na gelu videlo več lis. Linearni, krožni, superzviti in prekinjeni plazmidi namreč potujejo skozi agarozni gel z različnimi hitrostmi. Zaradi večjih velikosti multimeri potujejo počasneje kot monomeri, vendar jih je pri izolacijah potrebno ločiti od drugih oblik plazmidov. Poizkusi razgradnje z restrikcijo, ki se pogosto uporabljajo za preverjanje identitete in sekvence plazmidov, ne omogočajo natančnega določanja celotne dolžine. Po razgradnji multimerov velikokrat nastanejo fragmenti enake dolžine kot pri enojnih plazmidih in zato z gelsko elektroforezo ne moremo potrditi njihove prisotnosti. &lt;br /&gt;
Težko jih je zaznati tudi s Sangerjevim sekvenciranjem, ki v teoriji zazna različice, ki izhajajo iz napak podvojevanja plazmidov. Take strukturne oblike se lahko pojavijo pri nastanku multimernih plazmidov (več zaporednih kopij plazmida v eni molekuli DNA), a Sangerjeva metoda zazna predvsem prevladujočo sekvenco, zato mora biti tarčna strukturna oblika v vzorcu prisotna v visoki koncentraciji, drugače bo sekvenčni signal prekril prevladujoč &amp;quot;normalen&amp;quot; signal. Poleg tega mora biti začetni oligonukleotid, ki se uporablja pri sekvenciranju, pozicioniran zelo blizu mesta, kjer je nastala ta različica. Novejše metode, kot je sekvenciranje s kratkimi odčitki, lahko sicer zaznajo oblike, ki niso prevladujoče v vzorcu, saj omogočajo globjo pokritost vzorca (veliko število odčitkov iste regije), a ponavljajoča se zaporedja, kot je multimerni plazmid težko razločijo. To pomeni, da če ni dodatnih mutacij, se kratki odčitki ne morejo sestaviti v jasne informacije o zaporednih ponovitvah plazmidne DNA. Šele z razvojem tehnologij sekvenciranja dolgih odčitkov, kot je nanoporno sekvenciranje, se lahko preseže omejitve elektroforeze, Sangerjevega in sekvenciranja kratkih odčitkov. S posekvenciranjem celotnih plazmidov se multimeri neposredno pokažejo v histogramih dolžin in čeprav ima nanoporni pristop visoko stopnjo napake na posamezni odčitek, to ne vpliva na zaznavanje multimerov, ker je predvsem pomembna ocena, ali se dolžine odčitkov združujejo okoli celoštevilskih večkratnikov pričakovane dolžine plazmida.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Nastanek multimerov v sevih, pogosto uporabljenih v sintezni biologiji ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V študiji so preučili nastajanje multimernih plazmidov v dveh pogostih sevih E. coli, in sicer v sevu JM109, ki se uporablja za kloniranje, in v sevu divjega tipa MG1655. Preverili so njihov nastanek v štirih pogostih plazmidih, ki temeljijo na BioBrick vektorjih, in to v pColE1 (BioBrick pSB1C3), p15A (BioBrick pSB3A3), pSC101 (BioBrick pSB4A3) in bakterijskemu umetnemu kromosomu (BAC, izpeljanem iz F plazmida). Z uporabo nanopornega sekvenciranja so ugotovili, da se multimeri ne povečujejo z večanjem števila kopij plazmidov v sevu JM109, medtem ko se v večji meri pojavljajo v sevu MG1655, pri čemer delež plazmidov v obliki multimerov narašča z večanjem števila kopij plazmida in s številom prenesenih kultur (z dodatnim pasiranjem bakterij). Nasprotno pa lahko transformacija multimerov v sev JM109 povzroči nastanek čistih sevov, ki ne vsebujejo nobenih posameznih plazmidov. Prav tako so ustvarili sev MG1655 z izbrisanim genom recA (ΔrecA), ker so predpostavili, da bi delecija lahko preprečila nastanek multimerov.  Sev naj bi pokazal zelo majhno tvorbo multimerov, podobno kot sev JM109.&lt;br /&gt;
Želeli so tudi kvantitativno določiti dinamiko nastanka multimerov skozi tipičen »življenjski cikel« uporabe. V ta namen so testirali plazmide v treh točkah: pred transformacijo, po transformaciji in po rasti iz glicerolne zaloge. To je vključevalo pomnoževanje v omenjenih sevih JM109 in MG1655. Da bi upoštevali morebitne razlike, ki pridejo od različnih izvorov replikacij, so uporabili plazmide z različnim številom kopij. Pri  bakterijskem umetnem kromosomu BAC (~1 kopija), pri pSC101 (~5 kopij), pri p15A (~10–12 kopij) in pri ColE1 (~500–700 kopij).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Transformacija v sev JM109 ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Za ugotovitev porazdelitve multimerov so uporabili nanoporno sekvenciranje. Pričeli so z izolacijo enojnih plazmidov. V ta namen so plazmide najprej ločili glede na velikost z elektroforezo in nato iz gela izrezali ustrezne lise. Da bi pridobili zadostno količino so morali izvesti transformacijo v bakterije JM109 in izolirati DNA plazmidov. Ti t.i. izvorni vzorci so predstavljali stanje plazmidov, kot bi jih prejeli iz zunanjega laboratorija. Da bi zares preverili, ali so plazmidi enojni, so jih analizirali z nanopornim sekvenciranjem in ugotovili, da je v njih le do ~0,3 % dimerov. Za določitev stabilnosti enojnih plazmidov v sevu JM109, so po transformaciji za vsakega izbrali po eno kolonijo, ki so jo nato gojili čez noč v prisotnosti ustreznega antibiotika za selekcijo. Uporabili so dva različna, in sicer ampicilin za plazmide z nizkim in srednjim številom kopij in kloramfenikol za BAC in plazmide z visokim številom kopij. Iz transformirane kulture so nato neposredno izolirali plazmidno DNA, ki je predstavljala vzorce po transformaciji. Prav tako so kulturo shranili kot glicerolno zalogo in jo ponovno gojili čez noč. DNA izolirana iz te kulture, (po glicerolu) je predstavljala stanje, ki se običajno uporablja za eksperimente s sevom, ki vsebuje plazmid. Za vzorce »po transformaciji« in »po glicerolu« so ugotovili, da imajo manj kot ~0,6 % celotne DNA v obliki dimerov, višjih multimernih oblik z več kot dvema ponovitvama pa niso opazili.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Transformacija v sev MG1655D ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Izvorne vzorce so transformirali še v MG1655D, da bi raziskali dinamiko multimernih plazmidov v sevu divjega tipa. Tako kot pri JM109 so izolirali DNA tako iz začetne po transformaciji kot tudi iz ponovno vzgojene kulture iz glicerolne zaloge. Po transformaciji je bilo v BAC in plazmidih z nizkim številom kopij manj kot ~0,4 % dimerov. Pri p15A je bilo ~2 % dimerov, pri ColE1 pa 20 % dimerov, 1,3 % trimerov in 1,7 % tetramerov, kar se sklada s pričakovanji. V vzorcih po glicerolu se je delež multimernih plazmidov na splošno povečal, pri čemer je delež dimerov narasel na 6 % pri p15A in 25 % pri ColE1. Pri slednjem so opazili celo heksamere, a le v nizki frekvenci. V nadaljevanju so preverili, ali je možno nastajanje multimerov v sevu MG1655 popolnoma preprečiti. Zato so odstranili gen recA, saj je protein RecA, ki v JM109 ni prisoten, nujno potreben za nastanek multimerov. V sevu so potem opazili, da je bil delež dimerov v vseh pogojih manjši (med ~0,4–0,8 %), višjih multimernih oblik pa sploh niso zaznali, podobno kot v sevu JM109.&lt;br /&gt;
Na koncu so testirali še, ali lahko ponovna transformacija multimernih plazmidov v sev JM109 poveča delež multimernih plazmidov celo v klonirnem sevu. V ta namen so vzorce MG1655, pridobljene neposredno po transformaciji, ponovno transformirali v JM109 in izolirali DNA iz kolonij za vsak tip plazmida. Pri plazmidu z visokim številom kopij so ugotovili, da so pri eni od treh kolonij skoraj vsi plazmidi v obliki dimerov. To kaže, da je dimerska oblika v sevu JM109 stabilna.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Zaključek ==&lt;br /&gt;
Preučili so nastanek multimernih oblik plazmidov z nanopornim sekvenciranjem pri sevih JM109 in MG1655. Pokazali so, da je v klonirnem sevu JM109 nastanek multimerov minimalen, medtem ko v sevu MG1655 močno narašča s številom kopij plazmida in s številom prenesenih kultur. Z izbrisom gena recA so uspešno zmanjšali nastanek multimerov in potrdili, da transformacija multimernih plazmidov vodi v visoko multimerne kulture. Raziskava opozarja na pomen poznavanja plazmidnih sekvenc za pravilno interpretacijo eksperimentalnih podatkov in poudarja, da je, še posebej pri nemodelnih organizmih, pomembno preveriti možnost nastanka multimerov &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Literatura ==&lt;br /&gt;
[1]	E. Vaisbourd, A. Bren, U. Alon, D. S. Glass: Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids. ACS Synth. Biol. 2025.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_pogosto_uporabljenih_plazmidov_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24419</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov pogosto uporabljenih plazmidov v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_pogosto_uporabljenih_plazmidov_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24419"/>
		<updated>2025-04-15T17:34:52Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: Created page with &amp;quot;Izhodiščni članek: [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/ Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids]&amp;quot;&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek: [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/ Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids]&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24418</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24418"/>
		<updated>2025-04-15T17:30:52Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje_nastanka_multimerov_pogosto_uporabljenih_plazmidov_v_sintezni_biologiji Preprečevanje nastanka multimerov pogosto uporabljenih plazmidov v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Priprava_Nicotiane_benthamiane_za_proizvodnjo_krisoeriola_z_uporabo_tehnik_sintezne_biologije Priprava &#039;&#039;Nicotiane benthamiane&#039;&#039; za proizvodnjo krisoeriola z uporabo tehnik sintezne biologije] (Nika Frelih)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PET_TWINS:_Praktična_uporaba_PETaze_za_učinkovitejše_recikliranje_plastike PET TWINS: Praktična uporaba PETaze za učinkovitejše recikliranje plastike] (Tina Urh)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/CAU-China:_Nodulska_tovarna_DHA_in_EPA CAU-China: Nodulska tovarna DHA in EPA] (Luka Fink)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24417</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24417"/>
		<updated>2025-04-15T17:23:40Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji Preprečevanje nastanka multimerov pogosto uporabljenih plazmidov v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Priprava_Nicotiane_benthamiane_za_proizvodnjo_krisoeriola_z_uporabo_tehnik_sintezne_biologije Priprava &#039;&#039;Nicotiane benthamiane&#039;&#039; za proizvodnjo krisoeriola z uporabo tehnik sintezne biologije] (Nika Frelih)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PET_TWINS:_Praktična_uporaba_PETaze_za_učinkovitejše_recikliranje_plastike PET TWINS: Praktična uporaba PETaze za učinkovitejše recikliranje plastike] (Tina Urh)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/CAU-China:_Nodulska_tovarna_DHA_in_EPA CAU-China: Nodulska tovarna DHA in EPA] (Luka Fink)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24416</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24416"/>
		<updated>2025-04-15T17:23:16Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji Preprečevanje nastanka multimerov pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Priprava_Nicotiane_benthamiane_za_proizvodnjo_krisoeriola_z_uporabo_tehnik_sintezne_biologije Priprava &#039;&#039;Nicotiane benthamiane&#039;&#039; za proizvodnjo krisoeriola z uporabo tehnik sintezne biologije] (Nika Frelih)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PET_TWINS:_Praktična_uporaba_PETaze_za_učinkovitejše_recikliranje_plastike PET TWINS: Praktična uporaba PETaze za učinkovitejše recikliranje plastike] (Tina Urh)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/CAU-China:_Nodulska_tovarna_DHA_in_EPA CAU-China: Nodulska tovarna DHA in EPA] (Luka Fink)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24399</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24399"/>
		<updated>2025-04-15T04:34:31Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== UVOD ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V sintezni biologiji so plazmidi nepogrešljivo orodje raziskav, saj njihova uporaba omogoča lažje spreminjanje genov v primerjavi z genskim inženiringom. Med njihovim podvojevanjem lahko pride do napak, kar vodi v nastanek ponovitev, imenovanih multimeri. Ti se sčasoma pričnejo kopičiti in to lahko vpliva na različna sintetična vezja, sploh tista, ki vključujejo encime za urejanje DNA. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== VPLIV MULTIMERNIH PLAZMIDOV NA STABILNOST IN ZANESLJIVOST VEZIJ ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Čeprav je sam nastanek multimerov že proučen, še vedno ni povsem jasno, v kolikšni meri se tvorijo pri rutinski uporabi pogostih laboratorijskih sevov in plazmidov, kar večkrat oteži eksperimente. Pri multimernih plazmidih se več enakih kopij DNA poveže skupaj v eno večjo molekulo. Takšni plazmidi vsebujejo več zaporednih, skoraj identičnih ponovitev istega gena. Ko pride do mutacije (naključne spremembe) v eni od teh ponovitev, lahko ostale kopije še vedno ostanejo nespremenjene (t.i. divji tip, gre torej za nemutirano različico). Ker so vse te ponovitve še vedno fizično povezane skupaj v isti molekuli, se mutirana in nemutirana različica dedujeta skupaj. To povzroči spremembo v funkciji celotnega plazmida, ker bo nosil različne verzije istega zaporedja, kar vpliva na to, kako se bo obnašal pod določenimi pogoji, kot npr. pri selekciji z antibiotiki. Sintetična genska vezja pogosto uporabljajo encime za urejanje DNA, recimo rekombinaze, ki režejo na specifičnih mestih. Če gre za multimerni plazmid (več ponovitev na isti molekuli DNA), lahko rekombinaza zareže na različnih mestih, ali znotraj ene od ponovitev, kjer spremeni zaporedje in s tem povzroči dodatno nestabilnost, ali med različnimi ponovitvami, kjer povzroči preureditev oz. izgubo dela plazmida. To povečuje stopnjo nepredvidljivosti v eksperimentih, saj je težko natančno določiti, kakšne spremembe bodo nastale in kakšen bo njihov vpliv na celotno gensko vezje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== DEJAVNIKI, KI VPLIVAJO NA NASTANEK MULTIMEROV ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Na pogostost nastanka multimerov vplivajo dejavniki, ki so zapisani bodisi na samih plazmidih bodisi na kromosomu. Med najvplivnejšimi je plazmidni replikon, genetski element, ki uravnava hitrost in čas replikacije plazmida. Samo število kopij se lahko giblje od ena do več sto in se lahko kvantificira z metodami, kot je qPCR. Izvor replikacije in z njim povezani regulacijski elementi replikona določajo, ali se plazmidi v hčerinske celice razdelijo naključno (npr. ColE1) ali na reguliran način (npr. plazmidi tipa F). Poleg tega lahko na nastanek multimerov vpliva tudi kromosomsko ozadje bakterijskega seva. Mehanizem ločevanja multimerov med plazmidno replikacijo je odvisen od različnih kromosomskih rekombinaz, zlasti od RecA. Encim RecA popravlja prelome dvoverižne DNA preko homologe rekombinacije. Najprej se veže na enoverižno DNA in se nato spari s homolognim delom dvoverižne. Pri tem sodelujeta tudi protein RecF in pa kompleks RecBCD, ki izpostavi ssDNA in vključuje aktivnost helikaze in eksonukleaze.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== ZAZNAVANJE MULTIMEROV ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Zaznavanje pogostosti plazmidnih multimerov je težaven proces. Velikokrat se je ugotavljal z gelsko elektroforezo, vendar pa je bila interpretacija težavna, saj se je celo pri preverjenih vzorcih enojnih plazmidov na gelu videlo več lis. Linearni, krožni, superzviti in prekinjeni plazmidi namreč potujejo skozi agarozni gel z različnimi hitrostmi. Zaradi večjih velikosti multimeri potujejo počasneje kot monomeri, vendar jih je pri izolacijah potrebno ločiti od drugih oblik plazmidov. Poizkusi razgradnje z restrikcijo, ki se pogosto uporabljajo za preverjanje identitete in sekvence plazmidov, ne omogočajo natančnega določanja celotne dolžine. Po razgradnji multimerov velikokrat nastanejo fragmenti enake dolžine kot pri enojnih plazmidih in zato z gelsko elektroforezo ne moremo potrditi njihove prisotnosti. &lt;br /&gt;
Težko jih je zaznati tudi s Sangerjevim sekvenciranjem, ki v teoriji zazna različice, ki izhajajo iz napak podvojevanja plazmidov. Take strukturne oblike se lahko pojavijo pri nastanku multimernih plazmidov (več zaporednih kopij plazmida v eni molekuli DNA), a Sangerjeva metoda zazna predvsem prevladujočo sekvenco, zato mora biti tarčna strukturna oblika v vzorcu prisotna v visoki koncentraciji, drugače bo sekvenčni signal prekril prevladujoč &amp;quot;normalen&amp;quot; signal. Poleg tega mora biti začetni oligonukleotid, ki se uporablja pri sekvenciranju, pozicioniran zelo blizu mesta, kjer je nastala ta različica. Novejše metode, kot je sekvenciranje s kratkimi odčitki, lahko sicer zaznajo oblike, ki niso prevladujoče v vzorcu, saj omogočajo globjo pokritost vzorca (veliko število odčitkov iste regije), a ponavljajoča se zaporedja, kot je multimerni plazmid težko razločijo. To pomeni, da če ni dodatnih mutacij, se kratki odčitki ne morejo sestaviti v jasne informacije o zaporednih ponovitvah plazmidne DNA. Šele z razvojem tehnologij sekvenciranja dolgih odčitkov, kot je nanoporno sekvenciranje, se lahko preseže omejitve elektroforeze, Sangerjevega in sekvenciranja kratkih odčitkov. S posekvenciranjem celotnih plazmidov se multimeri neposredno pokažejo v histogramih dolžin in čeprav ima nanoporni pristop visoko stopnjo napake na posamezni odčitek, to ne vpliva na zaznavanje multimerov, ker je predvsem pomembna ocena, ali se dolžine odčitkov združujejo okoli celoštevilskih večkratnikov pričakovane dolžine plazmida.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== NASTANEK MULTIMEROV V PLAZMIDIH IN SEVIH, POGOSTO UPORABLJENIH V SINTEZNI BIOLOGIJI ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V študiji so preučili nastajanje multimernih plazmidov v dveh pogostih sevih E. coli, in sicer v sevu JM109, ki se uporablja za kloniranje, in v sevu divjega tipa MG1655. Preverili so njihov nastanek v štirih pogostih plazmidih, ki temeljijo na BioBrick vektorjih, in to v pColE1 (BioBrick pSB1C3), p15A (BioBrick pSB3A3), pSC101 (BioBrick pSB4A3) in bakterijskemu umetnemu kromosomu (BAC, izpeljanem iz F plazmida). Z uporabo nanopornega sekvenciranja so ugotovili, da se multimeri ne povečujejo z večanjem števila kopij plazmidov v sevu JM109, medtem ko se v večji meri pojavljajo v sevu MG1655, pri čemer delež plazmidov v obliki multimerov narašča z večanjem števila kopij plazmida in s številom prenesenih kultur (z dodatnim pasiranjem bakterij). Nasprotno pa lahko transformacija multimerov v sev JM109 povzroči nastanek čistih sevov, ki ne vsebujejo nobenih posameznih plazmidov. Prav tako so ustvarili sev MG1655 z izbrisanim genom recA (ΔrecA), ker so predpostavili, da bi delecija lahko preprečila nastanek multimerov.  Sev naj bi pokazal zelo majhno tvorbo multimerov, podobno kot sev JM109.&lt;br /&gt;
V raziskavi so želeli tudi kvantitativno določiti dinamiko nastanka multimerov skozi tipičen »življenjski cikel« uporabe. V ta namen so testirali plazmide v treh točkah: pred transformacijo, po transformaciji in po rasti iz glicerolne zaloge. To je vključevalo pomnoževanje v omenjenih sevih JM109 in MG1655. Da bi upoštevali morebitne razlike, ki pridejo od različnih izvorov replikacij, so uporabili plazmide z različnim številom kopij. Pri  bakterijskem umetnem kromosomu BAC (~1 kopija), pri pSC101 (~5 kopij), pri p15A (~10–12 kopij) in pri ColE1 (~500–700 kopij).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== TRANSFORMACIJA V SEV JM109 ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Za ugotovitev porazdelitve multimerov so uporabili nanoporno sekvenciranje. Pričeli so z izolacijo enojnih plazmidov. V ta namen so plazmide najprej ločili glede na velikost z elektroforezo in nato iz gela izrezali ustrezne lise. Da bi pridobili zadostno količino so morali izvesti transformacijo v bakterije JM109 in izolirati DNA plazmidov. Ti t.i. izvorni vzorci so predstavljali stanje plazmidov, kot bi jih prejeli iz zunanjega laboratorija. Da bi zares preverili, ali so plazmidi enojni, so jih analizirali z nanopornim sekvenciranjem in ugotovili, da je v njih le do ~0,3 % dimerov. Za določitev stabilnosti enojnih plazmidov v sevu JM109, so po transformaciji za vsakega izbrali po eno kolonijo, ki so jo nato gojili čez noč v prisotnosti ustreznega antibiotika za selekcijo. Uporabili so dva različna, in sicer ampicilin za plazmide z nizkim in srednjim številom kopij in kloramfenikol za BAC in plazmide z visokim številom kopij. Iz transformirane kulture so nato neposredno izolirali plazmidno DNA, ki je predstavljala vzorce po transformaciji. Prav tako so kulturo shranili kot glicerolno zalogo in jo ponovno gojili čez noč. DNA izolirana iz te kulture, (po glicerolu) je predstavljala stanje, ki se običajno uporablja za eksperimente s sevom, ki vsebuje plazmid. Za vzorce »po transformaciji« in »po glicerolu« so ugotovili, da imajo manj kot ~0,6 % celotne DNA v obliki dimerov, višjih multimernih oblik z več kot dvema ponovitvama pa niso opazili.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== TRANSFORMACIJA V SEV MG1655D ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Izvorne vzorce so transformirali še v MG1655D, da bi raziskali dinamiko multimernih plazmidov v sevu divjega tipa. Tako kot pri JM109 so izolirali DNA tako iz začetne po transformaciji kot tudi iz ponovno vzgojene kulture iz glicerolne zaloge. Po transformaciji je bilo v BAC in plazmidih z nizkim številom kopij manj kot ~0,4 % dimerov. Pri p15A je bilo ~2 % dimerov, pri ColE1 pa 20 % dimerov, 1,3 % trimerov in 1,7 % tetramerov, kar se sklada s pričakovanji. V vzorcih po glicerolu se je delež multimernih plazmidov na splošno povečal, pri čemer je delež dimerov narasel na 6 % pri p15A in 25 % pri ColE1. Pri slednjem so opazili celo heksamere, a le v nizki frekvenci. V nadaljevanju so preverili, ali je možno nastajanje multimerov v sevu MG1655 popolnoma preprečiti. Zato so odstranili gen recA, saj je protein RecA, ki v JM109 ni prisoten, nujno potreben za nastanek multimerov. V sevu so potem opazili, da je bil delež dimerov v vseh pogojih manjši (med ~0,4–0,8 %), višjih multimernih oblik pa sploh niso zaznali, podobno kot v sevu JM109.&lt;br /&gt;
Na koncu so testirali še, ali lahko ponovna transformacija multimernih plazmidov v sev JM109 poveča delež multimernih plazmidov celo v klonirnem sevu. V ta namen so vzorce MG1655, pridobljene neposredno po transformaciji, ponovno transformirali v JM109 in izolirali DNA iz kolonij za vsak tip plazmida. Pri plazmidu z visokim številom kopij so ugotovili, da so pri eni od treh kolonij skoraj vsi plazmidi v obliki dimerov. To kaže, da je dimerska oblika v sevu JM109 stabilna.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== ZAKLJUČEK ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Preučili so nastanek multimernih oblik plazmidov z nanopornim sekvenciranjem pri sevih JM109 in MG1655. Pokazali so, da je v klonirnem sevu JM109 nastanek multimerov minimalen, medtem ko v sevu MG1655 močno narašča s številom kopij plazmida in s številom prenesenih kultur. Z izbrisom gena recA so uspešno zmanjšali nastanek multimerov in potrdili, da transformacija multimernih plazmidov vodi v visoko multimerne kulture. Raziskava opozarja na pomen poznavanja plazmidnih sekvenc za pravilno interpretacijo eksperimentalnih podatkov in poudarja, da je, še posebej pri nemodelnih organizmih, pomembno preveriti možnost nastanka multimerov.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Literatura ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
[1]	E. Vaisbourd, A. Bren, U. Alon, D. S. Glass: Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids. ACS Synth. Biol. 2025.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24398</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24398"/>
		<updated>2025-04-15T04:24:25Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== UVOD ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V sintezni biologiji so plazmidi nepogrešljivo orodje raziskav, saj njihova uporaba omogoča lažje spreminjanje genov v primerjavi z genskim inženiringom. Med njihovim podvojevanjem lahko pride do napak, kar vodi v nastanek ponovitev, imenovanih multimeri. Ti se sčasoma pričnejo kopičiti in to lahko vpliva na različna sintetična vezja, sploh tista, ki vključujejo encime za urejanje DNA. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== VPLIV MULTIMERNIH PLAZMIDOV NA STABILNOST IN ZANESLJIVOST VEZIJ ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Čeprav je sam nastanek multimerov že proučen, še vedno ni povsem jasno, v kolikšni meri se tvorijo pri rutinski uporabi pogostih laboratorijskih sevov in plazmidov, kar večkrat oteži eksperimente. Pri multimernih plazmidih se več enakih kopij DNA poveže skupaj v eno večjo molekulo. Takšni plazmidi vsebujejo več zaporednih, skoraj identičnih ponovitev istega gena. Ko pride do mutacije (naključne spremembe) v eni od teh ponovitev, lahko ostale kopije še vedno ostanejo nespremenjene (t.i. divji tip, gre torej za nemutirano različico). Ker so vse te ponovitve še vedno fizično povezane skupaj v isti molekuli, se mutirana in nemutirana različica dedujeta skupaj. To povzroči spremembo v funkciji celotnega plazmida, ker bo nosil različne verzije istega zaporedja, kar vpliva na to, kako se bo obnašal pod določenimi pogoji, kot npr. pri selekciji z antibiotiki. Sintetična genska vezja pogosto uporabljajo encime za urejanje DNA, recimo rekombinaze, ki režejo na specifičnih mestih. Če gre za multimerni plazmid (več ponovitev na isti molekuli DNA), lahko rekombinaza zareže na različnih mestih, ali znotraj ene od ponovitev, kjer spremeni zaporedje in s tem povzroči dodatno nestabilnost, ali med različnimi ponovitvami, kjer povzroči preureditev oz. izgubo dela plazmida. To povečuje stopnjo nepredvidljivosti v eksperimentih, saj je težko natančno določiti, kakšne spremembe bodo nastale in kakšen bo njihov vpliv na celotno gensko vezje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== DEJAVNIKI, KI VPLIVAJO NA NASTANEK MULTIMEROV ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Na pogostost nastanka multimerov vplivajo dejavniki, ki so zapisani bodisi na samih plazmidih bodisi na kromosomu. Med najvplivnejšimi je plazmidni replikon, genetski element, ki uravnava hitrost in čas replikacije plazmida. Samo število kopij se lahko giblje od ena do več sto in se lahko kvantificira z metodami, kot je qPCR. Izvor replikacije in z njim povezani regulacijski elementi replikona določajo, ali se plazmidi v hčerinske celice razdelijo naključno (npr. ColE1) ali na reguliran način (npr. plazmidi tipa F). Poleg tega lahko na nastanek multimerov vpliva tudi kromosomsko ozadje bakterijskega seva. Mehanizem ločevanja multimerov med plazmidno replikacijo je odvisen od različnih kromosomskih rekombinaz, zlasti od RecA. Encim RecA popravlja prelome dvoverižne DNA preko homologe rekombinacije. Najprej se veže na enoverižno DNA in se nato spari s homolognim delom dvoverižne. Pri tem sodelujeta tudi protein RecF in pa kompleks RecBCD, ki izpostavi ssDNA in vključuje aktivnost helikaze in eksonukleaze.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== ZAZNAVANJE MULTIMEROV ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Zaznavanje pogostosti plazmidnih multimerov je težaven proces. Velikokrat se je ugotavljal z gelsko elektroforezo, vendar pa je bila interpretacija težavna, saj se je celo pri preverjenih vzorcih enojnih plazmidov na gelu videlo več lis. Linearni, krožni, superzviti in prekinjeni plazmidi namreč potujejo skozi agarozni gel z različnimi hitrostmi. Zaradi večjih velikosti multimeri potujejo počasneje kot monomeri, vendar jih je pri izolacijah potrebno ločiti od drugih oblik plazmidov. Poizkusi razgradnje z restrikcijo, ki se pogosto uporabljajo za preverjanje identitete in sekvence plazmidov, ne omogočajo natančnega določanja celotne dolžine. Po razgradnji multimerov velikokrat nastanejo fragmenti enake dolžine kot pri enojnih plazmidih in zato z gelsko elektroforezo ne moremo potrditi njihove prisotnosti. &lt;br /&gt;
Težko jih je zaznati tudi s Sangerjevim sekvenciranjem, ki v teoriji zazna različice, ki izhajajo iz napak podvojevanja plazmidov. Take strukturne oblike se lahko pojavijo pri nastanku multimernih plazmidov (več zaporednih kopij plazmida v eni molekuli DNA), a Sangerjeva metoda zazna predvsem prevladujočo sekvenco, zato mora biti tarčna strukturna oblika v vzorcu prisotna v visoki koncentraciji, drugače bo sekvenčni signal prekril prevladujoč &amp;quot;normalen&amp;quot; signal. Poleg tega mora biti začetni oligonukleotid, ki se uporablja pri sekvenciranju, pozicioniran zelo blizu mesta, kjer je nastala ta različica. Novejše metode, kot je sekvenciranje s kratkimi odčitki, lahko sicer zaznajo oblike, ki niso prevladujoče v vzorcu, saj omogočajo globjo pokritost vzorca (veliko število odčitkov iste regije), a ponavljajoča se zaporedja, kot je multimerni plazmid težko razločijo. To pomeni, da če ni dodatnih mutacij, se kratki odčitki ne morejo sestaviti v jasne informacije o zaporednih ponovitvah plazmidne DNA. Šele z razvojem tehnologij sekvenciranja dolgih odčitkov, kot je nanoporno sekvenciranje, se lahko preseže omejitve elektroforeze, Sangerjevega in sekvenciranja kratkih odčitkov. S posekvenciranjem celotnih plazmidov se multimeri neposredno pokažejo v histogramih dolžin in čeprav ima nanoporni pristop visoko stopnjo napake na posamezni odčitek, to ne vpliva na zaznavanje multimerov, ker je predvsem pomembna ocena, ali se dolžine odčitkov združujejo okoli celoštevilskih večkratnikov pričakovane dolžine plazmida.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== NASTANEK MULTIMEROV V PLAZMIDIH IN SEVIH, POGOSTO UPORABLJENIH V SINTEZNI BIOLOGIJI ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V študiji so preučili nastajanje multimernih plazmidov v dveh pogostih sevih E. coli, in sicer v sevu JM109, ki se uporablja za kloniranje, in v sevu divjega tipa MG1655. Preverili so njihov nastanek v štirih pogostih plazmidih, ki temeljijo na BioBrick vektorjih, in to v pColE1 (BioBrick pSB1C3), p15A (BioBrick pSB3A3), pSC101 (BioBrick pSB4A3) in bakterijskemu umetnemu kromosomu (BAC, izpeljanem iz F plazmida). Z uporabo nanopornega sekvenciranja so ugotovili, da se multimeri ne povečujejo z večanjem števila kopij plazmidov v sevu JM109, medtem ko se v večji meri pojavljajo v sevu MG1655, pri čemer delež plazmidov v obliki multimerov narašča z večanjem števila kopij plazmida in s številom prenesenih kultur (z dodatnim pasiranjem bakterij). Nasprotno pa lahko transformacija multimerov v sev JM109 povzroči nastanek čistih sevov, ki ne vsebujejo nobenih posameznih plazmidov. Prav tako so ustvarili sev MG1655 z izbrisanim genom recA (ΔrecA), ker so predpostavili, da bi delecija lahko preprečila nastanek multimerov.  Sev naj bi pokazal zelo majhno tvorbo multimerov, podobno kot sev JM109.&lt;br /&gt;
V raziskavi so želeli tudi kvantitativno določiti dinamiko nastanka multimerov skozi tipičen »življenjski cikel« uporabe. V ta namen so testirali plazmide v treh točkah: pred transformacijo, po transformaciji in po rasti iz glicerolne zaloge. To je vključevalo pomnoževanje v omenjenih sevih JM109 in MG1655. Da bi upoštevali morebitne razlike, ki pridejo od različnih izvorov replikacij, so uporabili plazmide z različnim številom kopij. Pri  bakterijskem umetnem kromosomu BAC (~1 kopija), pri pSC101 (~5 kopij), pri p15A (~10–12 kopij) in pri ColE1 (~500–700 kopij).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== TRANSFORMACIJA V SEV JM109 ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Za ugotovitev porazdelitve multimerov so uporabili nanoporno sekvenciranje dolgih odčitkov. Pričeli so z izolacijo enojnih plazmidov. V ta namen so plazmide najprej ločili glede na velikost z elektroforezo in nato iz gela izrezali ustrezne lise. Da bi pridobili zadostno količino so morali izvesti transformacijo v bakterije JM109 in izolirati DNA plazmidov. Ti t.i. izvorni vzorci so predstavljali stanje plazmidov, kot bi jih prejeli iz zunanjega laboratorija. Da bi zares preverili, ali so plazmidi enojni, so jih analizirali z nanopornim sekvenciranjem in ugotovili, da je v njih le do ~0,3 % dimerov. Za določitev stabilnosti enojnih plazmidov v sevu JM109, so po transformaciji za vsakega izbrali po eno kolonijo, ki so jo nato gojili čez noč v prisotnosti ustreznega antibiotika za selekcijo. Uporabili so dva različna, in sicer ampicilin za plazmide z nizkim in srednjim številom kopij in kloramfenikol za BAC in plazmide z visokim številom kopij. Iz transformirane kulture so nato neposredno izolirali plazmidno DNA, ki je predstavljala vzorce po transformaciji. Prav tako so kulturo shranili kot glicerolno zalogo in jo ponovno gojili čez noč. DNA izolirana iz te kulture, (po glicerolu) je predstavljala stanje, ki se običajno uporablja za eksperimente s sevom, ki vsebuje plazmid. Za vzorce »po transformaciji« in »po glicerolu« so ugotovili, da imajo manj kot ~0,6 % celotne DNA v obliki dimerov, višjih multimernih oblik z več kot dvema ponovitvama pa niso opazili.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== TRANSFORMACIJA V SEV MG1655D ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Izvorne vzorce so transformirali še v MG1655D, da bi raziskali dinamiko multimernih plazmidov v sevu divjega tipa. Tako kot pri JM109 so izolirali DNA tako iz začetne po transformaciji kot tudi iz ponovno vzgojene kulture iz glicerolne zaloge. Po transformaciji je bilo v BAC in plazmidih z nizkim številom kopij manj kot ~0,4 % dimerov. Pri p15A je bilo ~2 % dimerov, pri ColE1 pa 20 % dimerov, 1,3 % trimerov in 1,7 % tetramerov, kar se sklada s pričakovanji. V vzorcih po glicerolu se je delež multimernih plazmidov na splošno povečal, pri čemer je delež dimerov narasel na 6 % pri p15A in 25 % pri ColE1. Pri slednjem so opazili celo heksamere, a le v nizki frekvenci. V nadaljevanju so preverili, ali je možno nastajanje multimerov v sevu MG1655 popolnoma preprečiti. Zato so odstranili gen recA, saj je protein RecA, ki v JM109 ni prisoten, nujno potreben za nastanek multimerov. V sevu so potem opazili, da je bil delež dimerov v vseh pogojih manjši (med ~0,4–0,8 %), višjih multimernih oblik pa sploh niso zaznali, podobno kot v sevu JM109.&lt;br /&gt;
Na koncu so testirali še, ali lahko ponovna transformacija multimernih plazmidov v sev JM109 poveča delež multimernih plazmidov celo v klonirnem sevu. V ta namen so vzorce MG1655, pridobljene neposredno po transformaciji, ponovno transformirali v JM109 in izolirali DNA iz kolonij za vsak tip plazmida. Pri plazmidu z visokim številom kopij so ugotovili, da so pri eni od treh kolonij skoraj vsi plazmidi v obliki dimerov. To kaže, da je dimerska oblika v sevu JM109 stabilna.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== ZAKLJUČEK ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Preučili so nastanek multimernih oblik plazmidov z nanopornim sekvenciranjem pri sevih JM109 in MG1655. Pokazali so, da je v klonirnem sevu JM109 nastanek multimerov minimalen, medtem ko v sevu MG1655 močno narašča s številom kopij plazmida in s številom prenesenih kultur. Z izbrisom gena recA so uspešno zmanjšali nastanek multimerov in potrdili, da transformacija multimernih plazmidov vodi v visoko multimerne kulture. Raziskava opozarja na pomen poznavanja plazmidnih sekvenc za pravilno interpretacijo eksperimentalnih podatkov in poudarja, da je, še posebej pri nemodelnih organizmih, pomembno preveriti možnost nastanka multimerov.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Literatura ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
[1]	E. Vaisbourd, A. Bren, U. Alon, D. S. Glass: Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids. ACS Synth. Biol. 2025.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24397</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24397"/>
		<updated>2025-04-15T04:23:28Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Uvod ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V sintezni biologiji so plazmidi nepogrešljivo orodje raziskav, saj njihova uporaba omogoča lažje spreminjanje genov v primerjavi z genskim inženiringom. Med njihovim podvojevanjem lahko pride do napak, kar vodi v nastanek ponovitev, imenovanih multimeri. Ti se sčasoma pričnejo kopičiti in to lahko vpliva na različna sintetična vezja, sploh tista, ki vključujejo encime za urejanje DNA. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== VPLIV MULTIMERNIH PLAZMIDOV NA STABILNOST IN ZANESLJIVOST VEZIJ ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Čeprav je sam nastanek multimerov že proučen, še vedno ni povsem jasno, v kolikšni meri se tvorijo pri rutinski uporabi pogostih laboratorijskih sevov in plazmidov, kar večkrat oteži eksperimente. Pri multimernih plazmidih se več enakih kopij DNA poveže skupaj v eno večjo molekulo. Takšni plazmidi vsebujejo več zaporednih, skoraj identičnih ponovitev istega gena. Ko pride do mutacije (naključne spremembe) v eni od teh ponovitev, lahko ostale kopije še vedno ostanejo nespremenjene (t.i. divji tip, gre torej za nemutirano različico). Ker so vse te ponovitve še vedno fizično povezane skupaj v isti molekuli, se mutirana in nemutirana različica dedujeta skupaj. To povzroči spremembo v funkciji celotnega plazmida, ker bo nosil različne verzije istega zaporedja, kar vpliva na to, kako se bo obnašal pod določenimi pogoji, kot npr. pri selekciji z antibiotiki. Sintetična genska vezja pogosto uporabljajo encime za urejanje DNA, recimo rekombinaze, ki režejo na specifičnih mestih. Če gre za multimerni plazmid (več ponovitev na isti molekuli DNA), lahko rekombinaza zareže na različnih mestih, ali znotraj ene od ponovitev, kjer spremeni zaporedje in s tem povzroči dodatno nestabilnost, ali med različnimi ponovitvami, kjer povzroči preureditev oz. izgubo dela plazmida. To povečuje stopnjo nepredvidljivosti v eksperimentih, saj je težko natančno določiti, kakšne spremembe bodo nastale in kakšen bo njihov vpliv na celotno gensko vezje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== DEJAVNIKI, KI VPLIVAJO NA NASTANEK MULTIMEROV ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Na pogostost nastanka multimerov vplivajo dejavniki, ki so zapisani bodisi na samih plazmidih bodisi na kromosomu. Med najvplivnejšimi je plazmidni replikon, genetski element, ki uravnava hitrost in čas replikacije plazmida. Samo število kopij se lahko giblje od ena do več sto in se lahko kvantificira z metodami, kot je qPCR. Izvor replikacije in z njim povezani regulacijski elementi replikona določajo, ali se plazmidi v hčerinske celice razdelijo naključno (npr. ColE1) ali na reguliran način (npr. plazmidi tipa F). Poleg tega lahko na nastanek multimerov vpliva tudi kromosomsko ozadje bakterijskega seva. Mehanizem ločevanja multimerov med plazmidno replikacijo je odvisen od različnih kromosomskih rekombinaz, zlasti od RecA. Encim RecA popravlja prelome dvoverižne DNA preko homologe rekombinacije. Najprej se veže na enoverižno DNA in se nato spari s homolognim delom dvoverižne. Pri tem sodelujeta tudi protein RecF in pa kompleks RecBCD, ki izpostavi ssDNA in vključuje aktivnost helikaze in eksonukleaze.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== ZAZNAVANJE MULTIMEROV ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Zaznavanje pogostosti plazmidnih multimerov je težaven proces. Velikokrat se je ugotavljal z gelsko elektroforezo, vendar pa je bila interpretacija težavna, saj se je celo pri preverjenih vzorcih enojnih plazmidov na gelu videlo več lis. Linearni, krožni, superzviti in prekinjeni plazmidi namreč potujejo skozi agarozni gel z različnimi hitrostmi. Zaradi večjih velikosti multimeri potujejo počasneje kot monomeri, vendar jih je pri izolacijah potrebno ločiti od drugih oblik plazmidov. Poizkusi razgradnje z restrikcijo, ki se pogosto uporabljajo za preverjanje identitete in sekvence plazmidov, ne omogočajo natančnega določanja celotne dolžine. Po razgradnji multimerov velikokrat nastanejo fragmenti enake dolžine kot pri enojnih plazmidih in zato z gelsko elektroforezo ne moremo potrditi njihove prisotnosti. &lt;br /&gt;
Težko jih je zaznati tudi s Sangerjevim sekvenciranjem, ki v teoriji zazna različice, ki izhajajo iz napak podvojevanja plazmidov. Take strukturne oblike se lahko pojavijo pri nastanku multimernih plazmidov (več zaporednih kopij plazmida v eni molekuli DNA), a Sangerjeva metoda zazna predvsem prevladujočo sekvenco, zato mora biti tarčna strukturna oblika v vzorcu prisotna v visoki koncentraciji, drugače bo sekvenčni signal prekril prevladujoč &amp;quot;normalen&amp;quot; signal. Poleg tega mora biti začetni oligonukleotid, ki se uporablja pri sekvenciranju, pozicioniran zelo blizu mesta, kjer je nastala ta različica. Novejše metode, kot je sekvenciranje s kratkimi odčitki, lahko sicer zaznajo oblike, ki niso prevladujoče v vzorcu, saj omogočajo globjo pokritost vzorca (veliko število odčitkov iste regije), a ponavljajoča se zaporedja, kot je multimerni plazmid težko razločijo. To pomeni, da če ni dodatnih mutacij, se kratki odčitki ne morejo sestaviti v jasne informacije o zaporednih ponovitvah plazmidne DNA. Šele z razvojem tehnologij sekvenciranja dolgih odčitkov, kot je nanoporno sekvenciranje, se lahko preseže omejitve elektroforeze, Sangerjevega in sekvenciranja kratkih odčitkov. S posekvenciranjem celotnih plazmidov se multimeri neposredno pokažejo v histogramih dolžin in čeprav ima nanoporni pristop visoko stopnjo napake na posamezni odčitek, to ne vpliva na zaznavanje multimerov, ker je predvsem pomembna ocena, ali se dolžine odčitkov združujejo okoli celoštevilskih večkratnikov pričakovane dolžine plazmida.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== NASTANEK MULTIMEROV V PLAZMIDIH IN SEVIH, POGOSTO UPORABLJENIH V SINTEZNI BIOLOGIJI ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V študiji so preučili nastajanje multimernih plazmidov v dveh pogostih sevih E. coli, in sicer v sevu JM109, ki se uporablja za kloniranje, in v sevu divjega tipa MG1655. Preverili so njihov nastanek v štirih pogostih plazmidih, ki temeljijo na BioBrick vektorjih, in to v pColE1 (BioBrick pSB1C3), p15A (BioBrick pSB3A3), pSC101 (BioBrick pSB4A3) in bakterijskemu umetnemu kromosomu (BAC, izpeljanem iz F plazmida). Z uporabo nanopornega sekvenciranja so ugotovili, da se multimeri ne povečujejo z večanjem števila kopij plazmidov v sevu JM109, medtem ko se v večji meri pojavljajo v sevu MG1655, pri čemer delež plazmidov v obliki multimerov narašča z večanjem števila kopij plazmida in s številom prenesenih kultur (z dodatnim pasiranjem bakterij). Nasprotno pa lahko transformacija multimerov v sev JM109 povzroči nastanek čistih sevov, ki ne vsebujejo nobenih posameznih plazmidov. Prav tako so ustvarili sev MG1655 z izbrisanim genom recA (ΔrecA), ker so predpostavili, da bi delecija lahko preprečila nastanek multimerov.  Sev naj bi pokazal zelo majhno tvorbo multimerov, podobno kot sev JM109.&lt;br /&gt;
V raziskavi so želeli tudi kvantitativno določiti dinamiko nastanka multimerov skozi tipičen »življenjski cikel« uporabe. V ta namen so testirali plazmide v treh točkah: pred transformacijo, po transformaciji in po rasti iz glicerolne zaloge. To je vključevalo pomnoževanje v omenjenih sevih JM109 in MG1655. Da bi upoštevali morebitne razlike, ki pridejo od različnih izvorov replikacij, so uporabili plazmide z različnim številom kopij. Pri  bakterijskem umetnem kromosomu BAC (~1 kopija), pri pSC101 (~5 kopij), pri p15A (~10–12 kopij) in pri ColE1 (~500–700 kopij).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== TRANSFORMACIJA V SEV JM109 ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Za ugotovitev porazdelitve multimerov so uporabili nanoporno sekvenciranje dolgih odčitkov. Pričeli so z izolacijo enojnih plazmidov. V ta namen so plazmide najprej ločili glede na velikost z elektroforezo in nato iz gela izrezali ustrezne lise. Da bi pridobili zadostno količino so morali izvesti transformacijo v bakterije JM109 in izolirati DNA plazmidov. Ti t.i. izvorni vzorci so predstavljali stanje plazmidov, kot bi jih prejeli iz zunanjega laboratorija. Da bi zares preverili, ali so plazmidi enojni, so jih analizirali z nanopornim sekvenciranjem in ugotovili, da je v njih le do ~0,3 % dimerov. Za določitev stabilnosti enojnih plazmidov v sevu JM109, so po transformaciji za vsakega izbrali po eno kolonijo, ki so jo nato gojili čez noč v prisotnosti ustreznega antibiotika za selekcijo. Uporabili so dva različna, in sicer ampicilin za plazmide z nizkim in srednjim številom kopij in kloramfenikol za BAC in plazmide z visokim številom kopij. Iz transformirane kulture so nato neposredno izolirali plazmidno DNA, ki je predstavljala vzorce po transformaciji. Prav tako so kulturo shranili kot glicerolno zalogo in jo ponovno gojili čez noč. DNA izolirana iz te kulture, (po glicerolu) je predstavljala stanje, ki se običajno uporablja za eksperimente s sevom, ki vsebuje plazmid. Za vzorce »po transformaciji« in »po glicerolu« so ugotovili, da imajo manj kot ~0,6 % celotne DNA v obliki dimerov, višjih multimernih oblik z več kot dvema ponovitvama pa niso opazili.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== TRANSFORMACIJA V SEV MG1655D ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Izvorne vzorce so transformirali še v MG1655D, da bi raziskali dinamiko multimernih plazmidov v sevu divjega tipa. Tako kot pri JM109 so izolirali DNA tako iz začetne po transformaciji kot tudi iz ponovno vzgojene kulture iz glicerolne zaloge. Po transformaciji je bilo v BAC in plazmidih z nizkim številom kopij manj kot ~0,4 % dimerov. Pri p15A je bilo ~2 % dimerov, pri ColE1 pa 20 % dimerov, 1,3 % trimerov in 1,7 % tetramerov, kar se sklada s pričakovanji. V vzorcih po glicerolu se je delež multimernih plazmidov na splošno povečal, pri čemer je delež dimerov narasel na 6 % pri p15A in 25 % pri ColE1. Pri slednjem so opazili celo heksamere, a le v nizki frekvenci. V nadaljevanju so preverili, ali je možno nastajanje multimerov v sevu MG1655 popolnoma preprečiti. Zato so odstranili gen recA, saj je protein RecA, ki v JM109 ni prisoten, nujno potreben za nastanek multimerov. V sevu so potem opazili, da je bil delež dimerov v vseh pogojih manjši (med ~0,4–0,8 %), višjih multimernih oblik pa sploh niso zaznali, podobno kot v sevu JM109.&lt;br /&gt;
Na koncu so testirali še, ali lahko ponovna transformacija multimernih plazmidov v sev JM109 poveča delež multimernih plazmidov celo v klonirnem sevu. V ta namen so vzorce MG1655, pridobljene neposredno po transformaciji, ponovno transformirali v JM109 in izolirali DNA iz kolonij za vsak tip plazmida. Pri plazmidu z visokim številom kopij so ugotovili, da so pri eni od treh kolonij skoraj vsi plazmidi v obliki dimerov. To kaže, da je dimerska oblika v sevu JM109 stabilna.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== ZAKLJUČEK ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Preučili so nastanek multimernih oblik plazmidov z nanopornim sekvenciranjem pri sevih JM109 in MG1655. Pokazali so, da je v klonirnem sevu JM109 nastanek multimerov minimalen, medtem ko v sevu MG1655 močno narašča s številom kopij plazmida in s številom prenesenih kultur. Z izbrisom gena recA so uspešno zmanjšali nastanek multimerov in potrdili, da transformacija multimernih plazmidov vodi v visoko multimerne kulture. Raziskava opozarja na pomen poznavanja plazmidnih sekvenc za pravilno interpretacijo eksperimentalnih podatkov in poudarja, da je, še posebej pri nemodelnih organizmih, pomembno preveriti možnost nastanka multimerov.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Literatura ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
[1]	E. Vaisbourd, A. Bren, U. Alon, D. S. Glass: Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids. ACS Synth. Biol. 2025.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24185</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24185"/>
		<updated>2025-04-11T12:43:08Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# drugi članek (itd.) &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PET TWINS: Praktična uporaba PETaze za učinkovitejše recikliranje plastike] (Tina Urh)&lt;br /&gt;
# drugi projekt (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24171</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24171"/>
		<updated>2025-04-10T23:19:03Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24170</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24170"/>
		<updated>2025-04-10T23:17:25Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek:  Preventing Multimer Formation in Commonly Used Synthetic Biology Plasmids&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24169</id>
		<title>Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Prepre%C4%8Devanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji&amp;diff=24169"/>
		<updated>2025-04-10T23:14:46Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: Created page with &amp;quot;Izhodiščni članek: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/&amp;quot;&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;Izhodiščni članek: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40101192/&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24168</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24168"/>
		<updated>2025-04-10T23:08:46Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji Preprečevanje nastanka multimerov na_pogosto_uporabljenih_plazmidih v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# drugi članek (itd.) &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# drugi projekt (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24167</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24167"/>
		<updated>2025-04-10T23:06:59Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# drugi članek (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# drugi projekt (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24166</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24166"/>
		<updated>2025-04-10T23:06:46Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje_nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# drugi članek (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# drugi projekt (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24165</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24165"/>
		<updated>2025-04-10T23:06:09Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje_nastanka_multimerov_na_pogosto_uporabljenih_plazmidih_v_sintezni_biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# drugi članek (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# drugi projekt (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24164</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24164"/>
		<updated>2025-04-10T23:04:59Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# drugi članek (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# drugi projekt (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24163</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24163"/>
		<updated>2025-04-10T23:02:52Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje_nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# drugi članek (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# drugi projekt (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24162</id>
		<title>Seminarji SB 2024/25</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Seminarji_SB_2024/25&amp;diff=24162"/>
		<updated>2025-04-10T23:02:32Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;V študijskem letu 2024/25 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
RAZISKOVALNI ČLANKI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) &amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Inženiring_umetnih_medvrstnih_promotorjev_z_različnimi_transkripcijskimi_močmi Inženiring umetnih medvrstnih promotorjev z različnimi transkripcijskimi močmi] (Miljan Trajković) &lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preprečevanje nastanka multimerov na pogosto uporabljenih plazmidih v sintezni biologiji] (Lev Jošt)&lt;br /&gt;
# drugi članek (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SynPlode SynPlode] (Leila Bohorč)&lt;br /&gt;
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/PETal:_izdelovanje_eteričnega_olja_sandalovine_iz_PET_plastike PETal: izdelovanje eteričnega olja sandalovine iz PET plastike] (Lara Krampač)&lt;br /&gt;
# drugi projekt (itd.)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v torek torej najkasneje v ponedeljek). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Terminski razpored bo razviden iz preglednice na strežniku Google Drive.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2023/24]].&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Transpozoni_kot_prena%C5%A1alci_odpornosti_bakterij_proti_antibiotikom&amp;diff=20205</id>
		<title>Transpozoni kot prenašalci odpornosti bakterij proti antibiotikom</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Transpozoni_kot_prena%C5%A1alci_odpornosti_bakterij_proti_antibiotikom&amp;diff=20205"/>
		<updated>2022-04-19T04:43:47Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: /* Sestavljeni transpozoni */&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;==Uvod==&lt;br /&gt;
Pereča težava današnje družbe je razmah bakterijskih okužb. Številne bakterije so sposobne razviti odpornosti proti antibiotikom, kar otežuje učinkovito zdravljenje in preventivo pred boleznimi. Sokrivec za to so tudi transpozoni, ki prenašajo gene za odpornost proti antibiotikom med bakterijskimi vrstami.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijski transpozoni večinoma spadajo v razred DNA transpozonov nekaj vrst bakterij pa ima tudi retrotranspozone. Lahko se prenašajo s plazmida na plazmid ali z DNA kromosoma na plazmid in obratno ter tako povzročijo prenos odpornosti proti antibiotikom pri bakterijah. Transpozicija lahko poteka po enem od transpozicijskih mehanizmov, to so princip kotalečega se kroga, princip izreži-prilepi in replikativni princip. Prenos transpozona iz ene bakterijske celice v drugo lahko poteče s prenosom plazmida preko konjugacijskega mostička ali preko bakteriofaga. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Pri replikativnih DNA transpozonih se zaporedje transpozona podvoji nato pa se podvojeni del prenese naprej, originalno zaporedje pa ostane na svojem mestu, pri nereplikativnem prenosu pa se zaporedje transpozona izreže iz zaporedja in prenese v plazmid ter preko konjugacije v drugo bakterijsko celico, torej prvotno zaporedje ostane brez  transpozonskega dela zaporedja. Potem ko se zaporedje transpozona prenese, se na njem sintetizira mesto tarčnega podvojevanja, ki je pomembno pri vstavitvi transpozona v tarčno zaporedje. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijski transpozoni imajo značilno strukturo dveh krajših inverznih ponovitev komplementarnih zaporedij (IR), ki objemata osrednji genomski del transpozona. Ta vsebuje sekvenco, ki zapisuje za encim transpozazo. Transpozaze imajo značilno katalitično mesto DDE (Aspartat (D) –aspartat (D) –glutamat (E) in koordiniran kovinski ion. Njihova naloga je identifikacija inverznih ponovitev, rezanje in prenos DNA. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Transpozoni se med bakterijami lahko prenašajo tudi preko bakteriofagov. Prenos transpozona in z njim genov za odpornost proti antibiotikom na ta način ima prednost za bakterijo predvsem zato, ker za prenos ni potreben direkten celični stik. Dober primer fagnega transpozona, ki prenaša odpornost, je fag Mu. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijske transpozonske elemente lahko razdelimo v 4 kategorije: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	insercijska zaporedja (IS)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	sestavljeni transpozoni&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	nesestavljeni transpozoni&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	Mu bakteriofag&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Bakterijski transpozonski elementi==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Insercijska zaporedja&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Insercijska zaporedja so najmanjši genski elementi, krajši od 2500 bp, ki se prenašajo med bakterijskimi genomi in samostojno kodirajo proteine. IS načeloma ne nosijo zapisa za gensko rezistenco, lahko pa so del sestavljenih transpozonov. IS so tako majhni, da poleg IR zaporedja na začetku in koncu transpozona, ki sta potrebna za prenos, vsebuje le zapis za proteine, ki inhibirajo ali aktivirajo transpozonsko aktivnost, ter encime - transposaze, ki sodelujejo pri prenosu transpozonov. Na primer IS911 je dolg 1250 bp. Objemata ga 2 IR zaporedji dolgi 36bp, kodirajoča regija pa zapisuje gene za transpozazo OrfAB in regulatorni protein ORFa.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Sestavljeni transpozoni&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
Sestavljeni transpozoni so obdani z insercijskima zaporedjema, vmes pa lahko vsebujejo enega ali več genov, med katerimi so lahko tudi geni za rezistenco na antibiotike. Njihovo prenašanje med bakterijami predstavlja enega najresnejših izzivov pri zdravljenju infekcijskih bolezni. Razlike med transpozoni ne predtsvaljata le dolžina in število funkcionalnih genov, ki so lahko vključeni med insercijski zaporedji, ampak tudi fukcionalnost ali nefunkcionalnost genov za transpozazo. Načeloma bi lahko bila oba gena aktivna, a zadošča že eden. Nekateri sestavljeni transpozoni so Tn5, Tn10, Tn9, Tn6, Tn903, Tn2680, Tn1525, Tn4003, Tn4001..., med katerimi so najbolj omembe vredni Tn903, Tn9, Tn10 in Tn5. Tn5 obdajata insercijski zaporedji IS50R in IS50L (L in R označujeta levo in desno) in vključuje tri gene za odpornost proti antibiotikom, in sicer gene za odpornost proti kanamicinu (kanR), bleomicinu in streptomicinu. Tn5 z vsebujočimi kanR geni lahko najdemo v Gram negativnih bakterijah, kot so na primer Methylobacterium, Agrobacterium in Pseudomonas. Pred kratkim je bilo tudi demonstrirano, da lahko Hfq molekula (to je RNA-vezavni šaperon, ki omogoča parjenje baz kompleksa sRNA-mRNA in stabilizira molekule sRNA) s kataliziranjem enega snRNP delca in mRNA prepreči prenos Tn5 pri E. coli, in sicer tako, da inhibira IS50 transpozazo. Tn10 je sorazmerno dolg, in sicer kar 9300 baznih parov. Pri njem sta insercijski zaporedji na eni in drugi strani orientirani obrnjeno, posledično je zapis za transpozazo na eni strani v smerni, na drugi pa v protismerni orientaciji. Insrecijski zaporedji, ki ga obdajata, torej IS10R in IS10L sta po dolžini sicer enaki, nista pa po zaporedju identični. Med njima je 6500 baznih parov, med katere je vključen le en funkcionalen gen in to je gen za odpornost proti tetraciklinu, dolžine malo pod 1000 baznih parov. Zaradi različne orientacije gena za transpozazo lahko tudi govorimo o obrnjenih insercijskih zaporedjih, oziroma insercijskih elemntih. Tn10, ki vsebuje gene proti tetraciklinu lahko najdemo v bakterijah Proteusu, Pseudomonasu in  Salmonelli. Pri Tn9 imaš levo in desno insercijsko zaporedje v isti orientaciji, torej gre za ponovljeni modul IS, na levi imaš IS1, na desni pa enak IS modul. Kot marker imaš pri njem gen za odpornost proti antibiotiku kloramfenikolu. IS1 je bil tudi identificiran kot eno prvih in tudi najmanjših insercijskih zaporedij v bakterijah (z dolžino manj kot 770 baznih parov). Tn6 je nosilec kanR gena, ima dolžino približno 5 kbp in je obdan z IS26. Za IS26 je znano, da se med bakterijskimi plazmidi njegova frekvenca vse bolj povečuje in povzroča prenašanje sestavljenih Tns (še posebej Tn6). Tn1 ima blaTEM rezistenčne gene na ampicilin in ga lahko najdemo na PR1, PR4, R8 in R68 plazmidih. Ta transpozon ima prav tako IS26 insercijsko zaporedje. Tn1 vsebuje tudi colZ gen, ki je znan kot proizvajalec eksotoksina. Tn903 je še en primer modula z obrnjeno orientacijo, tako kot Tn5 in Tn10, razlika med njimi je le v funkcionalnosti in nefunkcionalnosti obrnjenih ponovitev. Pri Tn903 imaš v obeh končnih modulih čisto funkcionalne zapise za transpozazo, medtem ko je pri Tn5 in Tn10 le desni zapis fukcionalen. Insrecijski zaporedji sta pri njem dolžine okrog 1000 baznih parov. Transpozon ima veliko številko napram ostalim predstavljenim, kar lahko nakazuje na to, da so ga sorazmerno pozno odkrili. Bil je izoliran iz bakterije Salmonella typhimurium in ima neomicin-kanamicin fosfotransferazo, saj kodira aminoglikozid 3′-fosfotransferazo I, ki fosforilira zgoraj omenjena kanamicin in neomicin. Identificirali so ga kot enega ključnih predelov plazmida R6.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Nesestavljeni transpozoni&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Nesestavljeni transpozoni nimajo insercijskih zaporedij na obeh koncih, ampak samo inverzni zaporedji na vsaki strani in so nosilci genov za odpornost proti antibiotikom ter gena &#039;&#039;tnp&#039;&#039;A za transpozazo in gena &#039;&#039;tnp&#039;&#039;R za resolvazo. Največ nesestavljenih transpozonov pripada Tn3 družini, nekatere druge družine so še Tn2, Tn7, Tn21 … V 60. In 70. letih prejšnjega stoletja so ljudje vživali velike količine aminopenicilina, kar je povečalo število bakterij s transpozoni z odpornostjo na te antibiotike, hkrati pa se je povečal pomen transpozicij takih transpozonov. Posledično so postali tudi bistveno bolj razširjeni. Med transpozone z genom za β-laktamazo med drugim spadajo družine Tn1, Tn2 in Tn3. Tn3 vsebuje tudi gen za rezistenco na ampicillin in ga najdemo tako v Gram negativnih kot v Gram pozitivnih bakterijah. Zgolj pri Gram negativnih bakterijah vsebuje še gen za β-laktamazo. Transpozoni iz družin Tn1 in Tn2 imajo približno 99 % identičnost v primerjavi s transpozoni iz družine Tn3 v večjem delu zaporedja, identičnost je manjša le na krajših zaporedjih na obeh straneh regije &#039;&#039;res&#039;&#039;. Obe družini pa prav tako nosita gen za β-laktamazo. Najbolj razširjeni med temi tremi družinami so transpozoni iz družine Tn2. Družina Tn2 se pogosto zaradi velike podobnosti označi kar s Tn3.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Tn7 je transpozon, ki lahko nosi gen za rezistenco proti trimetoprimu, streptomicinu in spektinomicinu. Poleg tega pa vsebuje še zapise za 5 proteinov (TnsA, TnsB, TnsC, TnsD in TnsE), ki sodelujejo pri transpoziciji. Zaradi velikega števila proteinov je proces transpozicije pri tem transpozonu zelo dobro reguliran. TnsA in TnsB sta podenoti transpozaze, ki prepoznata dve terminalni zaporedji Tn7, TnsC je protein, ki uporablja ATP ter z njeno hidrolizo kontrolira delovanje transpozaze, TnsD in TnsE pa pomagata pri prepoznavanje tarčnega mesta za transpozicijo Tn7. TnsD prepoznava zaporedje &#039;&#039;glm&#039;&#039;S gena, ki kodira C-konec glukozamin-6-fosfat sintaze. Bolj natančno prepozna mesto &#039;&#039;att&#039;&#039;Tn7, ki se nahaja na transkripcijskem terminatorju za gen &#039;&#039;glm&#039;&#039;S. Pri transpoziciji na to mesto ni negativnih posledic na gostitelja. TnsE ne prepoznava specifičnih zaporedij na DNA. Preferenčno pa usmerja transpozicijo na mobilne plazmide. TnsE torej skrbi za prenos transpozona v novega gostitelja, TnsD pa zagotovi transpozicijo v gostitelju. Transpozaza Tn7 lahko interagira s procesivnostnimi faktorji v procesu replikacije. Ta interakcija sicer omeji proliferacijo transpozona, vendar to favorizira izbiro tarčnega mesta, saj do transpozicije ne pride, dokler transpozaza ne najde primerne tarče.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Tn21 vsebuje gene za odpornost proti živemu srebru, cefalosporinom in sulfonamidom, Tn501 vsebuje gene za bakterijsko rezistenco proti težkim kovinam. Obstajajo pa še mnogi drugi nesestavljeni transpozoni z različnimi geni za odpornost proti za bakterije škodljivim snovem, kot so antibiotiki.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Mu-bakteriofag&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mu-bakteriofag je vrsta fagov z genetskim materialom, ki se obnaša kot insercijska sekvenca, ki je sposobna transpozicije. Tako kot transpozicijski elementi lahko prenaša gen za rezistenco proti antibiotikom. Obdan je z &#039;&#039;att&#039;&#039;R in &#039;&#039;att&#039;&#039;L inverznima zaporedjema, ki ju prepozna transpozaza. Ta bakteriofag prenese gene v dveh ciklih, in sicer litičnem in lizogenem ciklu. Pri replikaciji in prenosu genov so pomembni proteini MuA (za rekombinacijo z bakterijskim genomom), MuB (da najde mesto integracije v genomu), IHF (za integracijo v kromosom) in HU (histonu podobni protein, ki se veže na DNA). Prenos genov poteče v litičnem ciklu, ko se nekateri geni bakterijske rezistence prenesejo na fag Mu, ki lahko nato okuži druge bakterije in tako prenese rezistenčni gen.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Viri==&lt;br /&gt;
* 1.Babakhani, S. &amp;amp; Oloomi, M. Transposons: the agents of antibiotic resistance in bacteria. J Basic Microbiol 58, 905–917 (2018).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 2.Razavi, M., Kristiansson, E., Flach, C.-F. &amp;amp; Larsson, D. G. J. The Association between Insertion Sequences and Antibiotic Resistance Genes. mSphere 5, e00418-20 (2020).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 3.Baquero, F., Tedim, A. P. &amp;amp; Coque, T. M. Antibiotic resistance shaping multi-level population biology of bacteria. Front. Microbiol. 4, (2013).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 4.Haniford DB, Ellis MJ. Transposons Tn10 and Tn5. Microbiol Spectr 2015;3:MDNA3-0002-2014.&lt;br /&gt;
*&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
[[Category:SEM]][[Category:BMB]]&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Transpozoni_kot_prena%C5%A1alci_odpornosti_bakterij_proti_antibiotikom&amp;diff=20204</id>
		<title>Transpozoni kot prenašalci odpornosti bakterij proti antibiotikom</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Transpozoni_kot_prena%C5%A1alci_odpornosti_bakterij_proti_antibiotikom&amp;diff=20204"/>
		<updated>2022-04-18T21:06:05Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: /* Viri */&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;==Uvod==&lt;br /&gt;
Pereča težava današnje družbe je razmah bakterijskih okužb. Številne bakterije so sposobne razviti odpornosti proti antibiotikom, kar otežuje učinkovito zdravljenje in preventivo pred boleznimi. Sokrivec za to so tudi transpozoni, ki prenašajo gene za odpornost proti antibiotikom med bakterijskimi vrstami.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijski transpozoni večinoma spadajo v razred DNA transpozonov nekaj vrst bakterij pa ima tudi retrotranspozone. Lahko se prenašajo s plazmida na plazmid ali z DNA kromosoma na plazmid in obratno ter tako povzročijo prenos odpornosti proti antibiotikom pri bakterijah. Transpozicija lahko poteka po enem od transpozicijskih mehanizmov, to so princip kotalečega se kroga, princip izreži-prilepi in replikativni princip. Prenos transpozona iz ene bakterijske celice v drugo lahko poteče s prenosom plazmida preko konjugacijskega mostička ali preko bakteriofaga. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Pri replikativnih DNA transpozonih se zaporedje transpozona podvoji nato pa se podvojeni del prenese naprej, originalno zaporedje pa ostane na svojem mestu, pri nereplikativnem prenosu pa se zaporedje transpozona izreže iz zaporedja in prenese v plazmid ter preko konjugacije v drugo bakterijsko celico, torej prvotno zaporedje ostane brez  transpozonskega dela zaporedja. Potem ko se zaporedje transpozona prenese, se na njem sintetizira mesto tarčnega podvojevanja, ki je pomembno pri vstavitvi transpozona v tarčno zaporedje. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijski transpozoni imajo značilno strukturo dveh krajših inverznih ponovitev komplementarnih zaporedij (IR), ki objemata osrednji genomski del transpozona. Ta vsebuje sekvenco, ki zapisuje za encim transpozazo. Transpozaze imajo značilno katalitično mesto DDE (Aspartat (D) –aspartat (D) –glutamat (E) in koordiniran kovinski ion. Njihova naloga je identifikacija inverznih ponovitev, rezanje in prenos DNA. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Transpozoni se med bakterijami lahko prenašajo tudi preko bakteriofagov. Prenos transpozona in z njim genov za odpornost proti antibiotikom na ta način ima prednost za bakterijo predvsem zato, ker za prenos ni potreben direkten celični stik. Dober primer fagnega transpozona, ki prenaša odpornost, je fag Mu. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijske transpozonske elemente lahko razdelimo v 4 kategorije: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	insercijska zaporedja (IS)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	sestavljeni transpozoni&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	nesestavljeni transpozoni&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	Mu bakteriofag&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Bakterijski transpozonski elementi==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Insercijska zaporedja&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Insercijska zaporedja so najmanjši genski elementi, krajši od 2500 bp, ki se prenašajo med bakterijskimi genomi in samostojno kodirajo proteine. IS načeloma ne nosijo zapisa za gensko rezistenco, lahko pa so del sestavljenih transpozonov. IS so tako majhni, da poleg IR zaporedja na začetku in koncu transpozona, ki sta potrebna za prenos, vsebuje le zapis za proteine, ki inhibirajo ali aktivirajo transpozonsko aktivnost, ter encime - transposaze, ki sodelujejo pri prenosu transpozonov. Na primer IS911 je dolg 1250 bp. Objemata ga 2 IR zaporedji dolgi 36bp, kodirajoča regija pa zapisuje gene za transpozazo OrfAB in regulatorni protein ORFa.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Sestavljeni transpozoni&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
Sestavljeni transpozoni so obdani z insercijskima zaporedjema, vmes pa lahko vsebujejo enega ali več genov, med katerimi so lahko tudi geni za rezistenco na antibiotike. Njihovo prenašanje med bakterijami predstavlja enega najresnejših izzivov pri zdravljenju infekcijskih bolezni. Nekateri sestavljeni transpozoni so Tn5, Tn10, Tn9, Tn6, Tn903, Tn2680, Tn1525, Tn4003, Tn4001, Tn2010, tn2700, Tn3411, Tn1546, Tn1547, Tn4521, Tn2672 in Tn 1681, med katerimi so najbolj omembe vredni Tn903, Tn9, Tn10 in Tn5. Tn5 obdajata insercijski zaporedji IS50R in IS50L (L in R označujeta levo in desno) in vključuje tri gene za odpornost proti antibiotikom, in sicer gene za odpornost proti neomicinu/kanamicinu (kanR), bleomicinu (bleR) in streptomicinu (strR). Tn5 z vsebujočimi kanR geni lahko najdemo v Gram negativnih, kot so na primer Methylobacterium, Agrobacterium, Caulobacter, Acinetobacter, in Pseudomonas. Pred kratkim je bilo tudi demonstrirano, da lahko Hfq molekula (to je RNA-vezavni protein in regulator eskpresije genov) s kataliziranjem enega snRNP delca in mRNA prepreči prenos Tn5 pri E. coli, in sicer tako, da inhibira IS50 transpozazo. Tn10 obdajata IS10R in IS10L zaporedji in vključuje tetA, tetR, tetC in tetD rezistenčne gene. Tn10, ki vsebuje rezistenčne gene proti antibiotiku tetraciklinu lahko najdemo v bakterijah Proteusu, Pseudomonasu, Salmonelli. Tn10 je tudi sorazmerno dolg (9300 baznih parov). Insercijski zaporedji na vsaki strani sta orientirani obrnjeno in je posledično tudi zapis za transpozazo v protismerni orientaciji. Po dolžini sta prej omenjeni insercijski zaporedji enaki, po sestavi pa ne. Tn9 je nosilec cat rezistenčnega gena na antibiotik kloramfenilol, obdajata pa ga IS1 insercijski zaporedji, ki sta na obeh straneh enaki in enako orientirani. IS1 je bil tudi identificiran kot eno prvih in tudi najmanjših insercijskih zaporedij v bakterijah (z dolžino manj kot 770 baznih parov). Tn6 je nosilec kanR gena, ima dolžino približno 5 kbp in je obdan z IS26. Za IS26 je znano, da se med bakterijskimi plazmidi njegova frekvenca vse bolj povečuje in povzroča prenašanje sestavljenih Tns (še posebej Tn6). Tn1 ima blaTEM rezistenčne gene na ampicilin in ga lahko najdemo na PR1, PR4, R8 in R68 plazmidih. Ta transpozon ima prav tako IS26 insercijsko zaporedje. Tn1 tudi vsebuje colZ gen, ki je znan kot proizvajalec eksotoksina. Tn903 je bil izoliran iz bakterije Salmonella typhimurium. Ta transpozon ima neomicin-kanamicin fosfotransferazo, saj Tn903 kodira aminoglikozid 3′-fosfotransferazo I, ki fosforilira zgoraj omenjena kanamicin in neomicin. Tn903 so tudi že zgodaj identificirali kot enega ključnih predelov plazmida R6. Tn903 obdajata dve unikatni insercijski zaporedji z dolžino okoli 1000 baznih parov.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Nesestavljeni transpozoni&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Nesestavljeni transpozoni nimajo insercijskih zaporedij na obeh koncih, ampak samo inverzni zaporedji na vsaki strani in so nosilci genov za odpornost proti antibiotikom ter gena &#039;&#039;tnp&#039;&#039;A za transpozazo in gena &#039;&#039;tnp&#039;&#039;R za resolvazo. Največ nesestavljenih transpozonov pripada Tn3 družini, nekatere druge družine so še Tn2, Tn7, Tn21 … V 60. In 70. letih prejšnjega stoletja so ljudje vživali velike količine aminopenicilina, kar je povečalo število bakterij s transpozoni z odpornostjo na te antibiotike, hkrati pa se je povečal pomen transpozicij takih transpozonov. Posledično so postali tudi bistveno bolj razširjeni. Med transpozone z genom za β-laktamazo med drugim spadajo družine Tn1, Tn2 in Tn3. Tn3 vsebuje tudi gen za rezistenco na ampicillin in ga najdemo tako v Gram negativnih kot v Gram pozitivnih bakterijah. Zgolj pri Gram negativnih bakterijah vsebuje še gen za β-laktamazo. Transpozoni iz družin Tn1 in Tn2 imajo približno 99 % identičnost v primerjavi s transpozoni iz družine Tn3 v večjem delu zaporedja, identičnost je manjša le na krajših zaporedjih na obeh straneh regije &#039;&#039;res&#039;&#039;. Obe družini pa prav tako nosita gen za β-laktamazo. Najbolj razširjeni med temi tremi družinami so transpozoni iz družine Tn2. Družina Tn2 se pogosto zaradi velike podobnosti označi kar s Tn3.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Tn7 je transpozon, ki lahko nosi gen za rezistenco proti trimetoprimu, streptomicinu in spektinomicinu. Poleg tega pa vsebuje še zapise za 5 proteinov (TnsA, TnsB, TnsC, TnsD in TnsE), ki sodelujejo pri transpoziciji. Zaradi velikega števila proteinov je proces transpozicije pri tem transpozonu zelo dobro reguliran. TnsA in TnsB sta podenoti transpozaze, ki prepoznata dve terminalni zaporedji Tn7, TnsC je protein, ki uporablja ATP ter z njeno hidrolizo kontrolira delovanje transpozaze, TnsD in TnsE pa pomagata pri prepoznavanje tarčnega mesta za transpozicijo Tn7. TnsD prepoznava zaporedje &#039;&#039;glm&#039;&#039;S gena, ki kodira C-konec glukozamin-6-fosfat sintaze. Bolj natančno prepozna mesto &#039;&#039;att&#039;&#039;Tn7, ki se nahaja na transkripcijskem terminatorju za gen &#039;&#039;glm&#039;&#039;S. Pri transpoziciji na to mesto ni negativnih posledic na gostitelja. TnsE ne prepoznava specifičnih zaporedij na DNA. Preferenčno pa usmerja transpozicijo na mobilne plazmide. TnsE torej skrbi za prenos transpozona v novega gostitelja, TnsD pa zagotovi transpozicijo v gostitelju. Transpozaza Tn7 lahko interagira s procesivnostnimi faktorji v procesu replikacije. Ta interakcija sicer omeji proliferacijo transpozona, vendar to favorizira izbiro tarčnega mesta, saj do transpozicije ne pride, dokler transpozaza ne najde primerne tarče.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Tn21 vsebuje gene za odpornost proti živemu srebru, cefalosporinom in sulfonamidom, Tn501 vsebuje gene za bakterijsko rezistenco proti težkim kovinam. Obstajajo pa še mnogi drugi nesestavljeni transpozoni z različnimi geni za odpornost proti za bakterije škodljivim snovem, kot so antibiotiki.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Mu-bakteriofag&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mu-bakteriofag je vrsta fagov z genetskim materialom, ki se obnaša kot insercijska sekvenca, ki je sposobna transpozicije. Tako kot transpozicijski elementi lahko prenaša gen za rezistenco proti antibiotikom. Obdan je z &#039;&#039;att&#039;&#039;R in &#039;&#039;att&#039;&#039;L inverznima zaporedjema, ki ju prepozna transpozaza. Ta bakteriofag prenese gene v dveh ciklih, in sicer litičnem in lizogenem ciklu. Pri replikaciji in prenosu genov so pomembni proteini MuA (za rekombinacijo z bakterijskim genomom), MuB (da najde mesto integracije v genomu), IHF (za integracijo v kromosom) in HU (histonu podobni protein, ki se veže na DNA). Prenos genov poteče v litičnem ciklu, ko se nekateri geni bakterijske rezistence prenesejo na fag Mu, ki lahko nato okuži druge bakterije in tako prenese rezistenčni gen.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Viri==&lt;br /&gt;
* 1.Babakhani, S. &amp;amp; Oloomi, M. Transposons: the agents of antibiotic resistance in bacteria. J Basic Microbiol 58, 905–917 (2018).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 2.Razavi, M., Kristiansson, E., Flach, C.-F. &amp;amp; Larsson, D. G. J. The Association between Insertion Sequences and Antibiotic Resistance Genes. mSphere 5, e00418-20 (2020).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 3.Baquero, F., Tedim, A. P. &amp;amp; Coque, T. M. Antibiotic resistance shaping multi-level population biology of bacteria. Front. Microbiol. 4, (2013).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 4.Haniford DB, Ellis MJ. Transposons Tn10 and Tn5. Microbiol Spectr 2015;3:MDNA3-0002-2014.&lt;br /&gt;
*&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
[[Category:SEM]][[Category:BMB]]&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Transpozoni_kot_prena%C5%A1alci_odpornosti_bakterij_proti_antibiotikom&amp;diff=20203</id>
		<title>Transpozoni kot prenašalci odpornosti bakterij proti antibiotikom</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Transpozoni_kot_prena%C5%A1alci_odpornosti_bakterij_proti_antibiotikom&amp;diff=20203"/>
		<updated>2022-04-18T21:05:02Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: /* Sestavljeni transpozoni */&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;==Uvod==&lt;br /&gt;
Pereča težava današnje družbe je razmah bakterijskih okužb. Številne bakterije so sposobne razviti odpornosti proti antibiotikom, kar otežuje učinkovito zdravljenje in preventivo pred boleznimi. Sokrivec za to so tudi transpozoni, ki prenašajo gene za odpornost proti antibiotikom med bakterijskimi vrstami.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijski transpozoni večinoma spadajo v razred DNA transpozonov nekaj vrst bakterij pa ima tudi retrotranspozone. Lahko se prenašajo s plazmida na plazmid ali z DNA kromosoma na plazmid in obratno ter tako povzročijo prenos odpornosti proti antibiotikom pri bakterijah. Transpozicija lahko poteka po enem od transpozicijskih mehanizmov, to so princip kotalečega se kroga, princip izreži-prilepi in replikativni princip. Prenos transpozona iz ene bakterijske celice v drugo lahko poteče s prenosom plazmida preko konjugacijskega mostička ali preko bakteriofaga. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Pri replikativnih DNA transpozonih se zaporedje transpozona podvoji nato pa se podvojeni del prenese naprej, originalno zaporedje pa ostane na svojem mestu, pri nereplikativnem prenosu pa se zaporedje transpozona izreže iz zaporedja in prenese v plazmid ter preko konjugacije v drugo bakterijsko celico, torej prvotno zaporedje ostane brez  transpozonskega dela zaporedja. Potem ko se zaporedje transpozona prenese, se na njem sintetizira mesto tarčnega podvojevanja, ki je pomembno pri vstavitvi transpozona v tarčno zaporedje. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijski transpozoni imajo značilno strukturo dveh krajših inverznih ponovitev komplementarnih zaporedij (IR), ki objemata osrednji genomski del transpozona. Ta vsebuje sekvenco, ki zapisuje za encim transpozazo. Transpozaze imajo značilno katalitično mesto DDE (Aspartat (D) –aspartat (D) –glutamat (E) in koordiniran kovinski ion. Njihova naloga je identifikacija inverznih ponovitev, rezanje in prenos DNA. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Transpozoni se med bakterijami lahko prenašajo tudi preko bakteriofagov. Prenos transpozona in z njim genov za odpornost proti antibiotikom na ta način ima prednost za bakterijo predvsem zato, ker za prenos ni potreben direkten celični stik. Dober primer fagnega transpozona, ki prenaša odpornost, je fag Mu. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Bakterijske transpozonske elemente lahko razdelimo v 4 kategorije: &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	insercijska zaporedja (IS)&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	sestavljeni transpozoni&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	nesestavljeni transpozoni&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
-	Mu bakteriofag&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Bakterijski transpozonski elementi==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Insercijska zaporedja&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Insercijska zaporedja so najmanjši genski elementi, krajši od 2500 bp, ki se prenašajo med bakterijskimi genomi in samostojno kodirajo proteine. IS načeloma ne nosijo zapisa za gensko rezistenco, lahko pa so del sestavljenih transpozonov. IS so tako majhni, da poleg IR zaporedja na začetku in koncu transpozona, ki sta potrebna za prenos, vsebuje le zapis za proteine, ki inhibirajo ali aktivirajo transpozonsko aktivnost, ter encime - transposaze, ki sodelujejo pri prenosu transpozonov. Na primer IS911 je dolg 1250 bp. Objemata ga 2 IR zaporedji dolgi 36bp, kodirajoča regija pa zapisuje gene za transpozazo OrfAB in regulatorni protein ORFa.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Sestavljeni transpozoni&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
Sestavljeni transpozoni so obdani z insercijskima zaporedjema, vmes pa lahko vsebujejo enega ali več genov, med katerimi so lahko tudi geni za rezistenco na antibiotike. Njihovo prenašanje med bakterijami predstavlja enega najresnejših izzivov pri zdravljenju infekcijskih bolezni. Nekateri sestavljeni transpozoni so Tn5, Tn10, Tn9, Tn6, Tn903, Tn2680, Tn1525, Tn4003, Tn4001, Tn2010, tn2700, Tn3411, Tn1546, Tn1547, Tn4521, Tn2672 in Tn 1681, med katerimi so najbolj omembe vredni Tn903, Tn9, Tn10 in Tn5. Tn5 obdajata insercijski zaporedji IS50R in IS50L (L in R označujeta levo in desno) in vključuje tri gene za odpornost proti antibiotikom, in sicer gene za odpornost proti neomicinu/kanamicinu (kanR), bleomicinu (bleR) in streptomicinu (strR). Tn5 z vsebujočimi kanR geni lahko najdemo v Gram negativnih, kot so na primer Methylobacterium, Agrobacterium, Caulobacter, Acinetobacter, in Pseudomonas. Pred kratkim je bilo tudi demonstrirano, da lahko Hfq molekula (to je RNA-vezavni protein in regulator eskpresije genov) s kataliziranjem enega snRNP delca in mRNA prepreči prenos Tn5 pri E. coli, in sicer tako, da inhibira IS50 transpozazo. Tn10 obdajata IS10R in IS10L zaporedji in vključuje tetA, tetR, tetC in tetD rezistenčne gene. Tn10, ki vsebuje rezistenčne gene proti antibiotiku tetraciklinu lahko najdemo v bakterijah Proteusu, Pseudomonasu, Salmonelli. Tn10 je tudi sorazmerno dolg (9300 baznih parov). Insercijski zaporedji na vsaki strani sta orientirani obrnjeno in je posledično tudi zapis za transpozazo v protismerni orientaciji. Po dolžini sta prej omenjeni insercijski zaporedji enaki, po sestavi pa ne. Tn9 je nosilec cat rezistenčnega gena na antibiotik kloramfenilol, obdajata pa ga IS1 insercijski zaporedji, ki sta na obeh straneh enaki in enako orientirani. IS1 je bil tudi identificiran kot eno prvih in tudi najmanjših insercijskih zaporedij v bakterijah (z dolžino manj kot 770 baznih parov). Tn6 je nosilec kanR gena, ima dolžino približno 5 kbp in je obdan z IS26. Za IS26 je znano, da se med bakterijskimi plazmidi njegova frekvenca vse bolj povečuje in povzroča prenašanje sestavljenih Tns (še posebej Tn6). Tn1 ima blaTEM rezistenčne gene na ampicilin in ga lahko najdemo na PR1, PR4, R8 in R68 plazmidih. Ta transpozon ima prav tako IS26 insercijsko zaporedje. Tn1 tudi vsebuje colZ gen, ki je znan kot proizvajalec eksotoksina. Tn903 je bil izoliran iz bakterije Salmonella typhimurium. Ta transpozon ima neomicin-kanamicin fosfotransferazo, saj Tn903 kodira aminoglikozid 3′-fosfotransferazo I, ki fosforilira zgoraj omenjena kanamicin in neomicin. Tn903 so tudi že zgodaj identificirali kot enega ključnih predelov plazmida R6. Tn903 obdajata dve unikatni insercijski zaporedji z dolžino okoli 1000 baznih parov.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Nesestavljeni transpozoni&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Nesestavljeni transpozoni nimajo insercijskih zaporedij na obeh koncih, ampak samo inverzni zaporedji na vsaki strani in so nosilci genov za odpornost proti antibiotikom ter gena &#039;&#039;tnp&#039;&#039;A za transpozazo in gena &#039;&#039;tnp&#039;&#039;R za resolvazo. Največ nesestavljenih transpozonov pripada Tn3 družini, nekatere druge družine so še Tn2, Tn7, Tn21 … V 60. In 70. letih prejšnjega stoletja so ljudje vživali velike količine aminopenicilina, kar je povečalo število bakterij s transpozoni z odpornostjo na te antibiotike, hkrati pa se je povečal pomen transpozicij takih transpozonov. Posledično so postali tudi bistveno bolj razširjeni. Med transpozone z genom za β-laktamazo med drugim spadajo družine Tn1, Tn2 in Tn3. Tn3 vsebuje tudi gen za rezistenco na ampicillin in ga najdemo tako v Gram negativnih kot v Gram pozitivnih bakterijah. Zgolj pri Gram negativnih bakterijah vsebuje še gen za β-laktamazo. Transpozoni iz družin Tn1 in Tn2 imajo približno 99 % identičnost v primerjavi s transpozoni iz družine Tn3 v večjem delu zaporedja, identičnost je manjša le na krajših zaporedjih na obeh straneh regije &#039;&#039;res&#039;&#039;. Obe družini pa prav tako nosita gen za β-laktamazo. Najbolj razširjeni med temi tremi družinami so transpozoni iz družine Tn2. Družina Tn2 se pogosto zaradi velike podobnosti označi kar s Tn3.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Tn7 je transpozon, ki lahko nosi gen za rezistenco proti trimetoprimu, streptomicinu in spektinomicinu. Poleg tega pa vsebuje še zapise za 5 proteinov (TnsA, TnsB, TnsC, TnsD in TnsE), ki sodelujejo pri transpoziciji. Zaradi velikega števila proteinov je proces transpozicije pri tem transpozonu zelo dobro reguliran. TnsA in TnsB sta podenoti transpozaze, ki prepoznata dve terminalni zaporedji Tn7, TnsC je protein, ki uporablja ATP ter z njeno hidrolizo kontrolira delovanje transpozaze, TnsD in TnsE pa pomagata pri prepoznavanje tarčnega mesta za transpozicijo Tn7. TnsD prepoznava zaporedje &#039;&#039;glm&#039;&#039;S gena, ki kodira C-konec glukozamin-6-fosfat sintaze. Bolj natančno prepozna mesto &#039;&#039;att&#039;&#039;Tn7, ki se nahaja na transkripcijskem terminatorju za gen &#039;&#039;glm&#039;&#039;S. Pri transpoziciji na to mesto ni negativnih posledic na gostitelja. TnsE ne prepoznava specifičnih zaporedij na DNA. Preferenčno pa usmerja transpozicijo na mobilne plazmide. TnsE torej skrbi za prenos transpozona v novega gostitelja, TnsD pa zagotovi transpozicijo v gostitelju. Transpozaza Tn7 lahko interagira s procesivnostnimi faktorji v procesu replikacije. Ta interakcija sicer omeji proliferacijo transpozona, vendar to favorizira izbiro tarčnega mesta, saj do transpozicije ne pride, dokler transpozaza ne najde primerne tarče.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Tn21 vsebuje gene za odpornost proti živemu srebru, cefalosporinom in sulfonamidom, Tn501 vsebuje gene za bakterijsko rezistenco proti težkim kovinam. Obstajajo pa še mnogi drugi nesestavljeni transpozoni z različnimi geni za odpornost proti za bakterije škodljivim snovem, kot so antibiotiki.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
===&#039;&#039;&#039;Mu-bakteriofag&#039;&#039;&#039;===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mu-bakteriofag je vrsta fagov z genetskim materialom, ki se obnaša kot insercijska sekvenca, ki je sposobna transpozicije. Tako kot transpozicijski elementi lahko prenaša gen za rezistenco proti antibiotikom. Obdan je z &#039;&#039;att&#039;&#039;R in &#039;&#039;att&#039;&#039;L inverznima zaporedjema, ki ju prepozna transpozaza. Ta bakteriofag prenese gene v dveh ciklih, in sicer litičnem in lizogenem ciklu. Pri replikaciji in prenosu genov so pomembni proteini MuA (za rekombinacijo z bakterijskim genomom), MuB (da najde mesto integracije v genomu), IHF (za integracijo v kromosom) in HU (histonu podobni protein, ki se veže na DNA). Prenos genov poteče v litičnem ciklu, ko se nekateri geni bakterijske rezistence prenesejo na fag Mu, ki lahko nato okuži druge bakterije in tako prenese rezistenčni gen.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Viri==&lt;br /&gt;
* 1.Babakhani, S. &amp;amp; Oloomi, M. Transposons: the agents of antibiotic resistance in bacteria. J Basic Microbiol 58, 905–917 (2018).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 2.Razavi, M., Kristiansson, E., Flach, C.-F. &amp;amp; Larsson, D. G. J. The Association between Insertion Sequences and Antibiotic Resistance Genes. mSphere 5, e00418-20 (2020).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 3.Baquero, F., Tedim, A. P. &amp;amp; Coque, T. M. Antibiotic resistance shaping multi-level population biology of bacteria. Front. Microbiol. 4, (2013).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
*&lt;br /&gt;
*&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
[[Category:SEM]][[Category:BMB]]&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=BIO2_Povzetki_seminarjev_2021&amp;diff=19608</id>
		<title>BIO2 Povzetki seminarjev 2021</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=BIO2_Povzetki_seminarjev_2021&amp;diff=19608"/>
		<updated>2021-12-12T15:10:44Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: /* Lev Jošt - Tvorba ROS in njen prispevek k signalizaciji in k razumevanju bolezni */&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;= POVZETKI SEMINARJEV BIOKEMIJA 2021/22 =&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Klara Ažbe - Vpliv metabolitov Krebsovega cikla na fiziologijo in bolezni==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mitohondrij je celični organel, ki pomembno prispeva k delovanju celice. Njegova glavna naloga je proizvodnja energije, poleg tega pa ne smemo zanemariti vloge stranskih produktov, ki ob proizvodnji energije nastanejo. Pri pridobivanje energije ima pomembno vlogo Krebsov cikel, v katerem nastane kar nekaj metabolitov. Njihova pomembnost je bila prvotno prepoznana pri sintezi makromolekul (nukleotidov, proteinov, lipidov), kasneje pa se je izkazalo, da so tudi zelo pomembne signalne molekule, ki nadzorujejo modifikacije kromatina, hipoksični odziv, metilacije DNA in imunski odziv. Količina posameznega intermediata je v celici natančno regulirana, vendar pa se lahko zgodi, da pride do določene mutacije, na primer mutacije encima za razgradnjo metabolita, posledično pa se ta metabolit začne kopičiti v celici. To lahko privede do sprememb v fiziologiji celice in do različnih bolezni, kakšne bodo te spremembe in bolezni pa je odvisno od vrste metabolita. Med bolj vplivne metabolite spadajo acetil-CoA, α-ketoglutarat, sukcinat in fumarat, pomemben je tudi 2-hidroksiglutarat, ki sicer ni intermediat cikla TCA, vendar pa je povezan s ciklom tako, da se sintetizira iz α-ketoglutarata. Ugotovitve, kako povečane količine metabolitov vplivajo na celico in posledično na organizem ter bolezni, so pomembne predvsem za zdravljenje bolezni, zato se za prihodnost pričakuje, da bo še večja količina znanja na tem področju prenesena v klinično uporabo.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Pia Mencin - Akonitaza in njena vloga v celici==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Načeloma pripisujemo določenemu proteinu eno funkcijo, poznamo pa tudi proteine, ki imajo dve popolnoma različni nalogi v celici. To so tako imenovani »moonlighting proteins« oziroma večnamenski proteini. Tak večnamenski protein  je tudi citosolna akonitaza (cAcn). Ko je nanj vezana prostetična skupina: Fe-S kletka, deluje kot katalizator pretvorbe citrata v izocitrat.  Ob razdružitvi Fe-S kletke deluje kot IRP1 (odzivni protein za železo). Ta ima zmožnost vezave na mRNA proteinov, ki sodelujejo pri metabolizmu železa,  ter tako zagotavlja homeostazo železa v celici. Ob razdružitvi kletke cAcn in nastanku apoencima znanega kot IRP1 pride do konformacijskih sprememb v proteinu pri katerih nastane mesto za vezavo na IRE (odzivni element za železo), to je reža, ki na novo nastane med domenama 3 in 4 cAcn.&lt;br /&gt;
Poleg citosolne poznamo tudi mitohondrijsko akonitazo (mAcn), ki je njena izooblika. Sodeluje v TCA ciklu, in sicer katalizira pretvorbo citrata v izocitrat, ter ščiti mtDNA pred oksidativnimi poškodbami. &lt;br /&gt;
Proteina sta tarča ROS, ti ju poškodujejo (oksidirajo) in inaktivirajo. mAcn ob inaktivaciji z ROS posredno inhibira nastanek ROS v mitohondriju in tako deluje kot regulator oksidativnega stresa. Za preprečevanje kopičenja oksidirane mAcn v mitohondriju poskrbi Lon proteaza. &lt;br /&gt;
Izocima mAcn ter cAcn sta še en izmed mnogih dokazov kako natančno nadzorovano in prepleteno je delovanje procesov v celici.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Marko Kovačić - Vloga citokinov poddružine IL-1 pri regulaciji glikolize in njihov vpliv na bolezni, povezane z glikolizo==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Citokini so proteini z majhno molekulsko maso (približno 5-25 kDa), ki so pomembni v celičnem signaliziranju. Delujejo tako, da se vežejo na specifične membranske receptorje in s tem regulirajo transkripcijo genov ali njihovih transkripcijskih faktorjev. Tako sprožijo imunski odziv na vnetje, infekcijo ali na druga stanja.  S svojimi signalnimi mehanizmi kontrolirajo rast in aktivnost drugih celic imunskega sistema ter krvnih celic. Interlevkini so skupina citokinov, ki imajo različne funkcije, predvsem so pomembni pri komunikaciji med celicami imunskega sistema, pri vnetnih in imunomodulatornih procesih. Citokini IL-1a, IL-1β, IL-1Ra in IL-33 so zelo pomembni člani družine interlevkinov interlevkin-1 (IL-1). Številne raziskave so pokazale, da je ta poddružina interlevkinov pomembna pri regulaciji glikolize, tj. poti, ki je pomembna za pridobivanje energije v obliki ATP. Glikolizo lahko regulirajo na nivoju vnosa glukoze v celice ali pa na nivoju reguliranja glikolitičnih encimov, ker se njihove signalne poti prepletajo s signalnimi potmi, ki so ključne pri regulaciji glikolize. Disregulacija glikolize lahko vodi do številnih bolezni (rak, diabetes tipa 2, reumatoidni artritis, osteoartritis, astma), poddružina IL-1 pa z regulacijo glikolize lahko vpliva na potek le-teh. Vpliv na delovanje citokinov IL-1a, IL-1β, IL-1Ra in IL-33  tako daje številne možnosti pri zdravljenju z glikolizo povezanih bolezni in prav to je predmet številnih raziskav.&lt;br /&gt;
 &lt;br /&gt;
==Janja Bohte - Vloga in regulacija aerobne glikolize pri hepatocelularnem karcinomu==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Rak jeter je šesta najpogostejša oblika raka na svetu. Kar 90% primarnih rakov jeter predstavlja hepatocelularni karcinom (HCC). Za zdravljenje te bolezni se med drugim uporabljalo zdravila za zaviranje specifičnih signalnih poti, ki so odgovorne za rast tumorja. Tako zdravilo je sorafenib, zaviralec tirozin kinaze, na katerega organizem zaradi povečane aerobne glikolize v nekem časovnem obdobju razvije odpornost. Aerobna glikoliza oziroma Warburgov učinek je pojav, ko tumorske celice pretvarjajo glukozo v laktat kljub zadostni količini kisika. Prehod z metabolične poti oksidativne fosforilacije na pot glikolize pri HCC spodbuja celično proliferacijo ter ponuja ugodno mikrookolje za napredovanje tumorja. Odgovorna je za regulacijo invazije, metastaze, angiogeneze in odpornosti na zdravila pri HCC. Mehanizem Warburgovega učinka je kompleksen, pomembno vlogo pa imajo trije encimi, ki sodelujejo v sami presnovi glukoze: heksokinaza 2 (HK2), fosfofruktokinaza 1 (PFK1) in piruvat kinaza tipa M2 (PKM2). Ti so regulirani na več načinov in s številnimi transkripcijskimi faktorji ter metaboličnimi potmi, kot so AMPK, PI3K/Akt metabolična pot, HIF-1α, c-Myc ter nekodirajoče RNA. Zaradi pomembne vloge glikolize pri napredovanju tumorja, je usmerjanje na glavne dejavnike na tej poti, kot je inhibicija HK2, PFK ali PKM2, ključnega pomena za razvoj novih terapevtskih pristopov za zdravljenje HCC.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Urša Štefan - Signalizacija STING - obseg delovanja in povezava z rakavimi obolenji==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Pojav dvovijačne DNA v citosolu je v celici največkrat pokazatelj celične abnormalnosti – virusne okužbe, poškodbe dednega materiala, oksidativnega stresa ali rakave transformacije. Celice so zato razvile načine zaznavanja prisotnosti DNA v citosolu. Eden izmed takšnih je signalna pot STING. Protein ciklična GMP-AMP sintetaza po vezavi z DNA sintetizira cGAMP, ki aktivira protein STING, vezan v membrani endoplazmatskega retikuluma. Ta se transportira do Golgijevega aparata, kjer mu vezava kinaze TBK1 omogoča aktivacijo transkripcijskih faktorjev IRF3 in NF-κB za citokine. Poleg odziva na citosolno DNA protein STING sodeluje tudi v regulaciji celičnega metabolizma, celičnega cikla, pri indukciji avtofagije, regulaciji ravni kalcija in kot senzor poškodb DNA. Zaradi svojega velikega obsega delovanja je signalna pot STING tarča razvoja številnih zdravil, ki pa je do zdaj bil le delno uspešen. Članek opiše signalno pot STING, njene funkcije v celici in na kratko povzame vlogo signalne poti pri zdravljenju rakavih obolenj.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Hana Glavnik - S-glutationilacija proteinov kot globalni inhibitor celičnega metabolizma za zmanjšanje občutljivosti signalov vodikovega peroksida==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
S-glutationilacija proteinov ima v celici pomembno vlogo. Ob zvišanju koncentracije reaktivnih kisikovih spojin (ROS), se v celici vzpostavi stanje oksidativnega stresa. Ker so za celico te spojine toksične, je razvila mehanizme, ki ji pomagajo uravnavati njihovo koncentracijo in zaščitijo ostale spojine v celici pred ireverzibilno oksidacijo. Najbolj pomembna spojina med ROS je vodikov peroksid, ki ima poleg toksičnih vplivov tudi lastnosti sekundarnega sporočevalca. Ob nastopu oksidativnega stresa v celici in povišane koncentracije vodikovega peroksida, zaznata signale encima GRX1 in GRX2, ki glutationilirata proteine z vezavo glutationa (GSH) na tiolne skupine cisteinov (-SH) in jih tako zaščitita pred poškodbami. Hkrati se s potekom S-glutationilacije aktivirajo tiste metabolične poti, pri katerih nastajajo antioksidanti, največkrat NADPH, ki pomagajo razgraditi vodikov peroksid in ostale ROS spojine. Tiste poti, pri katerih nastajajo ROS spojine so inhibirane s strani S-glutationilacije, dokler ne pride do signala, ki ga sprejmeta GRX1/2. To sproži njune deglutationilacijske aktivnosti in z deglutationilacijo encimov se stanje v celici se normalizira in metabolične poti lahko potekajo nemoteno.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Tinkara Butara - Transmembranska signalizacija v bakterijskih kemoreceptorjih==&lt;br /&gt;
Kemotaksija je oblika gibanja, kjer se organizem giba k ugodnemu kemijskemu gradientu ali stran od toksičnega oziroma neugodnega. Oblika gibanja je značilna za premikajoče se bakterije in arheje. Kemotaksija igra pomembno vlogo pri iskanju hrane, oblikovanju biofilma in tudi pri patogenezi. Takšno gibanje, s prepoznavanjem različnih kemijskih zvrsti, nadzorujejo kemoreceptorji. To so transmembranski proteini, ki vežejo snovi iz okolice in tako sprožijo nadaljnjo signalizacijo znotraj celice, ta pa vodi do spremembe v rotaciji bička. Vezava ugodne signalne molekule vodi do konformacijskih sprememb v kemoreceptorju, ki preprečijo avtofosforilacijo kinaze CheA, ki omogoča fosforilacijo proteina CheY. Fosforiliran CheY se namreč veže na motor bička in tako spremeni njegovo rotacijo iz nasprotne smeri urinega kazalca v smer urinega kazalca. Ko biček rotira v smeri urinega kazalca, to spodbudi naključno gibanje v prostoru, ki na novo orientira bakterijsko celico. Če biček rotira v nasprotni smeri urinega kazalca, pa se celica giba naravnost proti ugodnemu kemijskemu gradientu. Prilagoditev na signal nadzorujejo regulatorni proteini (CheR, CheB, za zaključek signala pa je pomemben protein CheZ, ki hidrolizira CheY-P. Kemoreceptorji se nahajajo na polih bakterijske celice in se združujejo v skupke, kar predstavlja dodatno možnost prilagoditve na kemijski signal.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==David Valte - Jedrni hormonski receptorji in izražanje genov==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Jedrni hormonski receptorji (NHR) so poleg g-proteinov, receptorjev z encimsko aktivnostjo in ionskih kanalčkov le še eden od načinov biosignalizacije, ki pa se po načinu delovanja od drugih precej razlikuje. Jedrni hormonski receptorji neposredno vplivajo na transkripcijo in tako posledično tudi na izražanje genov. Z vezavo ligandov, kot so na primer vitamin d, retinoidni hormoni, tiroidni hormoni in steroidi, na receptor, pride na hormonskih receptorjih do konformacijskih sprememb. Spremembe v konformaciji receptorja pa omogočajo interakcije receptorja s specifičnimi sekvencami DNA. Te sekvence imenujemo hormonski odzivni elementi HRE/HREs, HRE se ponavadi nahajajo znotraj promotorja tarčnega gena, na teh mestih NHR delujejo kot aktivatorji transkripcije DNA. Transkripcija DNA povzroči nastanek mRNA z zapisom za nastanek proteinov, katere celica potrebuje, preko teh pa se lahko odzove na zunanje motnje. Prepoznavo zaporedij HRE in vezavo na DNA omogoča specifična sestava jedrnih receptorjev. Te so sestavljeni iz večih domen, vsaka od teh ima specifično funkcijo brez katere delovanje NR ni mogoče. Posebne domene omogočajo prepoznavo HRE, vezavo na DNA in dimerizacijo z drugimi NR. Na hormonske odzivne elemente se lahko NHR vežejo v obliki monomerov, lahko pa se NHR-ji vežejo drug z drugim, tako nastajajo dimeri. Dimeri omogočajo drugačne afinitete za vezavo z DNA.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Alliana Kolar - Pomen upravljanja z agonisti, antagonisti in signalnimi modulatorji receptorjev abscizinske kisline (ABA) v agronomiji==&lt;br /&gt;
Abscizinska kislina (ABA) je naravno prisoten rastlinski hormon, katerega koncentracija se poviša, ko je rastlina pod vplivom stresa in se na stres tudi odzove. Igra vlogo pri zapiranju listnih rež, ko rastlini primanjkuje vode, inhibira kalitev, spodbuja dormanco, vpliva na cvetenje, staranje listov, zorenju plodov ipd. Ker je sintetična ABA nestabilna in ob zunanjem nanosu ne pokaže vpliva na rastlino, je potrebno z modeliranjem antagonistov oziroma agonistov sintetizirati analoge, ki bi bodisi promovirali/oponašali ali zavirali njeno delovanje. Z njimi bi agronomi lahko manipulirali na delovanje rastline in imeli nadzor nad njim, kar bi posledično prineslo večji donos zaradi večje količine in kakovosti proizvodov. Za to pa je potrebno dobro poznati molekulo in njeno biokemijsko delovanje ob signalizaciji in tudi druge spojine, s katerimi regulira procese v rastlini. Ker pa je to področje še dokaj neraziskano in nepojasnjeno, je zelo težko najti prave analoge in dodatno sintetizirati še boljše. Vendar pa po odkritju sintetične molekule pirabaktin, ki je delovala kot primeren agonist, so odkrili še 14 receptorjev ABA, imenovanih PYR (Pyrabactin Resistance)/PYR-like/(RCARs)Regulatory Components of ABA Receptors in s tem še boljše razumeli delovanje ABA in njene signalizacije.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Gaja Starc - Medsebojni vpliv vodikovega sulfida in drugih signalnih molekul pri uravnavanju signaliziranja celic zapiralk in odzivu na abiotski oziroma biotski stres==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Vse daljša sušna obdobja, visoke temperature in nizka vlažnost, od pritrjenih organizmov zahtevajo prilagoditve, s katerimi lahko izboljšajo uporabo energije in kemijskih virov v raznovrstnih razmerah. Kot mehanizem, ki omogoča nadzor nad ravnotežjem med izgubo vode in izmenjavo plinov, so rastline v krovnih tkivih razvile aktivno regulirane odprtine – reže. Reže so ključne za fiksacijo atmosferskega ogljika pri fotosintezi, hkrati pa rastline zaradi rež izgubijo 95 % vode v ozračje. Regulacija premikanja listnih rež je ključna za uspešno rast in razvoj rastline. Premikanje rež je tesno povezano z zaporedjem kompleksnih procesov zaznavanja, prenosa in uravnavanja signalov v celicah zapiralkah. Vodikov sulfid (H2S) uravnava premikanje celic zapiralk in sodeluje pri uravnavanju in prenosu signalov v organizmih ter tako sodeluje pri prilagajanju rastline na spremembe v okolju in odzivih na abiotski oziroma biotski stres. Novejše študije pri navadnem repnjakovcu (&#039;&#039;Arabidopsis thaliana&#039;&#039;) so pokazale, da zunanji H2S spodbuja zapiranje listnih rež, pri čemer sodeluje s fitohormoni in signalnimi molekulami. Glavna signalna pot, pri kateri sodeluje, je persulfidacija proteinov – post-translacijska modifikacija pri kateri so tiolne skupine cisteinskih ostankov modificirane v persulfidne.  Sodeluje tudi pri uravnavanju aktivnosti ionskih kanalčkov v celicah zapiralkah, ki so ključni pri nadzoru premikanja listnih rež in pomaga omiliti oksidativni stres z vplivom na koncentracijo reaktivnih kisikovih zvrsti v celicah zapiralkah.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Andraž Rotar - Vloga signalne poti JAK/STAT in njeni inhibitorji pri človeških boleznih==&lt;br /&gt;
Signalna pot kinaze janus (angl. janus kinase-JAK) in signalnega prenašalca in aktivatorja transkripcije (angl. signal transducer and activator of transcription-STAT), krajše JAK/STAT, je prisotna v večini večceličnih organizmih. Mehanizem poti je eleganten in presenetljivo preprost način, s katerim zunajcelični faktorji povzročijo gensko izražanje. Prepisani geni so nujni pri bioloških procesih kot so celična rast, diferenciacija, apoptoza in imunskem odzivu.  Signalizacija JAK/STAT je v celici močno regulirana. Primarni regulatorji spadajo v tri skupine, in sicer med zaviralce citokinske signalizacije (angl. suppressor of cytokine signaling-SOCS), proteinske inhibitorje aktiviranih STAT (angl. protein inhibitors of activated STAT-PIAS) in protein tirozinske fosfataze (angl. protein tyrosine phosphatase-PTP). Če se v organizmu pojavi okvara signalne poti ali njene regulacije to privede do raznih avtoimunih bolezni kot so revmatoidni artritis, Parkinsonova bolezen ter multipla skleroza. Ker pa pot nadzira tudi celični cikel, lahko mutacije genov, odgovornih za sintezo sestavnih delov poti, privedejo do rakavih obolenj. Da bi se z temi patološkimi stanji lahko spopadali, raziskovalci z veliko vnemo iščejo nove vedno boljše inhibitorje signale poti. Do ne daljnega  smo poznali le inhibitorje za JAK, sedaj pa jih razvijajo tudi za STAT. V seminarski nalogi so predstavljeni vsi zgoraj našteti proteini, patološka stanja povezana z JAK/STAT, ter inhibitorji za njihovo zdravljenje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Pia Špehar - Integrini in njihova vloga pri vezikularnem transportu==&lt;br /&gt;
Integrini so adhezijski receptorski proteini, zgrajeni iz dveh podenot. Imajo mnogo različnih funkcij, in sicer povezujejo citoskelet in zunajcelični matriks, s tem posledično povežejo notranjost celice z njeno okolico. Delujejo kot prenašalci signalov in spodbujevalci celične proliferacije in preživetja. Sodelujejo pri imunskem odzivu, apoptozi, celični diferenciaciji, mnoge raziskave pa so pokazale, da so ključni tudi pri signalizaciji in regulaciji vezikularnega transporta. Ključno vlogo imajo pri eksocitozi biosintetskih in sekretornih veziklov, saj nase vežejo mikrotubule in preko njih usmerjajo vezikle do celične površine. Sodelujejo tudi pri procesu degranulacije v trombocitih in levkocitih, pri agregaciji trombocitov in posledično pri hemostazi, ki je prva stopnja celjenja ran.  V citotoksičnih limfocitih prepoznava antigena na tarčni celici povzroči sidranje mikrotubulov na integrine. Ti se nato povežejo z medcelično adhezijsko molekulo in tako sprožijo prenos signala za celično smrt tarčne celice. V trombocitih pa integrin-posredovana degranulacija α-granul omogoči agregacijo trombocitov in s tem nastanek krvnega strdka, ki zaustavi krvavitev. Integrini sodelujejo tudi pri endocitozi, in sicer pri vnosu virusov in zunajceličnih veziklov v celico. V celico se lahko prenese virus, vsebina veziklov ali pa samo signal, ki sproži nadaljnje procese znotraj celice. Pomembni so tudi za prenos signalov pri endocitotskem recikliranju receptorjev tirozin kinaz (RTK).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Tina Urh - Nevrotransmiterji, agonisti in antagonisti receptorjev kot tarča zdravljenja==&lt;br /&gt;
Nevrotransmiterji acetilholin, norepinefrin, dopamin, serotonin, subtanca P, GABA in glutamat posredujejo stimulatorne ali inhibitorne živčne funkcije preko vezave na specifične receptorje. Izločajo se iz avtonomnih živcev, ganglijev, nadledvične žleze, rakavih celic in celic imunskega sistema. Spremenjena komunikacija med živčnim in imunskim sistemom in uporaba receptorskih agonistov/antagonistov je vedno pogosteje tarča zdravljenja nevrodegenerativnih, imunopatoloških in avtoimunskih bolezni. E in NE sta stresna hormona in interagirata z α in β adrenergičnimi receptorji; aktivacija β2-AR (agonist izoprotenerol) spoodbuja rast tumorja. Blokira jo antagonist propranolol. GABA je pomirjevalo in antidiabetično sredstvo, stimulira rakavo proliferacijo preko GABAA; A receptorski agonist je muscimol. Vendar pa je vpliv GABA odvisen od tipa raka in receptorja. Serotonin (5-HT) ima vlogo vazokonstriktorja; proizvajajo ga imunske celice. Antagonisti 5-HT2AR imajo antipsihotične in antidepresivne lastnosti. Povečanje števila receptorjev 5-HT1A kaže na zaviranje izločanja serotonina in posledično povečano depresivnost. Dopamin oz. agonisti DA receptorjev izkazujejo inhibitorni efekt na rast tumorja. Neselektivni agonisti so učinkoviti za zdravljenje bolezni CŽS. Tudi vloge dopamin receptorjev so specifične glede na tip tumorja. Substanca P spada v družino nevropeptidov in spodbuja razvoj raka. Inhibicija receptorja NK-1 s specifičnimi antagonisti povzroči antitumorske učinke. Glutagonski agonisti lahko sprožijo smrt T celic, odvečni Glu vpliva na razvoj epilepsije in raka. Za zdravljenje bi se lahko uporabljalo inhibitorje mGluR1.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Katja Resnik - Signalna omrežja, ki povzročajo raka ==&lt;br /&gt;
Normalno delovanje vsake posamezne celice in posledično organizma kot celote nam omogočajo številni procesi, kjer je ključnega pomena njihova regulacija. Tako lahko spremenjene signalne poti, ki v naših celicah uravnavajo predvsem procese celične proliferacije, diferenciacije, apoptoze in na splošno celičnega cikla privedejo do številnih bolezni, med drugim tudi do razvoja raka. Dve ključni poti, ki sta pri večini človeških oblik raka napačno regulirani sta signalni poti RAS in APC. RAS proteini so vrsta G proteinov, ki regulirajo normalen potek celičnega cikla preko povezovanja z efektorskimi proteini. Onkogene oblike RAS proteinov, ki so posledica mutacij, povzročijo njihovo nenehno aktivnost, kar vodi v transformacijo signalne poti. Ta se odraža v izražanju genov, ki se sicer naj ne bi izražali, kar lahko vodi v nenehno spodbujanje celične proliferacije. Po drugi strani pa do podobnega učinka pride tudi zaradi napak v signalni poti APC, ko okvarjen protein APC ne more več opravljati funkcije zmanjševanja koncentracije ključnega proteina za regulacijo in prehod iz faze celične proliferacije v fazo diferenciacije in staranja celic. Proučevanje takšnih signalnih poti nam omogoča spoznavanje vplivov določenih mutacij na posamezne procese in njihovo prispevanje k razvoju raka. Pomembno je le, da na signalne poti gledamo kot na prepletena omrežja, kar lahko ključno prispeva k razvoju uspešnih zdravil in metod zdravljenja omenjene bolezni.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Nuša Kos Thaler - Motnje metabolizma glikogena in njihove posledice ==&lt;br /&gt;
Glikogen je makromolekula, sestavljena iz enot glukoze, ki jo najdemo predvsem v jetrih in mišicah. Njegov metabolizem je ključnega pomena za pridobivanje in shranjevanje energije v človeškem telesu. Če ne deluje pravilno, lahko povzroča različne bolezni, ki jim s skupnim imenom rečemo bolezni kopičenja glikogena (glycogen storage diseases – GSD). Te so praviloma genetske in povezane z mutacijami genov, ki kodirajo encime za sintezo, razgradnjo ali regulacijo dolžine glikogenskih verig. Pri bolezni kopičenja glikogena tipa I je mutiran encim α-glukoza-6-fosfataza, ki katalizira pretvorbo iz glukoze-6-fosfata v glukozo, kar lahko povzroči hipoglikemijo pacientov. Pri bolezni kopičenja glikogena tipa II je mutiran encim za razgradnjo glikogena v lizosomu (kisla α-glukozidaza). Zaradi neaktivnosti encima se glikogen ne more razgraditi in se nalaga v lizosomih. Če ti počijo, lahko poškodujejo celico, kar privede do mnogih okvar v telesu, predvsem do progresivne mišične oslabelosti. Zelo poseben tip bolezni je Laforina bolezen, kjer se pokaže pomembnost glikogena še v drugih organih, možganih. Pri njej se zgodijo mutacije na genih za laforin in malin, ki skupaj regulirata dolžine stranskih verig glikogena. Pogosta posledica so epileptični napadi. Kljub mnogim raziskavam na tem področju najučinkovitejših rešitev za zdravljenje omenjenih bolezni še nismo odkrili.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Karidia Kolbl - Metabolizem možganskega glikogena; povezava z motnjami spanja in glavobolom ==&lt;br /&gt;
Povezava med funkcijo spanja in nevropsihiatričnimi boleznimi, kot je depresija, ter nevrološkimi motnjami v obliki migren, je danes raziskovano a precej neopredeljeno področje. Nedavne študije so pokazale, da med spancem obnavljamo zaloge glikogena, ki jih med budnostjo porabimo. Kasneje pa so ugotovili, da pomanjkanje spanca povzroča povišano količino možganskega glikogena, kar opisuje “glikogenetska” hipoteza. Ta pravi, da sinteza in poraba glikogena potekata med budnostjo so časno, medtem ko upad prenosa vzdražnostnih signalov med nevroni v stanju spanja ustvarja neravnovesje. Zmanjšana aktivnost se odraža v kopičenju glikogena med spanjem. Njegova vloga je namreč energijsko zalagati celice, še posebej med aktivno nevrološko signalizacijo (sinaptične povezave) in s tem vzpostavljati koncentracijo kalija in glutamata. Pri osebkih, ki pa jim spanca primanjkuje, prihaja do transkripcijskih sprememb, kar lahko povzroča migrene. Njihova raven možganskega glikogena je namreč znatno manjša in so posledično nezmožni ohranjati ustrezne količine kalija in glutamata znotraj in zunaj celic. To se odraža v kortikalni depolarizaciji, ki se širi po možganski skorji med živčnimi vlakni in se elektrofiziološko gledano povezuje z avro (drugo fazo) migrene. Namen seminarske naloge je torej pregled nekaterih ugotovitev in domnev v zvezi z glikogenezo in glikogenolizo, ter posledicami njune aktivnosti.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Zarja Weingerl - Sukcinat in njegova vloga v metabolizmu==&lt;br /&gt;
Sukcinat ima v Krebsovem ciklu vlogo enega od intermediatov. Gre za dianion dikarboksilne kisline,  torej se od sukcinske kisline razlikuje le v številu dveh H atomov na karboksilnih skupinah. Njegova vloga v metabolizmu pa ni omejena le na Krebsov cikel. Je namreč pomemben medcelični komunikator ter vpliva na vnetni odziv organizma. Veže se na receptor GPR91, ki je eden od regulatornih modulatorjev pri različnih podskupinah celic, in sodeluje pri regulaciji krvnega tlaka. Sukcinat  je lahko eden od vzrokov za nastanek psevdohipoksičnega stanja, ki nastane zaradi aktivacije hipoksijske signalne poti kljub zadostni meri kisika. Deluje lahko kot kemoatraktant (snov, ki inducira premike). Zaradi njegove povezave z GABA šantom (poteka tudi v anaerobnih pogojih) pa sinteza sukcinata ni odvisna le od anaerobnih pogojev, ki so potrebni za delovanje Krebsovega cikla. Sukcinat deluje kot promotor metilacije DNA, ter vpliva na potek sukcinilacije. Sukcinilacija je posttranslacijska modifikacija pri kateri pride do vezave sukcinilnih skupin na lizinske ostanke. Da je zmožen opravljati vse te in še mnoge druge naloge igra pomembno vlogo njegov transport. Transportira se lahko preko obeh membran mitohondrija, ter tako prispe v citosol, možen pa je tudi njegov transport v medcelični prostor.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Ena Kartal - Metabolizem lipojske kisline in mitohondrijska redoks regulacija==&lt;br /&gt;
Lipojska kislina je kofaktor mitohondrijskih multiencimskih kompleksov, ki vsebuje žveplo, in je kovalentno vezan z encimom preko lizina. Prav zaradi tega, ker se nahaja v vsaki celici v našemu organizmu in kot kofaktor sodeluje pri nastanku energije organizma, je predmet različnih raziskav. Ključna njegova funkcionalna lastnost je, da se lahko podvrže redoks reakcijam. Po vsaki reakciji kjer sodeluje lipoilni kofaktor z svojo disulfidno obliko, ki deluje kot akceptor elektronov, mora potekati reoksidacija dihidrolipoamida, ki jo katalizira flavoencim lipoamid dehidrogenaza. Do danes je lipojska kislina spregledan kofaktor mitohondrijskih multiencimskih kompleksov. Ko so jo prvič izolirali iz živalskih jeter, so jo primerjali z vitaminom, ker je povezana z biosintezo maščobnih kislin, SAM (ki sodelujejo pri biosintezi biotina) in biosintezo železo-žveplovega žepka z oksidativno sposobnostjo cikla trikarboksilnih kislin. Danes se uporablja tudi kot prehransko dopolnilo. Pomanjkanje LA kofaktora vodi do disfunkcije bistvenih encimskih kompleksov, ki sodelujejo v mitohondrijskem metabolizmu, kar provzroča različne bolezni. Za zdravljenje bolzni, ki nastajajo zaradi pomanjkanja regulacije lipoilacije encimov, so še vedno potrebne dodatne raziskave, ker še obstajajo neodgovorjena vprašanja glede &#039;&#039;reciklažne poti&#039;&#039; pri biosintezi LA pri ljudeh.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Sara Jerič - Vpliv intermediatov Krebsovega cikla na metiliranje histonov in DNA ter posledično na proces staranja==&lt;br /&gt;
Intermediati cikla citronske kisline imajo pomembno vlogo pri regulaciji epigenetskih in neepigenetskih sprememb. Pri tem so najbolj pomembni 2-oksoglutarat, sukcinat in fumarat, ki z aktivacijo oz. inhibicijo vplivajo na veliko družino encimov dioksidaz, ki so odvisne od 2-oksoglutarata (2-OGDO). Ti encimi pri regulaciji neepigenetskih sprememb vplivajo na sintezo kolagena in nadzorujejo količino kisika v celici (npr. Sprožijo primeren odziv, če pride do hipoksije). Pri regulaciji epigenetskih sprememb pa 2-OGDO encimi vplivajo na metilacijo DNA in histonov ter posledično transkripcijo in izražanjem genov. Metilacija DNA poteka z encimoma DNA metiltranferaza in DNA demetilaza, metilacija histonov pa z encimoma histon metiltransferaza in histon demetilaza. Spremembe pri metilaciji DNA in histonov povzročijo tudi spremembe pri kromatinu, kar pa povezujemo s procesom staranja. S staranjem se torej zmanjša količina obnovitvenih procesov (npr. ob staranju matične celice zmanjšajo količino popravil poškodb tkiv). Proces staranja ni točno programiran v celici, temveč je naključen degradirajoč proces, ki so ga sprožile epigenetske spremembe. Intermediati Krebsovega cikla pa lahko povzročijo tudi epigenetske spremembe, ki se kažejo pri boleznih povezanih s staranjem, npr. Alzheimerjeva bolezen. Čeprav vloga intermediatov Krebsovega cikla in njihov mehanizem pri procesu staranja še ni točno določen, lahko zagotovimo, da predstavljajo enega kjučnih regulatorjev epigenetskih sprememb, ki pa vplivajo na proces staranja.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Nik Vidmar - Presnova, učinki ter bolezenska stanja kot posledica povišanih koncentracij ketonskih telesc==&lt;br /&gt;
Ketonska telesca nastajajo v jetrih v okoliščinah, ko je prisotnost glukoze prenizka za normalno delovanje organov, kot so na primer možgani. Predstavljajo jih molekule acetoacetata, ki nastaja pri presnovi maščobnih kislin ob pomankanju glukoze, 3-β-hidroksibutirata, ki nastaja v mitohondrijih jetrnih celic in acetona. Najpomembnejša med ketonskimi telesci sta acetoacetat in 3-β-hidroksibutirat, saj se transportirata kot vir energije iz jeter v druga tkiva. Tretje ketonsko telo aceton ni zelo pomembno, saj se ne porablja kot vir energije in se preko pljuč izloča iz telesa.  Ketonska telesca so pomembna zato, ker pripomorejo k varčevanju glukoze in zmanjšujejo proteolizo v času, ko je glukoze v telesu premalo, kar pomaga pri ohranjanju zdravja in funkcionalnosti telesa. Nekateri organi, kot so možgani, niso zmožni uporabiti maščobnih kislin kot vir energije, zato uporabijo ketonska telesca, ki so alternativni vir energije v primeru daljše lakote ali posta. Uravnavajo tudi nivo sproščanja inzulina in povzročijo peroksidacijo lipidov. V nižjih koncentracijah se v krvi neprestano nahajajo pri zdravih ljudeh. Njihove koncentracije se delno povečajo pri dolgi telovadbi in postu. Povišana koncentracija ketonskih telesc je lahko posledica zastrupitve, na primer z alkoholom, kar vodi do alkoholne ketoacidoze. V primeru diabetesa pa lahko povišana koncentracija vodi do diabetične ketoacidoze. Tako stanje je zelo nevarno in lahko, če ga ne zdravimo, privede do smrti.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Gašper Struna - Oksidacija maščobnih kislin v peroksisomih==&lt;br /&gt;
Oksidacija maščobnih kislin je pomemben proces, ki je vključen tako v anabolne kot katabolne metabolične poti. Ta proces poteka v mitohondrijih, kjer ima predvsem katabolno vlogo, ter v peroksisomih, kjer pa ima bolj anabolno vlogo. β-oksidaciji maščobnih kislin sta v obeh organelih zelo podobni. Obstajajo pa tudi mnoge razlike. Geni za encime, ki sodelujejo pri oksidaciji v posameznem organelu, so različni. V prenosu maščobnih kislin skozi membrano sodelujeta različna transporterja. V prvem koraku β-oksidacije se peroksisomski FADH2 takoj oksidira nazaj, pri tem pa elektrone sprejme kisik, medtem ko pri mitohondriju vstopi v elektronsko prenašalno verigo. Multifunkcijski protein (MP) pri peroksisomu za razliko od mitohondrijskega ne vsebuje tiolazne aktivnosti; ima pa peroksisom dva MP, pri čemer eden lahko reagira tudi z D-izomeri β-hidroksiacil-CoA.&lt;br /&gt;
V peroksisomu se maščobne kisline le delno oksidirajo, dokončna oksidacija poteče v mitohondriju, lahko pa oksidacija maščobnih kislin v peroksisomu služi le skrajševanju verige v anabolnih poteh, na primer pri biosintezi nekaterih lipidov. Peroksisomska oksidacija je predvsem pomembna pri oksidaciji dolgoverižnih in razvejanih maščobnih kislin. Veliko podrobnosti o oksidaciji v tem organelu pa je še vedno nepojasnjenih ali pa za njih obstajajo le modeli kot na primer pri načinu reoksidacije NADH in transportu acil-CoA skozi membrano. Pomembnost tega procesa pa nakazujejo tudi številne bolezni povezane s peroksisomsko β-oksidacijo, zaradi česar je razumevanje tega procesa zelo pomembno.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Neža Peternel - Uravnavanje oksidacije maščobnih kislin v skeletnih mišicah s prehrano in telesno vadbo==&lt;br /&gt;
Maščobe poleg ogljikovih hidratov predstavljajo pomemben vir energije za delovanje naših organizmov. Maščobne kisline (MK) se v mišicah oksidirajo in vodijo do nastanka ATP molekul. Poznavanje mehanizma oksidacije MK omogoča lažje razumevanje regulacije procesa pod vplivom različnih zunanjih dejavnikov. Med pomembnejše regulatorne proteine štejemo maščobno-kislinsko translokazo CD36, ki se nahaja v sarkolemi in regulira vnos MK v mišične celice, in karnitin-aciltransferaze (CPT1, CPT2 in CACT), ki nadzirajo vnos MK v mitohondrij. Pri procesu β-oksidacije maščobnih kislin je pomemben encim β-hidroksi-acil-CoA dehidrogenaza, ki omejuje hitrost reakcije. Dokazali so, da vzdržljivostna zmerna vadba in povečan vnos maščob pozitivno vplivata na regulacijo proteinov, ki so vključeni v proces oksidacije. Maščobne kisline in krčenje skeletnih mišic v tem primeru delujejo kot signali, ki navidezno inducirajo izražanje beljakovin v metabolnih poteh lipidov in s tem povečajo presnovno sposobnost maščobnih kislin. Pomembni signalni receptorji so jedrni transkripcijski faktorji PPAR, ki vplivajo na izražanje genov za regulatorne proteine. &lt;br /&gt;
V zadnjem času se zelo razvija farmacevtsko področje vadbene mimetike (ang. exercise mimetics). Z različnimi zdravili in prehranskimi dodatki želijo posnemati pozitivne učinke vadbe na organizem in tako olajšati poteke določenih bolezni ter zmanjšati delež ljudi s prekomerno telesno težo. Hkrati pa z razvojem takšnih zdravil prihaja tudi do dopinških zlorab v vrhunskem športu.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Urša Zevnik - Genetske napake mitohondrijske oksidacije maščobnih kislin in karnitinskega transporta==&lt;br /&gt;
Mitohondrijska oksidacija maščobnih kislin je ključen metabolni proces za zagotavljanje energije, ko se izpraznijo zaloge glikogena, za nekatere procese pa predstavlja preferenčni vir energije tudi, ko je glukoze dovolj. Za skoraj vse proteine, ki sodelujejo v procesu β-oksidacije maščobnih kislin ali karnitinskemu transportu le teh v mitohondrij, so znane genetske napake, ki povzročijo pomanjkanje ali zmanjšano aktivnost teh proteinov. Popolna odsotnost večinoma vodi v smrt v prvih dneh življenja, za delno pomanjkanje pa so značilna srčna, mišična in ledvična obolenja ter pogoste hipoglikemije. Simptomi so odvisni od posameznika, stopnje pomanjkanja in vrste okvarjenega proteina. So posledica porušene energijske homeostaze in nabiranja toksičnih metabolitov. Trajno zdravilo ne obstaja, zdravljenje pa temelji na preprečevanju katabolizma z izogibanjem postenja ali naporne fizične aktivnosti in na dieti z manjšim deležem maščob. Na voljo so tudi zdravila, ki na različne načine, na primer z obnavljanjem metabolitov cikla citronske kisline ali spodbujanjem transkripcije encimov β-oksidacije lahko omilijo simptome, vendar je njihova učinkovitost omejena. Kljub zanesljivim metodam diagnostike in presejalnim testiranjem novorojenčkov smrtnost zaradi teh bolezni ostaja visoka.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Tina Javeršek - Nedavni napredek pri zdravljenju hiperamoniemije==&lt;br /&gt;
Hiperamoniemija (HA) je stanje povišane koncentracije amonijaka v krvi, ko pride do neravnovesja med količino nastalega in odstranjenega amonijaka. Ta se v naravi nahaja predvsem v reducirani obliki kot amonijev ion NH₄⁺. Vzroka za nastanek HA sta največkrat prekomerno nastajanje odvečnega amonijaka v debelem črevesu in nezadostno razstrupljanje pri motnjah v ciklu uree. Razlikujemo med primarno in sekundarno (pridobljeno) HA. Za zdravljenje se uporablja predvsem laktuloza, sintetični disaharid, ki se v našem telesu ne presnavlja. Pogosto je tudi zdravljenje z antibiotikom rifaksiminom, ki inhibira sintezo bakterijske RNA in tako preprečuje rast bakterij, ki proizvajajo encim urezo. Ta katalizira hidrolizo sečnine, pri tem pa nastajajo amonijevi ioni. Pri visokih koncentracijah imajo toksične učinke in lahko povzročijo ireverzibilne okvare centralnega živčnega sistema. Natrijev benzoat in fenilacetat nase vežeta glicin in glutamin, nastala hipurat in fenilacetilglutamin pa se izločata z urinom. Kot sredstva za zdravljenje hiperamoniemije se uporabljajo še aminokisline z razvejano verigo, L- arginin, L-citrulin in kargluminska kislina. Ob akutnem povišanju koncentracij amonijaka v krvi se ta odstranjuje s hemodializo, s čimer v najkrajšem možnem času dosežemo znižanje njegovih koncentracij. Genska in celična terapija obljubljata učinkovit pristop pri zdravljenju, vendar so potrebne še številne raziskave na tem področju.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Klara Kočman - Bowman-Birkov inhibitor ==&lt;br /&gt;
Bowman-Birkov inhibitor, inhibira tako tripsin kot tudi α-kimotripsin. Z njima tvori kompleks 1:1 oz. 1:1:1 ko sta na inhibitor vezana oba encima. Reakcijsko mesto za inhibicijo tripsina se nahaja na mestu Lys 16–Ser 17, za inhibicijo kimotripsina pa na mestu Leu 42–Ser 44. Naloga tripsina in kimotripsina je cepitev večjih peptidov na manjše peptide v trebušni slinavki. Bowman-Birkov inhibitor najdemo v nekaterih travniških rastlinah in vseh stročnicah, predvsem v soji. Uživanje surove soje lahko vodi do hipertrofije trebušne slinavke pri živalih. Je tudi zelo učinkovit pri preprečevanju karcinogeneze, zato iščejo način kaki bi lahko z Bowman-Birkovim inhibitorjem preventivno preprečevali raka brez toksičnosti za maligne celice in vitro. V soji pa najdemo tudi Bowman-Birkovem inhibitorju podoben Kunitzov inhibitor. Znanstveniki so ugotovili, da sta Bowman-Birkovemu inhibitorju v določenih sekvencah podobna tudi inhibitor limskega ter vrtnega fižola. Bowman-Birkov inhibitor se lahko zaradi svojih sedmih disulfidnih vezi cepi na več različnih peptidov, ki ohranijo svojo inhibitorno aktivnost. Inhibitor se v raztopinah z visoko koncentracijo inhibitorja med seboj reverzibilno poveže v dimere in trimere, kar lahko vidimo tudi pri inhibitorju, izoliranem iz soje, ki je v obliki trimera.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Miha Razdevšek - Motnje razgradnje glicina in njihove posledice ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Glicin je najmanjša aminokislina, ki se razgrajuje po treh poteh. Pri ljudeh je najpogostejša razgradnja z glicin cepitvenim encimom (glycine cleavage enzyme, GCE). Ta encim je sestavljen iz štirih proteinov, ki glicin pretvarjajo v CO2 in NH4+. Ko pride do mutacij GCE, se glicin po tej poti ne more več razgrajevati in se posledično kopiči v celici. To stanje imenujemo neketotska hiperglicinemija (nonkertotic hyperglicemia, NKH). V eni izmed metabolnih poti, ki se pri takšnih pogojih aktivirajo nastane zelo reaktivna molekula metilglioksal (MGO). MGO se kovalentno poveže s proteini in DNA, kar imenujemo glikacija. Produkte, ki pri tem nastanejo pa končni produkti napredovane glikacije (advanced glycation end products, AGE).  Primarno se MGO poveže z argininom na proteinih in deoksigvanozinom na DNA. Glikacija proteinov vpliva na izgubo njihove funkcije in povezavo ekstracelularnih ter intracelularnih proteinov. Reakcija z DNA pa predstavlja nevarnosti povezane z genomsko nestabilnostjo. Povišane vrednosti MGO se povezuje z boleznimi staranja, diabetesom, debelostjo, rakom in nevrodegenerativnimi boleznimi. Izziv predstavlja predvsem razumevanje pomena MGO pri normalnem fiziološkem stanju, koncentracija, pri kateri postane MGO toksičen in možnost uporabe MGO za specifično diagnostiko bolezni.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Jan Trebušak - Vloga Karbamoil Fosfat Sintetaze 1 ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Karbamoil fosfat sintetaza 1 (CPS1) je kompleksen, večdomenski ter evolucijsko konservativen encim, ki katalizira prvo reakcijo v ciklu uree. Encim je sestavljen iz okoli 1500 aminokislin in ima dve katalitični mesti na katerih poteka fosforilacija substratov, njegov alosterični efektor pa je N-acetil-L-glutamat (NAG). Ker reakcije na CSP1 predstavljajo ‘vstopni’ korak v cikel uree ima vsakršna okvara lahko hude posledice. Najočitnejši simptom je akutna hiperamonemija oz. povišanje koncentracije amoniaka v krvi, ki lahko ob kronični izpostavitvi vodi v nevrodegenerativna obolenja. Čeprav je hiperamonemija glavni in najbolj akutni zaplet pri okvari CSP1, pa ni edini.  Raziskave so pokazale, da ima CSP1 vpliv tudi na nastanek in rast raka, razvoj kardiovaskularnih obolenj in tudi zmožnost posameznikov za vzdrževanje konstantne telesne mase. Trenutne oblike zdravljenja vključujejo strogo izogibanje aminokislinam v prehrani in uživanje dodatkov, ki nase vežejo dušik iz organizma. Naprednejše oblike zdravljenja, kot so genska terapija in jemanje analogov NAG, ki bi spodbudili delovanje tudi nepravilno delujoče CSP1 so v začetnih fazah kliničnih testiranj. Pri genskem zdravljenju predstavlja težavo tudi to, da je večina inaktivirajočih mutacij na CSP1 specifičnih za posamezne družine ali majhne populacije, kar pomeni, da vsaka od the potrebuje posebaj prilagojeno zdravljenje. Na tem področju je potrebno opraviti še veliko raziskav, da bi odkrili zdravilo za nedelujočo CSP1.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Lana Kores - VLOGA METABOLIZMA RAZVEJANIH AMINOKISLIN PRI BOLEZNI JAVORJEVEGA SIRUPA (MSUD)==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Prirejene napake metabolizma (IEM) so pogosto posledica redkih monogenskih napak, ki sledijo mendelskim vzorcem dedovanja za avtosomne-recesivne lastnosti. Prizadeti posamezniki imajo mutacijo na obeh alelih na monogenskem mestu, medtem ko njihovi starši po definiciji nosijo le en mutiran alel in se pri njih fenotip bolezni ne izraža. Bolezen javorjevega sirupa (MSUD) je primer take monogenske bolezni. Povzroči jo okvara razvejane α-ketokislinske dehidrogenaze (BCKD). BCKD je multiencimski kompleks, zgrajen iz treh katalitičnih komponent: E1 – dekarboksilaze, sestavljene iz 2α in 2β podenot; E2 – transciklaze; in E3 – dehidrogenaze. Gen za E1α najdemo na kromosomu 19, gen za E1β na kromosomu 6, gen za E2  na kromosomu 1 in gen za E3 na kromosomu 7. Pri normalnem delovanju (v zdravem človeku) bi v prvem koraku metabolizma BCAA izocimi razvejane aminokislinske transaminaze (BCATs) transaminirale BCAAs do razvejanih α-ketokislin (BCKAs), torej iz levcina do α-ketoizokaproata (KIC), iz izolevcina do α-keto-β-metilvalerata (KMV) in iz valina do α-ketoizovalerata (KIV). V naslednjem koraku metabolne poti bi razvejan ketokislinski dehidrogenazni kompleks (BCKDC) kataliziral ireverzibilno oksidativno dekarboksilacijo α-ketokislin (vendar se pri MSUD zaradi okvare BCKD to ne zgodi). Zaradi tega pride do kopičenja razvejanih aminokislin in posledično do hudih nevroloških motenj.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Maša Mencigar - Reaktivne kisikove zvrsti in njihova vloga pri rakavih obolenjih ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Reaktivne kisikove zvrsti (ROS, ang. reactive oxygen species) so skupina reduciranih nestabilnih derivatov kisika, ki imajo dobre oksidativne lastnosti. V celici nastajajo pri normalnem delovanju celičnega metabolizma v nizkih koncentracijah in so potrebne za homeostazo celice in celično signaliziranje, delujejo kot sekundarni sporočevalci. Ob povišani koncentraciji pa so za celico lahko nevarni, saj privedejo do oksitadivnega stresa. Oksidativni stres lahko povzroči poškodbe in mutacije DNA ter pripomore k drugim obolenjem kot so nevrodegenerativne bolezni in rakava obolenja. Antioksidanti, kot so superoksid dismutaze (SOD), Glutation (GSH)  in Jedrni faktor eritroid 2 (NFR2), preprečujejo povišanje koncentracije ROS v celici, saj pretvarjajo ROS do manj reaktivnih spojin oziroma vode. Različne koncentracije reaktivnih kisikovih zvrsti različno vplivajo na celico, ob povišani koncentraciji ROS se poveča nastanek malignih mutacij, ROS torej deluje kot tumor promotor. Ob previsokih koncentracijah ROS pa privede do celične smrti, torej deluje ROS kot tumor supresor.Delovanje ROS kot tumor promotor ali supresor pa ni odvisno le od njegove koncentracije v celici, ampak tudi od stopnje razvoja in lokacije tumorja. Za zdravljenje rakavih obolenj uporabljajo nekatere kemoterapetvike (cisplatin, bleomicin in arsenični trioksid), ki povišajo koncentracije ROS in s tem povzroči nepopravljive poškodbe celic, ter privede do celične smrti.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Klara Razboršek - Regulacija apoptoze v zdravju in bolezni: uravnoteženo delovanje BCL-2 družine proteinov ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Apoptotska celična smrt je ključen proces za ohranjanje tkivne homeostaze. Poznamo ekstrinzično pot apoptoze, ki je rezultat zunajceličnih signalov, in intrinzično ali mitohondrijsko pot. Le-ta je rezultat signalov, ki delujejo direktno na tarče znotraj celic. Pomembni regulatorji te poti so proteini iz družine BCL-2. Gre za globularne proteine, ki se nahajajo v citosolu v bližini mitohondrija ali pa se sidrajo v zunanjo mitohondrijsko membrano. Razdelimo jih v tri skupine, glede na njihovo vlogo pri regulaciji procesa apoptoze. Pro-apoptotski proteini se aktivirajo kot odziv na celični stres in sprožijo začetek procesa apoptoze. Anti-apoptotski proteini kljubujejo pro-apoptotskim tako, da jih vežejo nase in jih s tem deaktivirajo, kar lahko zaustavi proces apoptoze. Če anti-apoptotskih proteinov ni dovolj ali pa so deaktivirani, se pro-apoptotski proteini vežejo na pro-apoptotske efektorske proteine – BAK in BAX. Ta dva proteina se sidrata v zunanjo mitohondrijsko membrano in preko oligomerizacije tvorita makropore. To povzroči permeabilizacijo zunanje mitohondrijske membrane. Iz medmembranskega prostora mitohondrija se sprosti citokrom c, kar povzroči aktivacijo kaspaz, ki povzročijo programirano celično smrt. Če pride do napak pri regulaciji BCL-2 proteinov lahko to privede do različnih obolenj, kot so nevrodegenerativne in avtoimune bolezni ter raka. Nepravilna regulacija v času prenatalnega razvoja pa lahko privede v smrt embria.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Špela Rapuš - Zlivanje in cepitev mitohondrijev ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mitohondriji imajo veliko pomembnih funkcij v celici, zato je pomembno njihovo pravilno delovanje. Pri tem sta pomembna zlivanje in delitve mitohondrijev, ki vplivata, da so procesi, med katerimi je tudi oksidativna fosforilacija, pravilno regulirani. Ključni faktorji za ta procesa spadajo v superdružino dinaminov in izkoriščajo hidrolizo GTP za svoje delovanje. Za zlivanje membran so ključni mitofuzina Mfn1 in Mfn2 ter protein Opa1. Pri delitvi pa sodelujejo Drp1 in njegovi adaptorji na površini membrane, ki oblikujejo delitveni kompleks. Pri delitvi so pomembni tudi ostali dejavniki, ki pripomorejo k delitvi na primer endoplazemski retikulum in polimerizacija aktina okoli mitohondrija, ki začetno zoži mesto delitve. Morfologija mitohondrija, ki jo regulirata zlivanja in cepitve, je povezana tudi z metaboličnim stanjem celice. Od oblike krist je namreč odvisno tudi delovanje kompleksov oksidativne fosforilacije. Mutacije v zapisih za proteine, ki sodelujejo pri zlivanju oziroma cepitvi, vodijo v nepravilno delovanje pomembnih procesov v mitohondriju in kot posledica nastopijo mnoge bolezni, predvsem nevrodegenerativne kot tudi rak.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Vanja Ivošević - Kompleksonst biosinteze ubikinona ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Ubikinon (koencim Q_10)  je koencim, ki je prisoten pri vseh živalih in pri večini bakterij, sestavni je del transportne verige elektronov ter tako sodeluje pri aerobnem celičnem metabolizmu, ki proizvaja energijo v obliki ATP. Najdemo ga predvsem v mitohondrijih, največ ga ima v mitohondrijih organov, ki imajo visoko potrebo po energiji kot so srce, jetra in ledvice. Obstajajo tri redoks stanja ubikinona, popolnoma oksidirano (ubikinon), ubisemikinon in popolnoma reducirano stanje (ubikinol). Ubikinon ima bistveno vlogo  kot elektronski prenašalec med kompleksom NADH: ubikinon oksidoreduktazo (kompleks I), sukcinat dehidrogenazo (kompleks II) in citokrom bc_1 kompleksom (kompleks III) dihalne verige, lahko prenaša dva ali en elektorn. Biosinteza je glavni vir ubikinona. Za biosintezo je potrebno vsaj 12 genov, če se zgodi mutacija na enem ali več teh genov, prihaja do pomanjkanja ubikinona v organizmu. Mutacije v človeških genih za sintezo ubikinona povzročajo stanje, ki se imenuje primarno pomanjkanje ubikinona, mitohondrijsko motnjo, ki se manifestira na različne načine kot so multisistemske motnje, encefalopatija ali nefropatija. Direktna posledica pomanjkanja ubikinona je zmanjašana proizvodnja ATP in prekomerna tvorba ROS- reaktivnih kisikovih zvrst. Za razliko od večine ostalih mitohondrijskih motenj, za zdravljenje te motnje je na voljo učinkovito zdravljenje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Lev Jošt - Tvorba ROS in njen prispevek k signalizaciji in k razumevanju bolezni ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mitohondriji so dobro znani po svoji osrednji vlogi pri proizvodnji ATP, homeostazi kalcija ter biosintezi hema in steroidov. Označili so jih za t.i. &amp;quot;elektrarno&amp;quot; celice. &lt;br /&gt;
Mitohondrijska elektronska transportna veriga (ETC) uporablja vrsto reakcij prenosa elektronov za ustvarjanje celičnega ATP z oksidativno fosforilacijo. Posledica prenosa elektronov je nastajanje reaktivnih kisikovih vrst (ROS). Za omenjene ROS, pri katerih je ključen superoksid in tudi vodikov peroksid, se je sprva menilo, da so strupeni stranski produkti mitohondrijske fiziološke aktivnosti, a so na podlagi raziskav dokazali, da so to pomembne molekule, katerih proizvodnja, pretvorba in uničenje so zelo regulirani. Torej funkcije ETC so tesno povezane s tvorbo ROS ter proizvodnjo ATP in glede nato da ETC uravnava celično homeostazo s tema dvema procesoma in da so bile odkrite spremembe v obeh teh procesih povezane s patologijo neštetih bolezni, ki zajemajo skoraj vse organske sisteme, je logično sklepati, da nam lahko zmožnost natančnega in učinkovitega merjenja delovanja ETC pri ljudeh, zagotovi koristne diagnostične in mehanistične informacije.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=BIO2_Povzetki_seminarjev_2021&amp;diff=19607</id>
		<title>BIO2 Povzetki seminarjev 2021</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=BIO2_Povzetki_seminarjev_2021&amp;diff=19607"/>
		<updated>2021-12-12T15:01:58Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: /* POVZETKI SEMINARJEV BIOKEMIJA 2021/22 */&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;= POVZETKI SEMINARJEV BIOKEMIJA 2021/22 =&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Klara Ažbe - Vpliv metabolitov Krebsovega cikla na fiziologijo in bolezni==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mitohondrij je celični organel, ki pomembno prispeva k delovanju celice. Njegova glavna naloga je proizvodnja energije, poleg tega pa ne smemo zanemariti vloge stranskih produktov, ki ob proizvodnji energije nastanejo. Pri pridobivanje energije ima pomembno vlogo Krebsov cikel, v katerem nastane kar nekaj metabolitov. Njihova pomembnost je bila prvotno prepoznana pri sintezi makromolekul (nukleotidov, proteinov, lipidov), kasneje pa se je izkazalo, da so tudi zelo pomembne signalne molekule, ki nadzorujejo modifikacije kromatina, hipoksični odziv, metilacije DNA in imunski odziv. Količina posameznega intermediata je v celici natančno regulirana, vendar pa se lahko zgodi, da pride do določene mutacije, na primer mutacije encima za razgradnjo metabolita, posledično pa se ta metabolit začne kopičiti v celici. To lahko privede do sprememb v fiziologiji celice in do različnih bolezni, kakšne bodo te spremembe in bolezni pa je odvisno od vrste metabolita. Med bolj vplivne metabolite spadajo acetil-CoA, α-ketoglutarat, sukcinat in fumarat, pomemben je tudi 2-hidroksiglutarat, ki sicer ni intermediat cikla TCA, vendar pa je povezan s ciklom tako, da se sintetizira iz α-ketoglutarata. Ugotovitve, kako povečane količine metabolitov vplivajo na celico in posledično na organizem ter bolezni, so pomembne predvsem za zdravljenje bolezni, zato se za prihodnost pričakuje, da bo še večja količina znanja na tem področju prenesena v klinično uporabo.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Pia Mencin - Akonitaza in njena vloga v celici==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Načeloma pripisujemo določenemu proteinu eno funkcijo, poznamo pa tudi proteine, ki imajo dve popolnoma različni nalogi v celici. To so tako imenovani »moonlighting proteins« oziroma večnamenski proteini. Tak večnamenski protein  je tudi citosolna akonitaza (cAcn). Ko je nanj vezana prostetična skupina: Fe-S kletka, deluje kot katalizator pretvorbe citrata v izocitrat.  Ob razdružitvi Fe-S kletke deluje kot IRP1 (odzivni protein za železo). Ta ima zmožnost vezave na mRNA proteinov, ki sodelujejo pri metabolizmu železa,  ter tako zagotavlja homeostazo železa v celici. Ob razdružitvi kletke cAcn in nastanku apoencima znanega kot IRP1 pride do konformacijskih sprememb v proteinu pri katerih nastane mesto za vezavo na IRE (odzivni element za železo), to je reža, ki na novo nastane med domenama 3 in 4 cAcn.&lt;br /&gt;
Poleg citosolne poznamo tudi mitohondrijsko akonitazo (mAcn), ki je njena izooblika. Sodeluje v TCA ciklu, in sicer katalizira pretvorbo citrata v izocitrat, ter ščiti mtDNA pred oksidativnimi poškodbami. &lt;br /&gt;
Proteina sta tarča ROS, ti ju poškodujejo (oksidirajo) in inaktivirajo. mAcn ob inaktivaciji z ROS posredno inhibira nastanek ROS v mitohondriju in tako deluje kot regulator oksidativnega stresa. Za preprečevanje kopičenja oksidirane mAcn v mitohondriju poskrbi Lon proteaza. &lt;br /&gt;
Izocima mAcn ter cAcn sta še en izmed mnogih dokazov kako natančno nadzorovano in prepleteno je delovanje procesov v celici.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Marko Kovačić - Vloga citokinov poddružine IL-1 pri regulaciji glikolize in njihov vpliv na bolezni, povezane z glikolizo==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Citokini so proteini z majhno molekulsko maso (približno 5-25 kDa), ki so pomembni v celičnem signaliziranju. Delujejo tako, da se vežejo na specifične membranske receptorje in s tem regulirajo transkripcijo genov ali njihovih transkripcijskih faktorjev. Tako sprožijo imunski odziv na vnetje, infekcijo ali na druga stanja.  S svojimi signalnimi mehanizmi kontrolirajo rast in aktivnost drugih celic imunskega sistema ter krvnih celic. Interlevkini so skupina citokinov, ki imajo različne funkcije, predvsem so pomembni pri komunikaciji med celicami imunskega sistema, pri vnetnih in imunomodulatornih procesih. Citokini IL-1a, IL-1β, IL-1Ra in IL-33 so zelo pomembni člani družine interlevkinov interlevkin-1 (IL-1). Številne raziskave so pokazale, da je ta poddružina interlevkinov pomembna pri regulaciji glikolize, tj. poti, ki je pomembna za pridobivanje energije v obliki ATP. Glikolizo lahko regulirajo na nivoju vnosa glukoze v celice ali pa na nivoju reguliranja glikolitičnih encimov, ker se njihove signalne poti prepletajo s signalnimi potmi, ki so ključne pri regulaciji glikolize. Disregulacija glikolize lahko vodi do številnih bolezni (rak, diabetes tipa 2, reumatoidni artritis, osteoartritis, astma), poddružina IL-1 pa z regulacijo glikolize lahko vpliva na potek le-teh. Vpliv na delovanje citokinov IL-1a, IL-1β, IL-1Ra in IL-33  tako daje številne možnosti pri zdravljenju z glikolizo povezanih bolezni in prav to je predmet številnih raziskav.&lt;br /&gt;
 &lt;br /&gt;
==Janja Bohte - Vloga in regulacija aerobne glikolize pri hepatocelularnem karcinomu==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Rak jeter je šesta najpogostejša oblika raka na svetu. Kar 90% primarnih rakov jeter predstavlja hepatocelularni karcinom (HCC). Za zdravljenje te bolezni se med drugim uporabljalo zdravila za zaviranje specifičnih signalnih poti, ki so odgovorne za rast tumorja. Tako zdravilo je sorafenib, zaviralec tirozin kinaze, na katerega organizem zaradi povečane aerobne glikolize v nekem časovnem obdobju razvije odpornost. Aerobna glikoliza oziroma Warburgov učinek je pojav, ko tumorske celice pretvarjajo glukozo v laktat kljub zadostni količini kisika. Prehod z metabolične poti oksidativne fosforilacije na pot glikolize pri HCC spodbuja celično proliferacijo ter ponuja ugodno mikrookolje za napredovanje tumorja. Odgovorna je za regulacijo invazije, metastaze, angiogeneze in odpornosti na zdravila pri HCC. Mehanizem Warburgovega učinka je kompleksen, pomembno vlogo pa imajo trije encimi, ki sodelujejo v sami presnovi glukoze: heksokinaza 2 (HK2), fosfofruktokinaza 1 (PFK1) in piruvat kinaza tipa M2 (PKM2). Ti so regulirani na več načinov in s številnimi transkripcijskimi faktorji ter metaboličnimi potmi, kot so AMPK, PI3K/Akt metabolična pot, HIF-1α, c-Myc ter nekodirajoče RNA. Zaradi pomembne vloge glikolize pri napredovanju tumorja, je usmerjanje na glavne dejavnike na tej poti, kot je inhibicija HK2, PFK ali PKM2, ključnega pomena za razvoj novih terapevtskih pristopov za zdravljenje HCC.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Urša Štefan - Signalizacija STING - obseg delovanja in povezava z rakavimi obolenji==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Pojav dvovijačne DNA v citosolu je v celici največkrat pokazatelj celične abnormalnosti – virusne okužbe, poškodbe dednega materiala, oksidativnega stresa ali rakave transformacije. Celice so zato razvile načine zaznavanja prisotnosti DNA v citosolu. Eden izmed takšnih je signalna pot STING. Protein ciklična GMP-AMP sintetaza po vezavi z DNA sintetizira cGAMP, ki aktivira protein STING, vezan v membrani endoplazmatskega retikuluma. Ta se transportira do Golgijevega aparata, kjer mu vezava kinaze TBK1 omogoča aktivacijo transkripcijskih faktorjev IRF3 in NF-κB za citokine. Poleg odziva na citosolno DNA protein STING sodeluje tudi v regulaciji celičnega metabolizma, celičnega cikla, pri indukciji avtofagije, regulaciji ravni kalcija in kot senzor poškodb DNA. Zaradi svojega velikega obsega delovanja je signalna pot STING tarča razvoja številnih zdravil, ki pa je do zdaj bil le delno uspešen. Članek opiše signalno pot STING, njene funkcije v celici in na kratko povzame vlogo signalne poti pri zdravljenju rakavih obolenj.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Hana Glavnik - S-glutationilacija proteinov kot globalni inhibitor celičnega metabolizma za zmanjšanje občutljivosti signalov vodikovega peroksida==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
S-glutationilacija proteinov ima v celici pomembno vlogo. Ob zvišanju koncentracije reaktivnih kisikovih spojin (ROS), se v celici vzpostavi stanje oksidativnega stresa. Ker so za celico te spojine toksične, je razvila mehanizme, ki ji pomagajo uravnavati njihovo koncentracijo in zaščitijo ostale spojine v celici pred ireverzibilno oksidacijo. Najbolj pomembna spojina med ROS je vodikov peroksid, ki ima poleg toksičnih vplivov tudi lastnosti sekundarnega sporočevalca. Ob nastopu oksidativnega stresa v celici in povišane koncentracije vodikovega peroksida, zaznata signale encima GRX1 in GRX2, ki glutationilirata proteine z vezavo glutationa (GSH) na tiolne skupine cisteinov (-SH) in jih tako zaščitita pred poškodbami. Hkrati se s potekom S-glutationilacije aktivirajo tiste metabolične poti, pri katerih nastajajo antioksidanti, največkrat NADPH, ki pomagajo razgraditi vodikov peroksid in ostale ROS spojine. Tiste poti, pri katerih nastajajo ROS spojine so inhibirane s strani S-glutationilacije, dokler ne pride do signala, ki ga sprejmeta GRX1/2. To sproži njune deglutationilacijske aktivnosti in z deglutationilacijo encimov se stanje v celici se normalizira in metabolične poti lahko potekajo nemoteno.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Tinkara Butara - Transmembranska signalizacija v bakterijskih kemoreceptorjih==&lt;br /&gt;
Kemotaksija je oblika gibanja, kjer se organizem giba k ugodnemu kemijskemu gradientu ali stran od toksičnega oziroma neugodnega. Oblika gibanja je značilna za premikajoče se bakterije in arheje. Kemotaksija igra pomembno vlogo pri iskanju hrane, oblikovanju biofilma in tudi pri patogenezi. Takšno gibanje, s prepoznavanjem različnih kemijskih zvrsti, nadzorujejo kemoreceptorji. To so transmembranski proteini, ki vežejo snovi iz okolice in tako sprožijo nadaljnjo signalizacijo znotraj celice, ta pa vodi do spremembe v rotaciji bička. Vezava ugodne signalne molekule vodi do konformacijskih sprememb v kemoreceptorju, ki preprečijo avtofosforilacijo kinaze CheA, ki omogoča fosforilacijo proteina CheY. Fosforiliran CheY se namreč veže na motor bička in tako spremeni njegovo rotacijo iz nasprotne smeri urinega kazalca v smer urinega kazalca. Ko biček rotira v smeri urinega kazalca, to spodbudi naključno gibanje v prostoru, ki na novo orientira bakterijsko celico. Če biček rotira v nasprotni smeri urinega kazalca, pa se celica giba naravnost proti ugodnemu kemijskemu gradientu. Prilagoditev na signal nadzorujejo regulatorni proteini (CheR, CheB, za zaključek signala pa je pomemben protein CheZ, ki hidrolizira CheY-P. Kemoreceptorji se nahajajo na polih bakterijske celice in se združujejo v skupke, kar predstavlja dodatno možnost prilagoditve na kemijski signal.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==David Valte - Jedrni hormonski receptorji in izražanje genov==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Jedrni hormonski receptorji (NHR) so poleg g-proteinov, receptorjev z encimsko aktivnostjo in ionskih kanalčkov le še eden od načinov biosignalizacije, ki pa se po načinu delovanja od drugih precej razlikuje. Jedrni hormonski receptorji neposredno vplivajo na transkripcijo in tako posledično tudi na izražanje genov. Z vezavo ligandov, kot so na primer vitamin d, retinoidni hormoni, tiroidni hormoni in steroidi, na receptor, pride na hormonskih receptorjih do konformacijskih sprememb. Spremembe v konformaciji receptorja pa omogočajo interakcije receptorja s specifičnimi sekvencami DNA. Te sekvence imenujemo hormonski odzivni elementi HRE/HREs, HRE se ponavadi nahajajo znotraj promotorja tarčnega gena, na teh mestih NHR delujejo kot aktivatorji transkripcije DNA. Transkripcija DNA povzroči nastanek mRNA z zapisom za nastanek proteinov, katere celica potrebuje, preko teh pa se lahko odzove na zunanje motnje. Prepoznavo zaporedij HRE in vezavo na DNA omogoča specifična sestava jedrnih receptorjev. Te so sestavljeni iz večih domen, vsaka od teh ima specifično funkcijo brez katere delovanje NR ni mogoče. Posebne domene omogočajo prepoznavo HRE, vezavo na DNA in dimerizacijo z drugimi NR. Na hormonske odzivne elemente se lahko NHR vežejo v obliki monomerov, lahko pa se NHR-ji vežejo drug z drugim, tako nastajajo dimeri. Dimeri omogočajo drugačne afinitete za vezavo z DNA.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Alliana Kolar - Pomen upravljanja z agonisti, antagonisti in signalnimi modulatorji receptorjev abscizinske kisline (ABA) v agronomiji==&lt;br /&gt;
Abscizinska kislina (ABA) je naravno prisoten rastlinski hormon, katerega koncentracija se poviša, ko je rastlina pod vplivom stresa in se na stres tudi odzove. Igra vlogo pri zapiranju listnih rež, ko rastlini primanjkuje vode, inhibira kalitev, spodbuja dormanco, vpliva na cvetenje, staranje listov, zorenju plodov ipd. Ker je sintetična ABA nestabilna in ob zunanjem nanosu ne pokaže vpliva na rastlino, je potrebno z modeliranjem antagonistov oziroma agonistov sintetizirati analoge, ki bi bodisi promovirali/oponašali ali zavirali njeno delovanje. Z njimi bi agronomi lahko manipulirali na delovanje rastline in imeli nadzor nad njim, kar bi posledično prineslo večji donos zaradi večje količine in kakovosti proizvodov. Za to pa je potrebno dobro poznati molekulo in njeno biokemijsko delovanje ob signalizaciji in tudi druge spojine, s katerimi regulira procese v rastlini. Ker pa je to področje še dokaj neraziskano in nepojasnjeno, je zelo težko najti prave analoge in dodatno sintetizirati še boljše. Vendar pa po odkritju sintetične molekule pirabaktin, ki je delovala kot primeren agonist, so odkrili še 14 receptorjev ABA, imenovanih PYR (Pyrabactin Resistance)/PYR-like/(RCARs)Regulatory Components of ABA Receptors in s tem še boljše razumeli delovanje ABA in njene signalizacije.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Gaja Starc - Medsebojni vpliv vodikovega sulfida in drugih signalnih molekul pri uravnavanju signaliziranja celic zapiralk in odzivu na abiotski oziroma biotski stres==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Vse daljša sušna obdobja, visoke temperature in nizka vlažnost, od pritrjenih organizmov zahtevajo prilagoditve, s katerimi lahko izboljšajo uporabo energije in kemijskih virov v raznovrstnih razmerah. Kot mehanizem, ki omogoča nadzor nad ravnotežjem med izgubo vode in izmenjavo plinov, so rastline v krovnih tkivih razvile aktivno regulirane odprtine – reže. Reže so ključne za fiksacijo atmosferskega ogljika pri fotosintezi, hkrati pa rastline zaradi rež izgubijo 95 % vode v ozračje. Regulacija premikanja listnih rež je ključna za uspešno rast in razvoj rastline. Premikanje rež je tesno povezano z zaporedjem kompleksnih procesov zaznavanja, prenosa in uravnavanja signalov v celicah zapiralkah. Vodikov sulfid (H2S) uravnava premikanje celic zapiralk in sodeluje pri uravnavanju in prenosu signalov v organizmih ter tako sodeluje pri prilagajanju rastline na spremembe v okolju in odzivih na abiotski oziroma biotski stres. Novejše študije pri navadnem repnjakovcu (&#039;&#039;Arabidopsis thaliana&#039;&#039;) so pokazale, da zunanji H2S spodbuja zapiranje listnih rež, pri čemer sodeluje s fitohormoni in signalnimi molekulami. Glavna signalna pot, pri kateri sodeluje, je persulfidacija proteinov – post-translacijska modifikacija pri kateri so tiolne skupine cisteinskih ostankov modificirane v persulfidne.  Sodeluje tudi pri uravnavanju aktivnosti ionskih kanalčkov v celicah zapiralkah, ki so ključni pri nadzoru premikanja listnih rež in pomaga omiliti oksidativni stres z vplivom na koncentracijo reaktivnih kisikovih zvrsti v celicah zapiralkah.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Andraž Rotar - Vloga signalne poti JAK/STAT in njeni inhibitorji pri človeških boleznih==&lt;br /&gt;
Signalna pot kinaze janus (angl. janus kinase-JAK) in signalnega prenašalca in aktivatorja transkripcije (angl. signal transducer and activator of transcription-STAT), krajše JAK/STAT, je prisotna v večini večceličnih organizmih. Mehanizem poti je eleganten in presenetljivo preprost način, s katerim zunajcelični faktorji povzročijo gensko izražanje. Prepisani geni so nujni pri bioloških procesih kot so celična rast, diferenciacija, apoptoza in imunskem odzivu.  Signalizacija JAK/STAT je v celici močno regulirana. Primarni regulatorji spadajo v tri skupine, in sicer med zaviralce citokinske signalizacije (angl. suppressor of cytokine signaling-SOCS), proteinske inhibitorje aktiviranih STAT (angl. protein inhibitors of activated STAT-PIAS) in protein tirozinske fosfataze (angl. protein tyrosine phosphatase-PTP). Če se v organizmu pojavi okvara signalne poti ali njene regulacije to privede do raznih avtoimunih bolezni kot so revmatoidni artritis, Parkinsonova bolezen ter multipla skleroza. Ker pa pot nadzira tudi celični cikel, lahko mutacije genov, odgovornih za sintezo sestavnih delov poti, privedejo do rakavih obolenj. Da bi se z temi patološkimi stanji lahko spopadali, raziskovalci z veliko vnemo iščejo nove vedno boljše inhibitorje signale poti. Do ne daljnega  smo poznali le inhibitorje za JAK, sedaj pa jih razvijajo tudi za STAT. V seminarski nalogi so predstavljeni vsi zgoraj našteti proteini, patološka stanja povezana z JAK/STAT, ter inhibitorji za njihovo zdravljenje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Pia Špehar - Integrini in njihova vloga pri vezikularnem transportu==&lt;br /&gt;
Integrini so adhezijski receptorski proteini, zgrajeni iz dveh podenot. Imajo mnogo različnih funkcij, in sicer povezujejo citoskelet in zunajcelični matriks, s tem posledično povežejo notranjost celice z njeno okolico. Delujejo kot prenašalci signalov in spodbujevalci celične proliferacije in preživetja. Sodelujejo pri imunskem odzivu, apoptozi, celični diferenciaciji, mnoge raziskave pa so pokazale, da so ključni tudi pri signalizaciji in regulaciji vezikularnega transporta. Ključno vlogo imajo pri eksocitozi biosintetskih in sekretornih veziklov, saj nase vežejo mikrotubule in preko njih usmerjajo vezikle do celične površine. Sodelujejo tudi pri procesu degranulacije v trombocitih in levkocitih, pri agregaciji trombocitov in posledično pri hemostazi, ki je prva stopnja celjenja ran.  V citotoksičnih limfocitih prepoznava antigena na tarčni celici povzroči sidranje mikrotubulov na integrine. Ti se nato povežejo z medcelično adhezijsko molekulo in tako sprožijo prenos signala za celično smrt tarčne celice. V trombocitih pa integrin-posredovana degranulacija α-granul omogoči agregacijo trombocitov in s tem nastanek krvnega strdka, ki zaustavi krvavitev. Integrini sodelujejo tudi pri endocitozi, in sicer pri vnosu virusov in zunajceličnih veziklov v celico. V celico se lahko prenese virus, vsebina veziklov ali pa samo signal, ki sproži nadaljnje procese znotraj celice. Pomembni so tudi za prenos signalov pri endocitotskem recikliranju receptorjev tirozin kinaz (RTK).&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Tina Urh - Nevrotransmiterji, agonisti in antagonisti receptorjev kot tarča zdravljenja==&lt;br /&gt;
Nevrotransmiterji acetilholin, norepinefrin, dopamin, serotonin, subtanca P, GABA in glutamat posredujejo stimulatorne ali inhibitorne živčne funkcije preko vezave na specifične receptorje. Izločajo se iz avtonomnih živcev, ganglijev, nadledvične žleze, rakavih celic in celic imunskega sistema. Spremenjena komunikacija med živčnim in imunskim sistemom in uporaba receptorskih agonistov/antagonistov je vedno pogosteje tarča zdravljenja nevrodegenerativnih, imunopatoloških in avtoimunskih bolezni. E in NE sta stresna hormona in interagirata z α in β adrenergičnimi receptorji; aktivacija β2-AR (agonist izoprotenerol) spoodbuja rast tumorja. Blokira jo antagonist propranolol. GABA je pomirjevalo in antidiabetično sredstvo, stimulira rakavo proliferacijo preko GABAA; A receptorski agonist je muscimol. Vendar pa je vpliv GABA odvisen od tipa raka in receptorja. Serotonin (5-HT) ima vlogo vazokonstriktorja; proizvajajo ga imunske celice. Antagonisti 5-HT2AR imajo antipsihotične in antidepresivne lastnosti. Povečanje števila receptorjev 5-HT1A kaže na zaviranje izločanja serotonina in posledično povečano depresivnost. Dopamin oz. agonisti DA receptorjev izkazujejo inhibitorni efekt na rast tumorja. Neselektivni agonisti so učinkoviti za zdravljenje bolezni CŽS. Tudi vloge dopamin receptorjev so specifične glede na tip tumorja. Substanca P spada v družino nevropeptidov in spodbuja razvoj raka. Inhibicija receptorja NK-1 s specifičnimi antagonisti povzroči antitumorske učinke. Glutagonski agonisti lahko sprožijo smrt T celic, odvečni Glu vpliva na razvoj epilepsije in raka. Za zdravljenje bi se lahko uporabljalo inhibitorje mGluR1.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Katja Resnik - Signalna omrežja, ki povzročajo raka ==&lt;br /&gt;
Normalno delovanje vsake posamezne celice in posledično organizma kot celote nam omogočajo številni procesi, kjer je ključnega pomena njihova regulacija. Tako lahko spremenjene signalne poti, ki v naših celicah uravnavajo predvsem procese celične proliferacije, diferenciacije, apoptoze in na splošno celičnega cikla privedejo do številnih bolezni, med drugim tudi do razvoja raka. Dve ključni poti, ki sta pri večini človeških oblik raka napačno regulirani sta signalni poti RAS in APC. RAS proteini so vrsta G proteinov, ki regulirajo normalen potek celičnega cikla preko povezovanja z efektorskimi proteini. Onkogene oblike RAS proteinov, ki so posledica mutacij, povzročijo njihovo nenehno aktivnost, kar vodi v transformacijo signalne poti. Ta se odraža v izražanju genov, ki se sicer naj ne bi izražali, kar lahko vodi v nenehno spodbujanje celične proliferacije. Po drugi strani pa do podobnega učinka pride tudi zaradi napak v signalni poti APC, ko okvarjen protein APC ne more več opravljati funkcije zmanjševanja koncentracije ključnega proteina za regulacijo in prehod iz faze celične proliferacije v fazo diferenciacije in staranja celic. Proučevanje takšnih signalnih poti nam omogoča spoznavanje vplivov določenih mutacij na posamezne procese in njihovo prispevanje k razvoju raka. Pomembno je le, da na signalne poti gledamo kot na prepletena omrežja, kar lahko ključno prispeva k razvoju uspešnih zdravil in metod zdravljenja omenjene bolezni.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Nuša Kos Thaler - Motnje metabolizma glikogena in njihove posledice ==&lt;br /&gt;
Glikogen je makromolekula, sestavljena iz enot glukoze, ki jo najdemo predvsem v jetrih in mišicah. Njegov metabolizem je ključnega pomena za pridobivanje in shranjevanje energije v človeškem telesu. Če ne deluje pravilno, lahko povzroča različne bolezni, ki jim s skupnim imenom rečemo bolezni kopičenja glikogena (glycogen storage diseases – GSD). Te so praviloma genetske in povezane z mutacijami genov, ki kodirajo encime za sintezo, razgradnjo ali regulacijo dolžine glikogenskih verig. Pri bolezni kopičenja glikogena tipa I je mutiran encim α-glukoza-6-fosfataza, ki katalizira pretvorbo iz glukoze-6-fosfata v glukozo, kar lahko povzroči hipoglikemijo pacientov. Pri bolezni kopičenja glikogena tipa II je mutiran encim za razgradnjo glikogena v lizosomu (kisla α-glukozidaza). Zaradi neaktivnosti encima se glikogen ne more razgraditi in se nalaga v lizosomih. Če ti počijo, lahko poškodujejo celico, kar privede do mnogih okvar v telesu, predvsem do progresivne mišične oslabelosti. Zelo poseben tip bolezni je Laforina bolezen, kjer se pokaže pomembnost glikogena še v drugih organih, možganih. Pri njej se zgodijo mutacije na genih za laforin in malin, ki skupaj regulirata dolžine stranskih verig glikogena. Pogosta posledica so epileptični napadi. Kljub mnogim raziskavam na tem področju najučinkovitejših rešitev za zdravljenje omenjenih bolezni še nismo odkrili.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Karidia Kolbl - Metabolizem možganskega glikogena; povezava z motnjami spanja in glavobolom ==&lt;br /&gt;
Povezava med funkcijo spanja in nevropsihiatričnimi boleznimi, kot je depresija, ter nevrološkimi motnjami v obliki migren, je danes raziskovano a precej neopredeljeno področje. Nedavne študije so pokazale, da med spancem obnavljamo zaloge glikogena, ki jih med budnostjo porabimo. Kasneje pa so ugotovili, da pomanjkanje spanca povzroča povišano količino možganskega glikogena, kar opisuje “glikogenetska” hipoteza. Ta pravi, da sinteza in poraba glikogena potekata med budnostjo so časno, medtem ko upad prenosa vzdražnostnih signalov med nevroni v stanju spanja ustvarja neravnovesje. Zmanjšana aktivnost se odraža v kopičenju glikogena med spanjem. Njegova vloga je namreč energijsko zalagati celice, še posebej med aktivno nevrološko signalizacijo (sinaptične povezave) in s tem vzpostavljati koncentracijo kalija in glutamata. Pri osebkih, ki pa jim spanca primanjkuje, prihaja do transkripcijskih sprememb, kar lahko povzroča migrene. Njihova raven možganskega glikogena je namreč znatno manjša in so posledično nezmožni ohranjati ustrezne količine kalija in glutamata znotraj in zunaj celic. To se odraža v kortikalni depolarizaciji, ki se širi po možganski skorji med živčnimi vlakni in se elektrofiziološko gledano povezuje z avro (drugo fazo) migrene. Namen seminarske naloge je torej pregled nekaterih ugotovitev in domnev v zvezi z glikogenezo in glikogenolizo, ter posledicami njune aktivnosti.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Zarja Weingerl - Sukcinat in njegova vloga v metabolizmu==&lt;br /&gt;
Sukcinat ima v Krebsovem ciklu vlogo enega od intermediatov. Gre za dianion dikarboksilne kisline,  torej se od sukcinske kisline razlikuje le v številu dveh H atomov na karboksilnih skupinah. Njegova vloga v metabolizmu pa ni omejena le na Krebsov cikel. Je namreč pomemben medcelični komunikator ter vpliva na vnetni odziv organizma. Veže se na receptor GPR91, ki je eden od regulatornih modulatorjev pri različnih podskupinah celic, in sodeluje pri regulaciji krvnega tlaka. Sukcinat  je lahko eden od vzrokov za nastanek psevdohipoksičnega stanja, ki nastane zaradi aktivacije hipoksijske signalne poti kljub zadostni meri kisika. Deluje lahko kot kemoatraktant (snov, ki inducira premike). Zaradi njegove povezave z GABA šantom (poteka tudi v anaerobnih pogojih) pa sinteza sukcinata ni odvisna le od anaerobnih pogojev, ki so potrebni za delovanje Krebsovega cikla. Sukcinat deluje kot promotor metilacije DNA, ter vpliva na potek sukcinilacije. Sukcinilacija je posttranslacijska modifikacija pri kateri pride do vezave sukcinilnih skupin na lizinske ostanke. Da je zmožen opravljati vse te in še mnoge druge naloge igra pomembno vlogo njegov transport. Transportira se lahko preko obeh membran mitohondrija, ter tako prispe v citosol, možen pa je tudi njegov transport v medcelični prostor.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Ena Kartal - Metabolizem lipojske kisline in mitohondrijska redoks regulacija==&lt;br /&gt;
Lipojska kislina je kofaktor mitohondrijskih multiencimskih kompleksov, ki vsebuje žveplo, in je kovalentno vezan z encimom preko lizina. Prav zaradi tega, ker se nahaja v vsaki celici v našemu organizmu in kot kofaktor sodeluje pri nastanku energije organizma, je predmet različnih raziskav. Ključna njegova funkcionalna lastnost je, da se lahko podvrže redoks reakcijam. Po vsaki reakciji kjer sodeluje lipoilni kofaktor z svojo disulfidno obliko, ki deluje kot akceptor elektronov, mora potekati reoksidacija dihidrolipoamida, ki jo katalizira flavoencim lipoamid dehidrogenaza. Do danes je lipojska kislina spregledan kofaktor mitohondrijskih multiencimskih kompleksov. Ko so jo prvič izolirali iz živalskih jeter, so jo primerjali z vitaminom, ker je povezana z biosintezo maščobnih kislin, SAM (ki sodelujejo pri biosintezi biotina) in biosintezo železo-žveplovega žepka z oksidativno sposobnostjo cikla trikarboksilnih kislin. Danes se uporablja tudi kot prehransko dopolnilo. Pomanjkanje LA kofaktora vodi do disfunkcije bistvenih encimskih kompleksov, ki sodelujejo v mitohondrijskem metabolizmu, kar provzroča različne bolezni. Za zdravljenje bolzni, ki nastajajo zaradi pomanjkanja regulacije lipoilacije encimov, so še vedno potrebne dodatne raziskave, ker še obstajajo neodgovorjena vprašanja glede &#039;&#039;reciklažne poti&#039;&#039; pri biosintezi LA pri ljudeh.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Sara Jerič - Vpliv intermediatov Krebsovega cikla na metiliranje histonov in DNA ter posledično na proces staranja==&lt;br /&gt;
Intermediati cikla citronske kisline imajo pomembno vlogo pri regulaciji epigenetskih in neepigenetskih sprememb. Pri tem so najbolj pomembni 2-oksoglutarat, sukcinat in fumarat, ki z aktivacijo oz. inhibicijo vplivajo na veliko družino encimov dioksidaz, ki so odvisne od 2-oksoglutarata (2-OGDO). Ti encimi pri regulaciji neepigenetskih sprememb vplivajo na sintezo kolagena in nadzorujejo količino kisika v celici (npr. Sprožijo primeren odziv, če pride do hipoksije). Pri regulaciji epigenetskih sprememb pa 2-OGDO encimi vplivajo na metilacijo DNA in histonov ter posledično transkripcijo in izražanjem genov. Metilacija DNA poteka z encimoma DNA metiltranferaza in DNA demetilaza, metilacija histonov pa z encimoma histon metiltransferaza in histon demetilaza. Spremembe pri metilaciji DNA in histonov povzročijo tudi spremembe pri kromatinu, kar pa povezujemo s procesom staranja. S staranjem se torej zmanjša količina obnovitvenih procesov (npr. ob staranju matične celice zmanjšajo količino popravil poškodb tkiv). Proces staranja ni točno programiran v celici, temveč je naključen degradirajoč proces, ki so ga sprožile epigenetske spremembe. Intermediati Krebsovega cikla pa lahko povzročijo tudi epigenetske spremembe, ki se kažejo pri boleznih povezanih s staranjem, npr. Alzheimerjeva bolezen. Čeprav vloga intermediatov Krebsovega cikla in njihov mehanizem pri procesu staranja še ni točno določen, lahko zagotovimo, da predstavljajo enega kjučnih regulatorjev epigenetskih sprememb, ki pa vplivajo na proces staranja.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Nik Vidmar - Presnova, učinki ter bolezenska stanja kot posledica povišanih koncentracij ketonskih telesc==&lt;br /&gt;
Ketonska telesca nastajajo v jetrih v okoliščinah, ko je prisotnost glukoze prenizka za normalno delovanje organov, kot so na primer možgani. Predstavljajo jih molekule acetoacetata, ki nastaja pri presnovi maščobnih kislin ob pomankanju glukoze, 3-β-hidroksibutirata, ki nastaja v mitohondrijih jetrnih celic in acetona. Najpomembnejša med ketonskimi telesci sta acetoacetat in 3-β-hidroksibutirat, saj se transportirata kot vir energije iz jeter v druga tkiva. Tretje ketonsko telo aceton ni zelo pomembno, saj se ne porablja kot vir energije in se preko pljuč izloča iz telesa.  Ketonska telesca so pomembna zato, ker pripomorejo k varčevanju glukoze in zmanjšujejo proteolizo v času, ko je glukoze v telesu premalo, kar pomaga pri ohranjanju zdravja in funkcionalnosti telesa. Nekateri organi, kot so možgani, niso zmožni uporabiti maščobnih kislin kot vir energije, zato uporabijo ketonska telesca, ki so alternativni vir energije v primeru daljše lakote ali posta. Uravnavajo tudi nivo sproščanja inzulina in povzročijo peroksidacijo lipidov. V nižjih koncentracijah se v krvi neprestano nahajajo pri zdravih ljudeh. Njihove koncentracije se delno povečajo pri dolgi telovadbi in postu. Povišana koncentracija ketonskih telesc je lahko posledica zastrupitve, na primer z alkoholom, kar vodi do alkoholne ketoacidoze. V primeru diabetesa pa lahko povišana koncentracija vodi do diabetične ketoacidoze. Tako stanje je zelo nevarno in lahko, če ga ne zdravimo, privede do smrti.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Gašper Struna - Oksidacija maščobnih kislin v peroksisomih==&lt;br /&gt;
Oksidacija maščobnih kislin je pomemben proces, ki je vključen tako v anabolne kot katabolne metabolične poti. Ta proces poteka v mitohondrijih, kjer ima predvsem katabolno vlogo, ter v peroksisomih, kjer pa ima bolj anabolno vlogo. β-oksidaciji maščobnih kislin sta v obeh organelih zelo podobni. Obstajajo pa tudi mnoge razlike. Geni za encime, ki sodelujejo pri oksidaciji v posameznem organelu, so različni. V prenosu maščobnih kislin skozi membrano sodelujeta različna transporterja. V prvem koraku β-oksidacije se peroksisomski FADH2 takoj oksidira nazaj, pri tem pa elektrone sprejme kisik, medtem ko pri mitohondriju vstopi v elektronsko prenašalno verigo. Multifunkcijski protein (MP) pri peroksisomu za razliko od mitohondrijskega ne vsebuje tiolazne aktivnosti; ima pa peroksisom dva MP, pri čemer eden lahko reagira tudi z D-izomeri β-hidroksiacil-CoA.&lt;br /&gt;
V peroksisomu se maščobne kisline le delno oksidirajo, dokončna oksidacija poteče v mitohondriju, lahko pa oksidacija maščobnih kislin v peroksisomu služi le skrajševanju verige v anabolnih poteh, na primer pri biosintezi nekaterih lipidov. Peroksisomska oksidacija je predvsem pomembna pri oksidaciji dolgoverižnih in razvejanih maščobnih kislin. Veliko podrobnosti o oksidaciji v tem organelu pa je še vedno nepojasnjenih ali pa za njih obstajajo le modeli kot na primer pri načinu reoksidacije NADH in transportu acil-CoA skozi membrano. Pomembnost tega procesa pa nakazujejo tudi številne bolezni povezane s peroksisomsko β-oksidacijo, zaradi česar je razumevanje tega procesa zelo pomembno.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Neža Peternel - Uravnavanje oksidacije maščobnih kislin v skeletnih mišicah s prehrano in telesno vadbo==&lt;br /&gt;
Maščobe poleg ogljikovih hidratov predstavljajo pomemben vir energije za delovanje naših organizmov. Maščobne kisline (MK) se v mišicah oksidirajo in vodijo do nastanka ATP molekul. Poznavanje mehanizma oksidacije MK omogoča lažje razumevanje regulacije procesa pod vplivom različnih zunanjih dejavnikov. Med pomembnejše regulatorne proteine štejemo maščobno-kislinsko translokazo CD36, ki se nahaja v sarkolemi in regulira vnos MK v mišične celice, in karnitin-aciltransferaze (CPT1, CPT2 in CACT), ki nadzirajo vnos MK v mitohondrij. Pri procesu β-oksidacije maščobnih kislin je pomemben encim β-hidroksi-acil-CoA dehidrogenaza, ki omejuje hitrost reakcije. Dokazali so, da vzdržljivostna zmerna vadba in povečan vnos maščob pozitivno vplivata na regulacijo proteinov, ki so vključeni v proces oksidacije. Maščobne kisline in krčenje skeletnih mišic v tem primeru delujejo kot signali, ki navidezno inducirajo izražanje beljakovin v metabolnih poteh lipidov in s tem povečajo presnovno sposobnost maščobnih kislin. Pomembni signalni receptorji so jedrni transkripcijski faktorji PPAR, ki vplivajo na izražanje genov za regulatorne proteine. &lt;br /&gt;
V zadnjem času se zelo razvija farmacevtsko področje vadbene mimetike (ang. exercise mimetics). Z različnimi zdravili in prehranskimi dodatki želijo posnemati pozitivne učinke vadbe na organizem in tako olajšati poteke določenih bolezni ter zmanjšati delež ljudi s prekomerno telesno težo. Hkrati pa z razvojem takšnih zdravil prihaja tudi do dopinških zlorab v vrhunskem športu.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Urša Zevnik - Genetske napake mitohondrijske oksidacije maščobnih kislin in karnitinskega transporta==&lt;br /&gt;
Mitohondrijska oksidacija maščobnih kislin je ključen metabolni proces za zagotavljanje energije, ko se izpraznijo zaloge glikogena, za nekatere procese pa predstavlja preferenčni vir energije tudi, ko je glukoze dovolj. Za skoraj vse proteine, ki sodelujejo v procesu β-oksidacije maščobnih kislin ali karnitinskemu transportu le teh v mitohondrij, so znane genetske napake, ki povzročijo pomanjkanje ali zmanjšano aktivnost teh proteinov. Popolna odsotnost večinoma vodi v smrt v prvih dneh življenja, za delno pomanjkanje pa so značilna srčna, mišična in ledvična obolenja ter pogoste hipoglikemije. Simptomi so odvisni od posameznika, stopnje pomanjkanja in vrste okvarjenega proteina. So posledica porušene energijske homeostaze in nabiranja toksičnih metabolitov. Trajno zdravilo ne obstaja, zdravljenje pa temelji na preprečevanju katabolizma z izogibanjem postenja ali naporne fizične aktivnosti in na dieti z manjšim deležem maščob. Na voljo so tudi zdravila, ki na različne načine, na primer z obnavljanjem metabolitov cikla citronske kisline ali spodbujanjem transkripcije encimov β-oksidacije lahko omilijo simptome, vendar je njihova učinkovitost omejena. Kljub zanesljivim metodam diagnostike in presejalnim testiranjem novorojenčkov smrtnost zaradi teh bolezni ostaja visoka.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Tina Javeršek - Nedavni napredek pri zdravljenju hiperamoniemije==&lt;br /&gt;
Hiperamoniemija (HA) je stanje povišane koncentracije amonijaka v krvi, ko pride do neravnovesja med količino nastalega in odstranjenega amonijaka. Ta se v naravi nahaja predvsem v reducirani obliki kot amonijev ion NH₄⁺. Vzroka za nastanek HA sta največkrat prekomerno nastajanje odvečnega amonijaka v debelem črevesu in nezadostno razstrupljanje pri motnjah v ciklu uree. Razlikujemo med primarno in sekundarno (pridobljeno) HA. Za zdravljenje se uporablja predvsem laktuloza, sintetični disaharid, ki se v našem telesu ne presnavlja. Pogosto je tudi zdravljenje z antibiotikom rifaksiminom, ki inhibira sintezo bakterijske RNA in tako preprečuje rast bakterij, ki proizvajajo encim urezo. Ta katalizira hidrolizo sečnine, pri tem pa nastajajo amonijevi ioni. Pri visokih koncentracijah imajo toksične učinke in lahko povzročijo ireverzibilne okvare centralnega živčnega sistema. Natrijev benzoat in fenilacetat nase vežeta glicin in glutamin, nastala hipurat in fenilacetilglutamin pa se izločata z urinom. Kot sredstva za zdravljenje hiperamoniemije se uporabljajo še aminokisline z razvejano verigo, L- arginin, L-citrulin in kargluminska kislina. Ob akutnem povišanju koncentracij amonijaka v krvi se ta odstranjuje s hemodializo, s čimer v najkrajšem možnem času dosežemo znižanje njegovih koncentracij. Genska in celična terapija obljubljata učinkovit pristop pri zdravljenju, vendar so potrebne še številne raziskave na tem področju.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Klara Kočman - Bowman-Birkov inhibitor ==&lt;br /&gt;
Bowman-Birkov inhibitor, inhibira tako tripsin kot tudi α-kimotripsin. Z njima tvori kompleks 1:1 oz. 1:1:1 ko sta na inhibitor vezana oba encima. Reakcijsko mesto za inhibicijo tripsina se nahaja na mestu Lys 16–Ser 17, za inhibicijo kimotripsina pa na mestu Leu 42–Ser 44. Naloga tripsina in kimotripsina je cepitev večjih peptidov na manjše peptide v trebušni slinavki. Bowman-Birkov inhibitor najdemo v nekaterih travniških rastlinah in vseh stročnicah, predvsem v soji. Uživanje surove soje lahko vodi do hipertrofije trebušne slinavke pri živalih. Je tudi zelo učinkovit pri preprečevanju karcinogeneze, zato iščejo način kaki bi lahko z Bowman-Birkovim inhibitorjem preventivno preprečevali raka brez toksičnosti za maligne celice in vitro. V soji pa najdemo tudi Bowman-Birkovem inhibitorju podoben Kunitzov inhibitor. Znanstveniki so ugotovili, da sta Bowman-Birkovemu inhibitorju v določenih sekvencah podobna tudi inhibitor limskega ter vrtnega fižola. Bowman-Birkov inhibitor se lahko zaradi svojih sedmih disulfidnih vezi cepi na več različnih peptidov, ki ohranijo svojo inhibitorno aktivnost. Inhibitor se v raztopinah z visoko koncentracijo inhibitorja med seboj reverzibilno poveže v dimere in trimere, kar lahko vidimo tudi pri inhibitorju, izoliranem iz soje, ki je v obliki trimera.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Miha Razdevšek - Motnje razgradnje glicina in njihove posledice ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Glicin je najmanjša aminokislina, ki se razgrajuje po treh poteh. Pri ljudeh je najpogostejša razgradnja z glicin cepitvenim encimom (glycine cleavage enzyme, GCE). Ta encim je sestavljen iz štirih proteinov, ki glicin pretvarjajo v CO2 in NH4+. Ko pride do mutacij GCE, se glicin po tej poti ne more več razgrajevati in se posledično kopiči v celici. To stanje imenujemo neketotska hiperglicinemija (nonkertotic hyperglicemia, NKH). V eni izmed metabolnih poti, ki se pri takšnih pogojih aktivirajo nastane zelo reaktivna molekula metilglioksal (MGO). MGO se kovalentno poveže s proteini in DNA, kar imenujemo glikacija. Produkte, ki pri tem nastanejo pa končni produkti napredovane glikacije (advanced glycation end products, AGE).  Primarno se MGO poveže z argininom na proteinih in deoksigvanozinom na DNA. Glikacija proteinov vpliva na izgubo njihove funkcije in povezavo ekstracelularnih ter intracelularnih proteinov. Reakcija z DNA pa predstavlja nevarnosti povezane z genomsko nestabilnostjo. Povišane vrednosti MGO se povezuje z boleznimi staranja, diabetesom, debelostjo, rakom in nevrodegenerativnimi boleznimi. Izziv predstavlja predvsem razumevanje pomena MGO pri normalnem fiziološkem stanju, koncentracija, pri kateri postane MGO toksičen in možnost uporabe MGO za specifično diagnostiko bolezni.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Jan Trebušak - Vloga Karbamoil Fosfat Sintetaze 1 ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Karbamoil fosfat sintetaza 1 (CPS1) je kompleksen, večdomenski ter evolucijsko konservativen encim, ki katalizira prvo reakcijo v ciklu uree. Encim je sestavljen iz okoli 1500 aminokislin in ima dve katalitični mesti na katerih poteka fosforilacija substratov, njegov alosterični efektor pa je N-acetil-L-glutamat (NAG). Ker reakcije na CSP1 predstavljajo ‘vstopni’ korak v cikel uree ima vsakršna okvara lahko hude posledice. Najočitnejši simptom je akutna hiperamonemija oz. povišanje koncentracije amoniaka v krvi, ki lahko ob kronični izpostavitvi vodi v nevrodegenerativna obolenja. Čeprav je hiperamonemija glavni in najbolj akutni zaplet pri okvari CSP1, pa ni edini.  Raziskave so pokazale, da ima CSP1 vpliv tudi na nastanek in rast raka, razvoj kardiovaskularnih obolenj in tudi zmožnost posameznikov za vzdrževanje konstantne telesne mase. Trenutne oblike zdravljenja vključujejo strogo izogibanje aminokislinam v prehrani in uživanje dodatkov, ki nase vežejo dušik iz organizma. Naprednejše oblike zdravljenja, kot so genska terapija in jemanje analogov NAG, ki bi spodbudili delovanje tudi nepravilno delujoče CSP1 so v začetnih fazah kliničnih testiranj. Pri genskem zdravljenju predstavlja težavo tudi to, da je večina inaktivirajočih mutacij na CSP1 specifičnih za posamezne družine ali majhne populacije, kar pomeni, da vsaka od the potrebuje posebaj prilagojeno zdravljenje. Na tem področju je potrebno opraviti še veliko raziskav, da bi odkrili zdravilo za nedelujočo CSP1.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Lana Kores - VLOGA METABOLIZMA RAZVEJANIH AMINOKISLIN PRI BOLEZNI JAVORJEVEGA SIRUPA (MSUD)==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Prirejene napake metabolizma (IEM) so pogosto posledica redkih monogenskih napak, ki sledijo mendelskim vzorcem dedovanja za avtosomne-recesivne lastnosti. Prizadeti posamezniki imajo mutacijo na obeh alelih na monogenskem mestu, medtem ko njihovi starši po definiciji nosijo le en mutiran alel in se pri njih fenotip bolezni ne izraža. Bolezen javorjevega sirupa (MSUD) je primer take monogenske bolezni. Povzroči jo okvara razvejane α-ketokislinske dehidrogenaze (BCKD). BCKD je multiencimski kompleks, zgrajen iz treh katalitičnih komponent: E1 – dekarboksilaze, sestavljene iz 2α in 2β podenot; E2 – transciklaze; in E3 – dehidrogenaze. Gen za E1α najdemo na kromosomu 19, gen za E1β na kromosomu 6, gen za E2  na kromosomu 1 in gen za E3 na kromosomu 7. Pri normalnem delovanju (v zdravem človeku) bi v prvem koraku metabolizma BCAA izocimi razvejane aminokislinske transaminaze (BCATs) transaminirale BCAAs do razvejanih α-ketokislin (BCKAs), torej iz levcina do α-ketoizokaproata (KIC), iz izolevcina do α-keto-β-metilvalerata (KMV) in iz valina do α-ketoizovalerata (KIV). V naslednjem koraku metabolne poti bi razvejan ketokislinski dehidrogenazni kompleks (BCKDC) kataliziral ireverzibilno oksidativno dekarboksilacijo α-ketokislin (vendar se pri MSUD zaradi okvare BCKD to ne zgodi). Zaradi tega pride do kopičenja razvejanih aminokislin in posledično do hudih nevroloških motenj.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Maša Mencigar - Reaktivne kisikove zvrsti in njihova vloga pri rakavih obolenjih ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Reaktivne kisikove zvrsti (ROS, ang. reactive oxygen species) so skupina reduciranih nestabilnih derivatov kisika, ki imajo dobre oksidativne lastnosti. V celici nastajajo pri normalnem delovanju celičnega metabolizma v nizkih koncentracijah in so potrebne za homeostazo celice in celično signaliziranje, delujejo kot sekundarni sporočevalci. Ob povišani koncentraciji pa so za celico lahko nevarni, saj privedejo do oksitadivnega stresa. Oksidativni stres lahko povzroči poškodbe in mutacije DNA ter pripomore k drugim obolenjem kot so nevrodegenerativne bolezni in rakava obolenja. Antioksidanti, kot so superoksid dismutaze (SOD), Glutation (GSH)  in Jedrni faktor eritroid 2 (NFR2), preprečujejo povišanje koncentracije ROS v celici, saj pretvarjajo ROS do manj reaktivnih spojin oziroma vode. Različne koncentracije reaktivnih kisikovih zvrsti različno vplivajo na celico, ob povišani koncentraciji ROS se poveča nastanek malignih mutacij, ROS torej deluje kot tumor promotor. Ob previsokih koncentracijah ROS pa privede do celične smrti, torej deluje ROS kot tumor supresor.Delovanje ROS kot tumor promotor ali supresor pa ni odvisno le od njegove koncentracije v celici, ampak tudi od stopnje razvoja in lokacije tumorja. Za zdravljenje rakavih obolenj uporabljajo nekatere kemoterapetvike (cisplatin, bleomicin in arsenični trioksid), ki povišajo koncentracije ROS in s tem povzroči nepopravljive poškodbe celic, ter privede do celične smrti.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Klara Razboršek - Regulacija apoptoze v zdravju in bolezni: uravnoteženo delovanje BCL-2 družine proteinov ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Apoptotska celična smrt je ključen proces za ohranjanje tkivne homeostaze. Poznamo ekstrinzično pot apoptoze, ki je rezultat zunajceličnih signalov, in intrinzično ali mitohondrijsko pot. Le-ta je rezultat signalov, ki delujejo direktno na tarče znotraj celic. Pomembni regulatorji te poti so proteini iz družine BCL-2. Gre za globularne proteine, ki se nahajajo v citosolu v bližini mitohondrija ali pa se sidrajo v zunanjo mitohondrijsko membrano. Razdelimo jih v tri skupine, glede na njihovo vlogo pri regulaciji procesa apoptoze. Pro-apoptotski proteini se aktivirajo kot odziv na celični stres in sprožijo začetek procesa apoptoze. Anti-apoptotski proteini kljubujejo pro-apoptotskim tako, da jih vežejo nase in jih s tem deaktivirajo, kar lahko zaustavi proces apoptoze. Če anti-apoptotskih proteinov ni dovolj ali pa so deaktivirani, se pro-apoptotski proteini vežejo na pro-apoptotske efektorske proteine – BAK in BAX. Ta dva proteina se sidrata v zunanjo mitohondrijsko membrano in preko oligomerizacije tvorita makropore. To povzroči permeabilizacijo zunanje mitohondrijske membrane. Iz medmembranskega prostora mitohondrija se sprosti citokrom c, kar povzroči aktivacijo kaspaz, ki povzročijo programirano celično smrt. Če pride do napak pri regulaciji BCL-2 proteinov lahko to privede do različnih obolenj, kot so nevrodegenerativne in avtoimune bolezni ter raka. Nepravilna regulacija v času prenatalnega razvoja pa lahko privede v smrt embria.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Špela Rapuš - Zlivanje in cepitev mitohondrijev ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mitohondriji imajo veliko pomembnih funkcij v celici, zato je pomembno njihovo pravilno delovanje. Pri tem sta pomembna zlivanje in delitve mitohondrijev, ki vplivata, da so procesi, med katerimi je tudi oksidativna fosforilacija, pravilno regulirani. Ključni faktorji za ta procesa spadajo v superdružino dinaminov in izkoriščajo hidrolizo GTP za svoje delovanje. Za zlivanje membran so ključni mitofuzina Mfn1 in Mfn2 ter protein Opa1. Pri delitvi pa sodelujejo Drp1 in njegovi adaptorji na površini membrane, ki oblikujejo delitveni kompleks. Pri delitvi so pomembni tudi ostali dejavniki, ki pripomorejo k delitvi na primer endoplazemski retikulum in polimerizacija aktina okoli mitohondrija, ki začetno zoži mesto delitve. Morfologija mitohondrija, ki jo regulirata zlivanja in cepitve, je povezana tudi z metaboličnim stanjem celice. Od oblike krist je namreč odvisno tudi delovanje kompleksov oksidativne fosforilacije. Mutacije v zapisih za proteine, ki sodelujejo pri zlivanju oziroma cepitvi, vodijo v nepravilno delovanje pomembnih procesov v mitohondriju in kot posledica nastopijo mnoge bolezni, predvsem nevrodegenerativne kot tudi rak.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Vanja Ivošević - Kompleksonst biosinteze ubikinona ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Ubikinon (koencim Q_10)  je koencim, ki je prisoten pri vseh živalih in pri večini bakterij, sestavni je del transportne verige elektronov ter tako sodeluje pri aerobnem celičnem metabolizmu, ki proizvaja energijo v obliki ATP. Najdemo ga predvsem v mitohondrijih, največ ga ima v mitohondrijih organov, ki imajo visoko potrebo po energiji kot so srce, jetra in ledvice. Obstajajo tri redoks stanja ubikinona, popolnoma oksidirano (ubikinon), ubisemikinon in popolnoma reducirano stanje (ubikinol). Ubikinon ima bistveno vlogo  kot elektronski prenašalec med kompleksom NADH: ubikinon oksidoreduktazo (kompleks I), sukcinat dehidrogenazo (kompleks II) in citokrom bc_1 kompleksom (kompleks III) dihalne verige, lahko prenaša dva ali en elektorn. Biosinteza je glavni vir ubikinona. Za biosintezo je potrebno vsaj 12 genov, če se zgodi mutacija na enem ali več teh genov, prihaja do pomanjkanja ubikinona v organizmu. Mutacije v človeških genih za sintezo ubikinona povzročajo stanje, ki se imenuje primarno pomanjkanje ubikinona, mitohondrijsko motnjo, ki se manifestira na različne načine kot so multisistemske motnje, encefalopatija ali nefropatija. Direktna posledica pomanjkanja ubikinona je zmanjašana proizvodnja ATP in prekomerna tvorba ROS- reaktivnih kisikovih zvrst. Za razliko od večine ostalih mitohondrijskih motenj, za zdravljenje te motnje je na voljo učinkovito zdravljenje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Lev Jošt - Tvorba ROS in njen prispevek k signalizaciji in k razumevanju bolezni ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mitohondriji so dobro znani po svoji osrednji vlogi pri proizvodnji ATP, homeostazi kalcija ter biosintezi hema in steroidov. Označili so jih za t.i. &amp;quot;elektrarno&amp;quot; celice. &lt;br /&gt;
Mitohondrijska elektronska transportna veriga (ETC) uporablja vrsto reakcij prenosa elektronov za ustvarjanje celičnega ATP z oksidativno fosforilacijo. Posledica prenosa elektronov je nastajanje reaktivnih kisikovih vrst (ROS). Za omenjene ROS, pri katerih je ključen superoksid in tudi vodikov peroksid, se je sprva menilo, da so strupeni stranski produkti mitohondrijske fiziološke aktivnosti, a so na podlagi raziskav dokazali, da so to pomembne molekule, katerih proizvodnja, pretvorba in uničenje so zelo regulirani. Torej funkcije ETC so tesno povezane s tvorbo ROS ter proizvodnjo ATP in glede nato da ETC uravnava celično homeostazo s tema dvema procesoma in da so bile odkrite spremembe v obeh teh procesih povezane s patologijo neštetih bolezni, ki zajemajo skoraj vse organske sisteme, je logično sklepati, da nam lahko zmožnost natančnega in učinkovitega merjenja delovanja ETC pri ljudeh zagotovi koristne diagnostične in mehanistične informacije.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=BIO2_Seminar_2021&amp;diff=19605</id>
		<title>BIO2 Seminar 2021</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=BIO2_Seminar_2021&amp;diff=19605"/>
		<updated>2021-12-11T22:08:14Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: /* Seznam seminarjev */&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;= Biokemijski seminar  =&lt;br /&gt;
doc. dr. Gregor Gunčar, K2.022&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Seznam seminarjev  ==&lt;br /&gt;
{| {{table}}&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;priimek, ime&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;poglavje&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;naslov seminarja&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;recenzent 1&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;recenzent 2&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;datum oddaje&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;datum recenzije&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;datum predstavitve&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Valte, David||12||Jedrni hormonski receptorji in izražanje genov||Mitkov, Kostadin||Brdnik, Nuša||29/10/21||01/11/21||03/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kolar, Alliana||12||Pomen upravljanja z agonisti, antagonisti in signalnimi modulatorji receptorjev abscizinske kisline (ABA) v agronomiji||Vukšinić, Ivana||Premrl, Petja||29/10/21||01/11/21||03/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Glavnik, Hana||12||S-glutationilacija proteinov kot globalni inhibitor celičnega metabolizma za zmanjšanje občutljivosti signalov vodikovega peroksida||Kovač, Ela||Kavčič, Ema||29/10/21||01/11/21||03/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Štefan, Urša||12||Signalizacija STING - obseg delovanja in povezava z rakavimi obolenji||Vujović, Nataša||Zajec, Tina||29/10/21||01/11/21||03/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Butara, Tinkara||12||Transmembranska signalizacija v bakterijskih kemoreceptorjih||Sotlar, Špela||Žnidar, Žan||29/10/21||01/11/21||03/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Špehar, Pia||12||Integrini in njihova vloga pri vezikularnem transportu||Trošt, Pia||Rus, Metka||05/11/21||08/11/21||10/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Urh, Tina||12|| Nevrotransmiterji, agonisti in antagonisti kot tarča zdravljenja ||Maučec, Ana||Loborec, Mark||05/11/21||08/11/21||10/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Rotar, Andraž||12||Vloga signalne poti JAK/STAT in njeni inhibitorji pri človeških boleznih||Priveršek, Maj||Kastelic, Ana||05/11/21||08/11/21||10/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Starc, Gaja||12||Medsebojni vpliv vodikovega sulfida in drugih signalnih molekul pri uravnavanju signaliziranja celic zapiralk in odzivu na abiotski oziroma biotski stres||Spruk, Teja||Možina, Gašper||05/11/21||08/11/21||10/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Resnik, Katja||12||Signalna omrežja, ki povzročajo raka||Deutsch, Maja||Sotlar, Pia||05/11/21||08/11/21||10/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Bohte, Janja||14-15||Vloga in regulacija aerobne glikolize pri hepatocelularnem karcinomu||Valte, David||Mitkov, Kostadin||12/11/21||15/11/21||17/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Miklošič, Maja||14-15||ni opravila||Kolar, Alliana||Vukšinić, Ivana||12/11/21||15/11/21||17/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kovačić, Marko||14-15||Vloga citokinov poddružine IL-1 pri regulaciji glikolize in njihov vpliv na bolezni, povezane z glikolizo||Glavnik, Hana||Kovač, Ela||12/11/21||15/11/21||17/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kolbl, Karidia||14-15||Metabolizem možganskega glikogena; povezava z motnjami spanja in glavobolom||Štefan, Urša||Vujović, Nataša||12/11/21||15/11/21||17/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kos Thaler, Nuša||14-15||Motnje metabolizma glikogena in njihove posledice||Butara, Tinkara||Sotlar, Špela||12/11/21||15/11/21||17/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Ažbe, Klara||16||Vpliv metabolitov Krebsovega cikla na fiziologijo in bolezni||Špehar, Pia||Trošt, Pia||19/11/21||22/11/21||24/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Jerič, Sara||16||Vpliv intermediatov Krebsovega cikla na metiliranje histonov in DNA ter posledično na proces staranja||Urh, Tina||Maučec, Ana||19/11/21||22/11/21||24/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Mencin, Pia||16||Akonitaza in njena vloga v celici||Rotar, Andraž||Priveršek, Maj||19/11/21||22/11/21||24/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Weingerl, Zarja||16||Sukcinat in njegova vloga v metabolizmu||Starc, Gaja||Spruk, Teja||19/11/21||22/11/21||24/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kartal, Ena||16||Metabolizem lipojske kisline in mitohondrijska redoks regulacija||Resnik, Katja||Deutsch, Maja||19/11/21||22/11/21||24/11/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Struna, Gašper||17||Oksidacija maščobnih kislin v peroksisomih||Bohte, Janja||Valte, David||26/11/21||29/11/21||01/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Špenko, Andrej||17||||Miklošič, Maja||Kolar, Alliana||26/11/21||29/11/21||01/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Zevnik, Urša||17||Genetske napake mitohondrijske oksidacije maščobnih kislin in karnitinskega transporta||Kovačić, Marko||Glavnik, Hana||26/11/21||29/11/21||01/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Peternel, Neža||17||Uravnavanje oksidacije maščobnih kislin s prehrano in telesno vadbo||Kolbl, Karidia||Štefan, Urša||26/11/21||29/11/21||01/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Vidmar, Nik||17||Presnova, učinki ter bolezenska stanja kot posledica povišanih koncentracij ketonskih telesc||Kos Thaler, Nuša||Butara, Tinkara||26/11/21||29/11/21||01/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Trebušak, Jan||18||Vloga karbamoil fosfat sintetaze||Ažbe, Klara||Špehar, Pia||03/12/21||06/12/21||08/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kores, Lana||18||Urinska bolezen javorjevega sirupa (MSUD)||Jerič, Sara||Urh, Tina||03/12/21||06/12/21||08/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Razdevšek, Miha||18||Motnje razgradnje glicina in njihove posledice||Mencin, Pia||Rotar, Andraž||03/12/21||06/12/21||08/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Javeršek, Tina||18||Nedavni napredek pri zdravljenju hiperamoniemije||Weingerl, Zarja||Starc, Gaja||03/12/21||06/12/21||08/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kočman, Klara||18||Bowman-Birkov inhibitor||Kartal, Ena||Resnik, Katja||03/12/21||06/12/21||08/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Jošt, Lev||19||Tvorba ROS in njihov prispevek k signalizaciji in razumevanju bolezni||Struna, Gašper||Bohte, Janja||10/12/21||13/12/21||15/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Razboršek, Klara||19||Regulacija apoptoze v zdravju in bolezni: uravnoteženo delovanje BCL-2 proteinov ||Špenko, Andrej||Miklošič, Maja||10/12/21||13/12/21||15/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Rapuš, Špela||19||Zlivanje in cepitve mitohondrijev||Zevnik, Urša||Kovačić, Marko||10/12/21||13/12/21||15/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Mencigar, Maša||19||Reaktivne kisikove zvrsti in njihova vloga pri rakavih obolenjih||Peternel, Neža||Kolbl, Karidia||10/12/21||13/12/21||15/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Ivošević, Vanja*gg||19||Kompleksnost biosinteze ubikinona||Vidmar, Nik||Kos Thaler, Nuša||10/12/21||13/12/21||15/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kogovšek, Jan||20||Karbonska anhidraza in molekularna evolucija C4 fotosinteze||Trebušak, Jan||Ažbe, Klara||17/12/21||20/12/21||22/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Brdnik, Nuša||20||Vloga šaperonov v biogenezi encima Rubisco||Kores, Lana||Jerič, Sara||17/12/21||20/12/21||22/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Premrl, Petja||20||||Razdevšek, Miha||Mencin, Pia||17/12/21||20/12/21||22/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kavčič, Ema||20||Zaloga ogljika in regulacija sinteze celične stene||Javeršek, Tina||Weingerl, Zarja||17/12/21||20/12/21||22/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Zajec, Tina||20||Morski organizmi - načini avtotrofne fiksacije ogljika razen Calvinovega cikla||Kočman, Klara||Kartal, Ena||17/12/21||20/12/21||22/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Žnidar, Žan||21||||Jošt, Lev||Struna, Gašper||17/12/21||20/12/21||22/12/21&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Rus, Metka||21||||Razboršek, Klara||Špenko, Andrej||31/12/21||03/01/22||05/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Loborec, Mark||21||||Rapuš, Špela||Zevnik, Urša||31/12/21||03/01/22||05/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kastelic, Ana||21||||Mencigar, Maša||Peternel, Neža||31/12/21||03/01/22||05/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Možina, Gašper||21||||Ivošević, Vanja||Vidmar, Nik||31/12/21||03/01/22||05/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Sotlar, Pia||22||Metabolizem purinov in z njim povezane bolezni||Kogovšek, Jan||Trebušak, Jan||31/12/21||03/01/22||05/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Mitkov, Kostadin||22||||Brdnik, Nuša||Kores, Lana||03/01/22||06/01/22||11/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Vukšinić, Ivana||22||Vloga bilirubina kot signalne molekule||Premrl, Petja||Razdevšek, Miha||04/01/22||07/01/22||11/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Kovač, Ela||22||Aminokislinska regulacija skeletnih mišic||Kavčič, Ema||Javeršek, Tina||05/01/22||08/01/22||11/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Vujović, Nataša||22||||Zajec, Tina||Kočman, Klara||06/01/22||09/01/22||11/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Sotlar, Špela||23||||Žnidar, Žan||Jošt, Lev||07/01/22||10/01/22||12/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Trošt, Pia||23||||Rus, Metka||Razboršek, Klara||07/01/22||10/01/22||12/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Maučec, Ana||23||Vloga tiroidnih hormonov v kraniofacialnem razvoju||Loborec, Mark||Rapuš, Špela||07/01/22||10/01/22||12/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Priveršek, Maj||23||||Kastelic, Ana||Mencigar, Maša||07/01/22||10/01/22||12/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Spruk, Teja||23||||Možina, Gašper||Ivošević, Vanja||07/01/22||10/01/22||12/01/22&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Deutsch, Maja||23||Mehanizem delovanja tiroidnih hormonov||Sotlar, Pia||Kogovšek, Jan||07/01/22||10/01/22||12/01/22&lt;br /&gt;
|}&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
*številka v okencu za temo pomeni poglavje v Lehningerju, v katerega naj izbrana tema spada&lt;br /&gt;
Razporeditev je začasna in se lahko še spremeni, načeloma pa se termini do vključno 18. poglavja ne bodo spreminjali. &lt;br /&gt;
Prosim, da mi sporočite morebitne napake ali če vas nisem razporedil.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Gradivo za predavanja ==&lt;br /&gt;
Gradivo za predavanja in seminarje najdete na http://bio.ijs.si/~zajec/bio2/&lt;br /&gt;
username: bio2&lt;br /&gt;
password: samozame&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Naloga==&lt;br /&gt;
&#039;&#039;&#039;Vaša naloga za seminar je:&amp;lt;br&amp;gt;&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
Samostojno pripraviti seminar o seminarski temi, ki vam je bila dodeljena. Za osnovo morate vzeti &amp;lt;font color=red&amp;gt; pregledni &amp;lt;/font&amp;gt; članek iz revije, ki ima faktor vpliva nad 5 (npr. [http://www.sciencedirect.com/science/journal/09680004/ TIBS]. Poiskati morate še vsaj tri znanstvene članke, ki se nanašajo na opisano temo, in jih uporabiti kot podlago za seminarsko nalogo! Članki so dostopni [https://libgen.is/ tukaj].&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Za pripravo seminarja velja naslednje:&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
* [[BIO2 Povzetki seminarjev 2021|Povzetek seminarja]] opišete na wikiju &#039;&#039;&#039;v 200 besedah&#039;&#039;&#039; (+- dvajset besed) - najkasneje do dne, ko morate oddati seminar recenzentom. &lt;br /&gt;
* Povezavo do povzetka vnesete v tabelo seminarjev tekočega letnika.&lt;br /&gt;
* Seminar pripravite v obliki seminarske naloge na ~5–12 straneh A4 (pisava 12, enojni razmak, 2,5 cm robovi). Obseg seminarja naj bo &amp;lt;font color=red&amp;gt;2700 do 3000 besed &amp;lt;/font&amp;gt;, a ne več kot 3500 besed. Seminarska naloga mora vsebovati najmanj tri slike, bolje več. &amp;lt;font color=red&amp;gt;Eno sliko morate narisati sami in to pod sliko posebej označiti. Slika mora imeti legendo in v besedilu mora biti na ustreznem mestu sklic na sliko. &amp;lt;/font&amp;gt;&lt;br /&gt;
* Seminar oddajte do datuma oddaje, ki je naveden v tabeli, v elektronski obliki z uporabo [http://bio.ijs.si/~zajec/poslji/ tega obrazca].&lt;br /&gt;
* Vsi seminarji so v elektronski obliki dostopni [http://bio.ijs.si/~zajec/poslji/bioseminar/ tukaj].&lt;br /&gt;
* Recenzenti do dneva, določenega v tabeli, določijo popravke (v elektronski obliki) in podajo oceno pisnega dela. Popravljen seminar oddajte z uporabo [http://bio.ijs.si/~zajec/poslji/ tega obrazca].&lt;br /&gt;
* Ustna predstavitev sledi na dan, ki je vpisan v tabeli. Za predstavitev je na voljo 20–25 minut. Recenzenti morajo biti na predstavitvi prisotni.&lt;br /&gt;
* Predstavitvi sledi razprava. Recenzenti podajo oceno predstavitve in postavijo najmanj dve vprašanji. Vsi ostali morajo postaviti še dve dodatni vprašanji v okviru celega seminarskega obdobja. Vprašanja, ki ste jih postavili, vpišite na [https://docs.google.com/forms/d/e/1FAIpQLSdV9OFlNzI3XyS8FRGnuIbG89gwH_36uwz29ocigV--2CXSbQ/viewform tukaj].&lt;br /&gt;
* Na dan predstavitve morate docentu še pred predstavitvijo oddati končno (popravljeno) in natisnjeno verzijo seminarja v enem izvodu, elektronsko verzijo seminarja in predstavitev pa oddati na strežnik na dan predstavitve do polnoči.&lt;br /&gt;
* Seminarska naloga in povzetek morajo biti v slovenskem jeziku, razen za študente, katerih materni jezik ni slovenščina. Ti lahko oddajo seminar v angleškem jeziku.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==&amp;lt;font color=green&amp;gt;Imena datotek&amp;lt;/font&amp;gt;==&lt;br /&gt;
Prosim vas, da vse datoteke, ki mi jih pošiljate, poimenujete po naslednjem receptu:&lt;br /&gt;
* 312_BIO_Priimek_Ime.docx za seminar, npr. 312_BIO_Guncar_Gregor.docx&lt;br /&gt;
* 312_BIO_Priimek_ime_final.docx za končno verzijo seminarja&lt;br /&gt;
* 312_BIO_Priimek_Ime_rec_Priimek2.docx za recenzijo, kjer je Priimek2 priimek recenzenta, npr. 312_BIO_Guncar_Gregor_rec_Scott.docx (če se pišete Scott in odajate recenzijo za seminar, ki ga je napisal Gunčar)&lt;br /&gt;
* 312_BIO_Priimek_Ime.pptx za prezentacijo, npr 312_BIO_Guncar_Gregor.pptx&lt;br /&gt;
* &amp;lt;font color=green&amp;gt;312_BIO_Priimek_ime_poprava.doc(x) za popravljeno končno verzijo seminarja, če so popravki manjši&amp;lt;/font&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Ocenjevanje seminarjev==&lt;br /&gt;
Recenzenti ocenijo seminar tako, da izpolnijo [https://docs.google.com/forms/d/1EQDYwFO-DEzZ2R7jf8DhLqIeV4FFxRd3-ScceEASpt4/viewform recenzentsko poročilo] na spletu. Recenzentsko poročilo morate oddati najkasneje do 21:00, en dan pred predstavitvijo seminarja.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Mnenje o predstavitvi ==&lt;br /&gt;
Vsak posameznik odda svoje mnenje o predstavitvi takoj po predstavitvi z online glasovanjem.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Urejanje spletnih strani na wikiju==&lt;br /&gt;
Wiki so razvili zato, da lahko spletne vsebine ureja vsakdo. Ukazi so preprosti, dokler si ne zamislite česa prav posebnega. Vseeno pa je Word v primerjavi z wikijem pravo čudežno orodje&amp;amp;nbsp;... Če imate težave z oblikovanjem besedila, si preberite poglavje o urejanju wiki-strani na Wikipediji ([http://en.wikipedia.org/wiki/Help:Editing tule] v angleščini in [http://sl.wikipedia.org/wiki/Wikipedija:Urejanje_strani tu] v slovenščini). Pomaga tudi, če pogledate, kako je zapisana kakšna stran, ki se vam zdi v redu: kliknite na zavihek &#039;Uredite stran&#039; in si poglejte, kako so vpisane povezave, kako nov odstavek in podobno. &#039;&#039;Na koncu seveda pod oknom za urejanje kliknite na &#039;Prekliči&#039;.&#039;&#039;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Citiranje virov==&lt;br /&gt;
Citiranje je možno po več shemah, važno je, da se držite ene same. V seminarskih nalogah in diplomskih nalogah FKKT uprabljajte shemo citiranja, ki je pobarvana &amp;lt;font color=green&amp;gt;zeleno&amp;lt;/font&amp;gt;.&lt;br /&gt;
Temeljno načelo je, da je treba vir navesti na tak način, da ga je mogoče nedvoumno poiskati.&lt;br /&gt;
Za citate v naravoslovju je najpogostejše citiranje po pravilniku ISO 690. [http://www.zveza-zotks.si/gzm/dokumenti/literatura.html Pravila], ki upoštevajo omenjeni standard, so pripravili pri ZTKS. Sicer pa ima vsaka revija lahko svoj način citiranja, ki ga je treba pri pisanju članka upoštevati.&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
&#039;&#039;&#039;Citiranje knjig:&#039;&#039;&#039;&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Priimek, I. &#039;&#039;Naslov&#039;&#039;. Kraj: Založba, letnica.&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Priimek, I. &#039;&#039;Naslov: podnaslov&#039;&#039;. Izdaja. Kraj: Založba, letnica. Zbirka, številka. ISBN.&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Boyer, R. &#039;&#039;Temelji biokemije&#039;&#039;. Ljubljana: Študentska založba, 2005.&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Glick BR in Pasternak JJ. &#039;&#039;Molecular biotechnology: principles and applications of recombinant DNA&#039;&#039;. 3. izdaja. Washington: ASM Press, 2003. ISBN 1-55581-269-4.&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Če so avtorji trije, je beseda in med drugim in tretjim avtorjem. Če so avtorji več kot trije, napišemo samo prvega in dopišemo &#039;&#039;et al&#039;&#039;. (in drugi, po latinsko). Vse, kar je latinsko, pišemo poševno (npr. tudi imena rastlin in živali, pojme &#039;&#039;in vivo&#039;&#039;, &#039;&#039;in vitro&#039;&#039; ipd.). &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&#039;&#039;&#039;Citiranje člankov:&#039;&#039;&#039;&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Priimek, I. Naslov. &#039;&#039;Naslov revije&#039;&#039;, letnica, letnik, številka, strani.&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
&amp;lt;font color=green&amp;gt;Lartigue, C., Glass, J. I., Alperovich, N., Pieper, R., Parmar, P. P., Hutchison III, C. A., Smith, H. O. in Venter, J. C.&lt;br /&gt;
Genome transplantation in bacteria: changing one species to another. &#039;&#039;Science&#039;&#039;, 2007, 317, str. 632-638.&amp;lt;/font&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Alternativni način citiranja (predvsem v družboslovju) je po pravilih APA, kjer članke citirajo takole:&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Priimek, I. (letnica, številka). Naslov. Naslov revije, strani.&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Lartigue C. &#039;&#039;et al.&#039;&#039; (2007, 317) Genome transplantation in bacteria: changing one species to another. &#039;&#039;Science&#039;&#039;, 632-638.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Revija Science uporablja skrajšani zapis:&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
C. Lartigue &#039;&#039;et al&#039;&#039;. Science 317, 632 (2007)&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V diplomah na FKKT je treba navesti vire tako, da izpišete tudi naslov citiranega dela in strani od-do (ne samo začetne). Navesti morate tudi vse avtorje dela, razen v primeru, ko jih je 10 ali več. Takrat navedite le prvih devet, za ostale pa uporabite okrajšavo in sod. (in sodelavci). Pred zadnjim avtorjem naj bo vedno besedica &amp;quot;in&amp;quot;. &lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&#039;&#039;&#039;Citiranje spletnih virov:&#039;&#039;&#039;&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Priimek, I. &#039;&#039;Naslov dokumenta&#039;&#039;. Izdaja. Kraj: Založnik, letnica. Datum zadnjega popravljanja. [Datum citiranja.] spletni naslov&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
strangeguitars. &#039;&#039;On the brink of artificial life&#039;&#039;. 6. 10. 2007. [citirano 13. 11. 2007] http://www.metafilter.com/65331/On-the-brink-of-artificial-life&amp;lt;br&amp;gt;&lt;br /&gt;
Navedemo čim več podatkov; pogosto vseh iz pravila ne boste našli.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=TBK_2022_Povzetki_seminarjev&amp;diff=18431</id>
		<title>TBK 2022 Povzetki seminarjev</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=TBK_2022_Povzetki_seminarjev&amp;diff=18431"/>
		<updated>2021-04-17T14:47:47Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: &lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;=== Magdalena Ilievska: &lt;br /&gt;
Spomin brez možganov - Kako enocelični sluzni kalup pametno sprejema odločitve brez centralnega živčnega sistema&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Seminarska naloga govori o tem, kako enocelični sluzni kalup Physarum polycephalum pametno sprejema odločitve brez centralnega živčnega sistema. Physarum polycephalum, brezcelični sluzni kalup je protist z različnimi celičnimi oblikami in široko geografsko razširjenostjo. Njegovo telo je ogromna enojna celica, sestavljena iz medsebojno povezanih cevi, ki tvorijo zapletene mreže. V zadnjih letih so raziskave Physarum polycephalum spet postale vrhunske. Leta 2000 je japonski raziskovalec Toshiyuki Nakagaki izvedel osnovni poskus, ki je pokazal, da je sluzni kalup sposoben najti najkrajšo pot skozi labirint. Od takrat se je pametno reševanje problemov Physarum polycephalum vrnilo iz sence in je danes spet v središču, ko se razpravlja o vprašanjih o izvoru inteligence in spoznanja. Raziskovalci na Inštitutu za dinamiko in samoorganizacijo Max-Planck in Tehniški univerzi v Münchnu so ugotovili, kako sluzni kalup Physarum polycephalum ohranja spomine - čeprav nima živčnega sistema. Sposobnost shranjevanja in pridobivanja informacij daje telesu očitno prednost pri iskanju hrane ali pri izogibanju škodljivih okoljih. Tradicionalno se to pripisuje organizmom, ki imajo živčni sistem. Novi študiji avtorjev Mirne Kramar in prof. Karen Alim izzivajo tega stališča z odkrivanjem neverjetnih sposobnosti zelo dinamičnega enoceličnega organizma za shranjevanje in pridobivanje informacij o svojem okolju.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Živa Urh: Zmanjšanje transkripcijske aktivnosti povzroči stresno pogojena jedrna kondenzacija NELF ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V stresnih razmerah celice preklopijo iz običajnega v bolj omejen način delovanja, da se zaščitijo pred poškodbami. Pri tem si pomagajo na različne načine. Eden od načinov je varnostni program imenovan toplotni šok, ki  je povezan s hitro regulacijo genske aktivnosti (zmanjšanjem transkripcije) v stresnih situacijah. Stres  povzroči nastanek jedrnih kondenzatov NELF, ki nastanejo, ko NELF tvori kapljice. NELF ali negativni podaljševalni dejavnik, je proteinski kompleks iz več podenot, ki se ob jedrnem signalu oblikuje v kondenzate oz. kapljice. Vezava kompleksa NELF na promotorje vzdrževalnih genov je tista, ki povzroči slabšo mobilnost RNA polimeraze II in posledično slabše prepisovanje genov ter tako zmanjša proizvodnjo proteinov, ki niso nujni v stresnih razmerah. Mehanizem nastanka jedrnih kondenzatov je povezan z defosforilacijo NELF in nadaljnjo SUMOilacijo. Ta dva procesa spadata pod posebne post-translacijske modifikacije (PTM), ki so bistvene za kondenzacijo NELF. Pomembno vlogo pri formaciji kondenzatov NELF imajo tudi neurejene regije (IDR), ki jih najdemo pri posameznih podenotah tega proteinskega kompleksa. IDR so deli proteinov brez fiksne strukture in delujejo kot lovke. Povezave med lovkami podenot A in E med so bistvenega pomena za tvorbo kapljic oz. kondenzatov. Celice, ki zaradi  pomanjkanja lovk pri podenotah ne tvorijo kondenzatov NELF tudi ne zmanjšajo transkripcije. Posledično take celice normalno prepisujejo gene in so tako bolj dovzetne za celično smrt.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Tinkara Butara: Kako rastline zaznajo napad herbivorov ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Rastline niso nemočni opazovalci dogajanja okoli njih, ampak se na okoliške dražljaje tudi odzivajo. Skozi evolucijo so razvile posebne obrambne mehanizme, ki se sprožijo kot odgovor na elicitorje. Elicitorji so kemijske zvrsti, ki jih lahko izločajo herbivori ali pa rastline same. Te kemijske zvrsti se vežejo na proteinske receptorje na celični membrani in tako sprožijo odziv, na primer na objedanje. Sporočilo o nevarnosti se nato širi do lokalno poškodovanih delov rastline in sistemsko opozarja celotno rastlino na poškodbo. Rastlini lastni elicitorji so najpreprostejši tip, med katerimi je najbolj univerzalen zunajcelični ATP. Primerni elicitorji herbivorov so prebavni encimi v njihovi slini ter konjugati maščobnih kislin in aminokislin. Odziv rastline na napad herbivora pa je lahko povezan tudi s simbiotskimi organizmi herbivora. Ti lahko izločajo snovi s katerimi omogočijo lažji razvoj insekta ali pa s tem pomagajo rastlini. Pomemben sprožilec rastlinskega odziva na herbivore so tudi fizični dražljaji, ki jih ti povzročajo. Pri tem se sproščajo hlapne snovi, ki lahko služijo privabljanju naravnih sovražnikov herbivora ali pa širijo sporočilo o nevarnosti do drugih rastlin. Kot odziv na elicitorje se v večini primerov tvorita rastlinska hormona jasmonska in salicilna kislina, ki sta del obrambnih mehanizmov rastlin. Karakterizacija rastlinskih elicitorjev nam ponuja orodje za razvoj agrokemikalij, ki bodo odganjale herbivore in hkrati ščitile rastline.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Pia Špehar: Mehanizem delovanja proteina omogoča odpornost na zdravila proti raku ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Leta 1986 je celični biokemik Kazumitsu Ueda odkril, da ima protein ABCB1 zmožnost, da iz rakavih celic transportira mnoge kemoterapevtike in tako telesu omogoči odpornost na kemoterapijo. ABCB1 spada med ABC-prenašalce, in sicer je eden izmed tistih prenašalcev, ki iz celic izločajo toksične hidrofobne komponente. Najdemo ga v membranah celic v jetrih, možganih, testisih in placenti. Skoraj 30 let po odkritju funkcije proteina, je Ueda s svojo ekipo lahko določil še mehanizem njegovega delovanja, in sicer z izvedbo več raziskav. Sprva so protein kristalizirali v stanju pred in po transportu substrata ter primerjali stanji med seboj, izvedli pa so tudi analizo s FRET tehniko. Ugotovili so, da substrat vstopi v osrednjo votlino skozi del proteina v notranjosti celice. Nato se veže na vrh osrednje votline proteina, kjer se nahaja hidrofobno aromatsko omrežje, ki ima pomembno vlogo pri prepoznavanju substratov. Vezava substrata na to omrežje sproži konformacijsko spremembo proteina. Za spremembo je potrebna tudi energija, ki jo priskrbi molekula ATP. Vezava ATP-ja sproži tudi nastanek omrežja, ki povzroči, da se protein začne zvijati in obračati, skrči se tudi osrednja votlina proteina. Ko se osrednja votlina skrči, se substrat izloči v zunajcelični prostor. Pri celotnem procesu je pomembna tudi hidroliza ATP, ki služi temu, da se protein vrne nazaj v prvotno stanje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Pia Trošt: Barvna povezava v sposobnosti korale, da preživi višje temperature ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Zaradi naraščajočega vpliva antropogenih dejavnikov koralni grebeni hitro propadajo in korale se morajo prilagoditi vse bolj stresnemu okolju. Acropora tenuis je ena glavnih vrst koral ob obali Okinave na Japonskem in se pojavlja v treh barvnih različicah (N, G in P), med katerimi je bila opažena različna stopnja beljenja pri povišani temperaturi. Korale živijo v sožitju z algami iz družine Symbiodiniaceae. Pri različicah N in P je bila zaznana zmanjšana fotosintetska aktivnost simbiontov, medtem ko je različica G ohranila aktivnost tudi pri povišani temperaturi. Raziskava je pokazala, da vse barvne različice gostijo isti klad simbiontov, torej različne temperaturne odpornosti ni mogoče pripisati razliki v Symbiodiniaceae. Ker je bil genom A. tenuis dekodiran, je bilo mogoče identificirati gene za fluorescenčne proteine (GFP, CFP, RFP in ChrP). Poletna raziskava profilov izražanja posameznih proteinov je pokazala, da je bilo izražanje CFP in RFP pri vseh različicah nizko, različica P je pokazala višje izražanje ChrP, različica G pa višje izražanje GFP, ki se je ohranilo tudi pri višji temperaturi. Rezultati kažejo, da imajo vse različice enak nabor genov za fluorescenco, torej so barvne različice vzrok različnega izražanja genov FP, ki povečajo odpornost koral proti beljenju.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Gašper Struna: Kako sistem toksin-antitoksin vpliva na odpornost bakterij na antibiotike ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Sistemi toksin-antitoksin (TA) imajo pomembno vlogo v bakterijah. Vplivajo na stabilnost plazmida in imajo pomembno vlogo pri postsegregacijskem propadu. Če plazmida ni, antitoksin ne prepreči delovanja toksina in toksin povzroči propad celice. Poznamo sedem tipov TA sistemov, med katerimi je najpogostejši tip II. Pri tem tipu antitoksin prepreči delovanje toksina tako, da se močno veže nanj in s tem inhibira njegovo delovanje. TA sistem tipa II najdemo tudi v bakteriji Pseudoaltermonas rubra, in sicer je ta TA sistem predstavnik para ParE/PF03693. V raziskavi so ugotovili, da antitoksin (PrpA) iz tega para zmanjša delovanje toksina na več načinov, in sicer tako da se neposredno veže na toksin ali pa se veže na promotor TA operona in deluje kot represor. PrpA ima pomembno vlogo tudi pri replikaciji, saj se lahko veže na podobno mesto kot iniciatorski protein RepB in s tem onemogoči začetek replikacije. PrpA ima na N-koncu vezavno mesto za DNA, s C-koncem pa interagira s toksinom, je tudi labilen, vezava na toksin pa ga stabilizira.  Pari ParE/PF03693 so tudi v nekaterih virulentnih bakterijah in njihova nadaljnja študija bi lahko pripomogla k boljšemu razumevanju odpornosti bakterij na antibiotike in njihovem virulentnem delovanju.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Nuša Kos Thaler: Hitra evolucija litičnih genov v enoverižnih RNA bakteriofagih ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Levivirusi so bakteriofagi z majhnim enoverižnim RNA genomom, ki ga sestavljajo 3–4 geni. Eden od njih je gen &#039;&#039;sgl&#039;&#039; (ang. single gene lysis), ki kodira protein za sprožitev avtolize gostiteljske celice in sprostitev virionov. Za razliko od dvoverižnih DNA bakteriofagov, ki encimsko razgradijo peptidoglikan (glavno enoto celične stene bakterijskih celic), protein Sgl pri lizi po navadi deluje kot nekompetitivni inhibitor in preprečuje njegov nastanek. Geni &#039;&#039;sgl&#039;&#039; so zelo majhni, raznoliki in pogosto vstavljeni v druge gene, zaradi česar jih težko odkrijemo. V nedavnih raziskavah so našli več deset tisoč genomov levivirusov, ki jih pred kratkim še nismo poznali. V določenih so odkrili gene &#039;&#039;sgl&#039;&#039; in preizkušali njihovo aktivnost na &#039;&#039;E. coli&#039;&#039; ter ugotovili, da lahko hitro ustvarijo gen &#039;&#039;sgl&#039;&#039;. Bazna zaporedja najdenih genov &#039;&#039;sgl&#039;&#039; imajo zelo malo ali celo nobene podobnosti z baznimi zaporedji že preučevanih genov &#039;&#039;sgl&#039;&#039;. V genomu posameznega bakteriofaga se lahko pojavlja več genov &#039;&#039;sgl&#039;&#039;, kar pomeni, da bi lahko levivirusi hkrati okužili in lizirali celice evolucijsko oddaljenih bakterijskih vrst. Zaradi svoje raznolikosti, hitre evolucije in zmožnosti spreminjanja so potencialni vir za razvoj proteinskih antibiotikov in fagne terapije.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Nataša Vujović: How HER2 positive breast cancer cells evade treatments that utilize T cells ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Immunotherapy continues to show exciting promise in more effectively treating cancer especially hematologic malignancies but they have not proven effective in treating solid tumors. The T lymphocyte is of key importance to the immune system and is at the core of adaptive immunity. Their roles include directly killing infected host cells, activating other immune cells, producing cytokines and regulating the immune response. Global research efforts centering on T cell-engaging therapies like T-cell bispecific antibodies (TCBs) and chimeric antigen receptors (CARs), are conducted in hope of finding a more effective treatment for cancer. TCBs are typically designed to bind to a selected tumor-associated antigen and to a T cell receptor (TCR). CAR T cells are T cells that have been genetically engineered to produce an artificial T cell receptor for use in immunotherapy. Researchers have now found a novel mechanism of resistance to T cell therapies used by HER2 positive breast cancer cells. The resistance is obtained by disruption of interferon-gamma signaling. IFN-γ has a critical role in recognizing and eliminating pathogens. The disruption of its pathways happens by JAK2 down-modulation. The kinase JAK2 transduces the signal initiated by interferon-gamma. JAK2 was shown to be repeatedly disrupted in several resistant models.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Urša Zevnik: FOXO3, gen, povezan z dolgoživostjo, ščiti možganske matične celice pred stresom  ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Forkhead box O3 (FOXO3) je protein, ki sodeluje pri številnih procesih, ki podaljšujejo življenjsko dobo in zavirajo s starostjo povezane bolezni. Ugotovili so, da imajo posamezniki z določeno različico tega gena kar trikrat večjo možnost, da dočakajo sto let. &lt;br /&gt;
Ena izmed njegovih funkcij je tudi obramba nevralnih matičnih celic pred oksidativnim stresom. V oksidirajočih pogojih v celici pride do oksidacije cisteina na FOXO3, kar prepreči njegovo fosforilacijo. Tak protein se transportira v jedro, kjer deluje kot transkripcijski faktor. Med drugim poveča prepisovanje encima glicin-N-metiltransferaze (GNMT), ki katalizira reakcijo, pri kateri se porablja S-adenozil metionin (SAM). SAM kot metilni donor omogoča dozoritev jedrnih laminov, ker pa je zaradi več GNMT njegova razpoložljivost manjša, lamini ne dozorijo pravilno in se združujejo v skupke. To privede do prepustnosti jedrne membrane, iz jedra uhajajo fragmenti DNA, celica jih zamenja za virusne nukleotide in sproži interferonski odziv tipa I. Ta povzroči, da nevralne matične celice preidejo v dormantno stanje in se prenehajo deliti. To je ugodno, saj nevroni, nastali v stresnih razmerah, nebi preživeli, celice pa bi se pri delitvah izčrpavale. Tkivo bi torej prej izgubilo sposobnost obnavljanja in se prej postaralo.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Sara Borišek: Dieta z visoko vsebnostjo maščob lahko prekomerno aktivira destruktivni protein NOX-2 ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Debelost je prisotna pri ljudeh že od nekdaj, v zadnjih letih pa je odstotek debelosti pri ljudeh kar precej narasel, predvsem pri mladih, s tem pa so narasle tudi zdravstvene težave ljudi s prekomerno težo. Predvsem je z debelostjo asociirana prehrana, ki vsebuje velik delež maščob ta pa s srčnimi obolenji. V ospredju je hipertrofija levega srčnega prekata, ki je eno izmed glavnih srčnih obolenj in povečuje tveganje za smrt. Hipertrofija levega prekata je zgostitev in povečanje sten levega prekata. Vse več pozornosti zato dobiva NADPH oksidaza 2 ali NOX-2, ki ima zaradi svojega vpliva na oksidativno škodo, povzročeno s prehrano, glavno vlogo pri ustvarjanju bioaktivnega superoksida. Znanstveniki so v raziskavi, ki je potekala na Šoli za biološko znanost Univerze v Readingu preverili ali obstaja povezava med proteinom NOX-2 in prehrano, ki vsebuje visok odstotek maščob pri hipertrofiji levega prekata. Trenutne ugotovitve so, da prehrana z visoko vsebnostjo maščob povzroči oksidativni stres, ki ga nadzira protein  NOX-2, kar podpira hipertrofijo levega srčnega prekata. Zanimanje za selektivno ciljanje na protein NOX-2 kot terapevtsko strategijo je naraslo, zato so v raziskavi predlagali specifično ciljanje aktivacije srčnega proteina NOX-2, ki bi lahko bil izvedljiv pristop k ohranjanju funkcije miokarda v presnovnih pogojih.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Nika Ferk: Formulacije na osnovi biomaterijalov za boj proti virusnim nalezljivim boleznim ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
V seminarski nalogi si bomo podrobneje pogledali kako se človeštvo in današnja znanost spopadata z izzivi patogenih delcev in boleznimi, ki jih le te povzročajo. Z nalezljivo kužnimi boleznimi se človeštvo soča že od nekdaj. Skozi razvijanje tehnologij smo ustvarili cepiva. Običajno se klasična cepiva, pridobljena iz živih oslabljenih patogenov in inaktiviranih virusov, rekombinantnih proteinov in sintetičnih peptidov. S cepivi v telesu povzročimo imunski odziv in nastanek protiteles. Skozi napredovanje tehnologije, natančneje biotehnologije in nanotehnologije so na trg prišli biomateriali.  Biomateriali imajo dober potencial za boj proti kužnim boleznim, predvsem zaradi njihovih lasnosti kot so: oblike in značilnosti površine, ki skupaj močno vplivajo na učinkovit način prenosa delcev. Še pomembneje pa je, da biomateriali omogočajo dostavo antigenov in imunsko stimulirajočih snovi, ki predstavljajo močan pristop cepljenja pri aktivaciji imunskih odzivov. Same pa lahko tudi vplivajo na zaščito materiala, ki ga nosijo in s tem lahko podaljšajo sproščanje. Raziskani in najbolj potencialni biomaterijali so sintetični in naravni polimerni delci, lipidi, samosestavljeni proteini, virusom podobni delci (VPD) in anorganski delci. Eden izmed najbolj uspešnejših biološko razgradljivih biomaterijalov je PLGA ali poli(mlečno-ko-glikolna kislina). Poleg kisline so bili tudi zelo uspešni anorganski nano delci, formulirani so bili kot sistem za dajenje cepiv zaradi njihovih ustreznih fiziokemijskih lastnosti.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Špela Rapuš: Kako mikobakterije tvorijo membranske vezikle ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mikobakterije sicer uvrščamo med Grampozitivne bakterije, vendar imajo precej bolj zapleteno celično ovojnico. Ta sestoji iz notranje membrane, sloja peptidoglikana in dodatne mikomembrane, v kateri so značilne mikolične kisline. Odkrili so, da te bakterije tvorijo membranske vezikle na dva različna načina, odvisno od zunanjih pogojev, katerim so podvržene. Če mikobakterijo izpostavimo poškodovanju DNA se bo sprožil proces, angl. bubbling cell death, pri katerem se bodo tvorili membranski vezikli iz notranje membrane. Če pa bakterijo izpostavimo stresu na celično ovojnico, se ta odzove s procesom imenovanim angl. mycomembrane blebbing, pri katerem se iz mikomembrane odcepljajo vezikli. Kot modelni organizem so pri raziskavi uporabili Corynebacterium glutamicum in jo izpostavili mitomicinu C, ki je induciral stres na DNA in penicilinu G oz. deficitu biotina, ki sta zavirala biosintezo celične stene. Pri tem so se tvorili membranski vezikli na različne načine. Preučili so tudi lipidno sestavo membranskih veziklov in z rezultati skušali dokazati njihov izvor. Do podobnih ugotovitev pa so prišli tudi pri nekaterih drugih mikobakterijah. Membranski vezikli so izrednega pomena v proizvodnji cepiv in antibiotikov, zato so njihova dognanja velikega pomena.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Leila Bohorč: Dokaz o obstoju različnih mehanizmov delovanja majhnih molekul, ki inhibirajo vstop filovirusov v celico ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Virusa ebola in Marburg spadata v družino filovirusov, ki veljajo za ene najnevarnejših patogenov na svetu. Za vstop v celice uporabljajo mehanizem, ki je posredovan z enim samim glikoproteinom na površini virusa. Odkritih je bilo že mnogo potencialnih inhibitorjev, a je ravno visoka smrtnost eden izmed razlogov za slabo poznavanje mehanizmov.  Majhne molekule, ki lahko inhibirajo vstop filovirusov v celico, so lahko že odobrena zdravila, ki se sicer uporabljajo pri zdravljenju drugih bolezni. Na glikoproteinu virusa ebola je primarno vezavno mesto hidrofoben žep na območju notranje fuzijske zanke. Dve izmed številnih molekul, ki se lahko vežejo tja, sta ospemifen in toremifen, ki se razlikujeta le v stranski verigi. Toremifen se lahko zaradi bazične aminske funkcionalne skupine akumulira tudi v lizosomih, kar poveča njegovo učinkovitost. Dimetilaminska stranska veriga na tej molekuli pa nima posebne vloge pri direktni vezavi molekule na hidrofoben žep. Na glikoproteinu ebole obstaja še sekundarno vezavno mesto na območju domene HR2. Na bazični žep v tej regiji se vežejo le specifične molekule kot sta fluoksetin in toremifen. Ti molekuli proti eboli delujeta sinergično, proti Marburgu pa antagonistično. Na glikoproteinu virusa Marburg je domena HR2 primarno vezavno mesto.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Ivana Vukšinić: Sekvestracija žvepla v času pomanjkanja hranil pospeši nastanek mnogoceličnega organizma  ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Ko je v okolju na voljo dovolj hranil, gliva sluzavka vrste Dictyostelium discoideum obstaja v obliki enoceličnega organizma, ob morebitnem nastopu stradanja pa se posamezne celice začnejo združevati in tvorijo agregat, ki se obnaša kot mnogoceličen organizem. Med kulminacijo se iz njega razvije sorokarp s sporangijem, v katerem se tvorijo spore, ki populaciji omogočijo preživetje neugodnih razmer. To sposobnost uravnava novo odkrit mehanizem, s katerim od žvepla odvisno metabolično stikalo narekuje celično diferenciacijo. V času pomanjkanja hranil pride do porasta reaktivnih kisikovih spojin (ROS), ki so v velikih količinah celici škodljive, kar privede do velike potrebe po sintezi antioksidanta glutationa (GSH). To povzroči sekvestracijo cisteina, enega izmed prekurzorjev GSH, kar omeji razpoložljivost te aminokisline za potrebe drugih procesov v celici. Cistein je namreč ena od le dveh aminokislin, ki vsebujeta žveplo, to pa ima med drugim pomembno vlogo pri sintezi večine proteinov in železo-žveplovih klastrov, ki so ključne funkcionalne skupine v metaboličnih encimih. Izkazalo se je, da sekvestracija žvepla upočasni sintezo proteinov, inhibira proliferacijo celic in tako utira pot mnogoceličnemu razvoju. Izsledke raziskave bi lahko uporabili pri preučevanju drugih proliferacijskih celic, kot so rakave celice, pri katerih bi ciljanje procesov žveplovega metabolizma lahko izboljšalo protitumorno imunost.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Primož Šenica Pavletič: Nov način preprečevanja širjenja malarije z gensko spremenjenimi komarji  ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Malarija je bolezen, ki vsako leto prizadene na milijone ljudi v najrevnejših državah sveta. Bolezen povzroči parazit plazmodij, glavni prenašalci pa so komarji. Za zdravljenje in preprečevanje bolezni obstaja kar nekaj zdravil, vendar so ta za večino ljudi, ki živijo v državah v razvoju nedostopna. Ena najboljših rešitev za zajezitev bolezni je genska modifikacija malaričnih komarjev. Številne študije nakazujejo na veliko učinkovitost nadzorovanja populacije z genskim inženiringom. V raziskavah so komarjem vstavili gen za rezistenco na parazit ali pa so z vstavljenimi geni povzročili zmanjšanje celotne populacije. To pomeni širjenje genov, ki povzročajo pristransko razmerje med spoloma (več moških osebkov), oziroma širjenje genov, ki bi naredili samice neplodne. Glavni cilj je preprečiti ženskim osebkom prenašati parazit plazmodij na gostitelja in s tem širiti bolezen. Za spremembo DNA se uporablja tehnika CRISPR-Cas9S. S CRISPR-Cas9S lahko spremenimo genom na kateremkoli mestu. Znanstveniki so povečali možnost, da se želena lastnost prenese na naslednje generacije tako, da so uporabili gene drive. Gene drive spodbudi celico, da prepiše želeni del gena na homologni kromosom. Gene drive je zelo učinkovit, saj se je v 5 – 7 generacijah (odvisno od števila osebkov, ki so imeli gene drive že od začetka) razširil na več kot 95% populacije.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Lana Bajec: Inhibicija encima 15-PGDH pomlajuje mišice in povečuje mišično moč ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Med staranjem so skeletne mišice podvržene strukturnim in funkcijskim spremembam. Po 50. letu starosti ljudje povprečno začnejo izgubljati 15 – 30 %  mišične mase na desetletje, kar se kaže kot drastična izguba mišične moči. Ta mišična distrofija in izguba moči je znana kot sarkopenija. Sarkopenija je posledica krčenja mišičnih vlaken in upadanja števila in zmogljivosti mitohondrijev v celicah mišičnih vlaken, ki mišici zagotavljajo energijo. Raziskovalci na Stanford University Shool of Medicine so s pomočjo inhibicije proteina 15-PGDH v starejših miših dosegli obnovo mišične mase in moči v mišicah živali ter njihovo vzdržljivost, kar bi lahko igralo veliko vlogo pri potencialni strategiji zdravljenja sarkopenije pri ljudeh. V mišicah starejših miših inhibicija encima 15-PGDH s tako imenovanim genetskim knockdownom ali pa z inhibitorjem SW preprečuje atrofijo mišic in znatno poveča mišično maso, moč in vzdržljivost. Dokazali so, da ima molekukla 15-PGDH velik vpliv na mišično funkcijo. Miši z inhibiranim encimom 15-PGDH so bile zmožne dalj časa teči na tekalni stezi in bile nasplošno bolj vzdržljive. Velik vpliv na to naj bi imelo znatno povečanje števila mitohondrijev in njihovih funkcij ter izboljšanje celične avtofagije pri inhibiciji encima 15-PGDH.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Pia Sotlar: Zdravljenje s sistemom za urejanje genoma, ki temelji na metodi CRISPR, uničuje rakave celice ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
CRISPR-Cas9 je metoda, ki lahko z uporabo encima Cas9 in sgRNA permanentno uniči točno določene gene, kar predstavlja potencialen način za zdravljenje raka. V rakavi celici bi tako izbris oziroma motnja v genu PLK1, ki nosi zapis za kinazo PLK1, ki je ključna pri procesu mitoze, povzročila celično smrt v delečih se celicah. V raziskavi so se lotili problema dostave velikega encima Cas9 in sgRNA. Nov način dostave, ki ga ne omejujeta toksičnost in majhna nosilnost so klinično odobreni nanodelci, ki zaradi svoje kationske narave omogočajo učinkovito zajemanje nukleinske kisline. Dokazali so da z uporabo le-teh lahko dosežejo učinkovito urejanje genoma tako in vitro kot in vivo. Pri tem so se osredotočili na urejanje genoma pri celicah GBM 005, izoliranih iz gliomov, in celični liniji adenokarcinoma jajčnikov (OV8). In vitro inkubacija je pri teh celičnih linijah povzročila 84 oziroma 91% genomskega urejanja. Pri sistemu in vivo, so bili te procenti malce nižji (68%), zato so za  potrebe sistemskega doziranja razvili tudi sistemsko injicirane lipidne nanodelce, ki so bili premazani s protitelesi in so zagotavljali še bolj učinkovit privzem kinaze Cas9 in sgRNA. Taki tarčni lipidni nanodelci so omogočali 82% urejanje genoma in povečali preživetje miši za 80%. S tem so dokazali učinkovitost lipidnih nanodelcev za prenos in predstavili novo metoda zdravljenja raka.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Zarja Weingerl: Odkritje novih malih proteinov v Salmonelli in njihov vpliv na bakterijsko virulenco ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Mali proteini so proteini sestavljeni iz manj kot 100 amonokislin. So skupina še zelo neraziskanih struktur z zelo raznolikimi vlogami v fiziologiji bakterij. Znanstveniki so se odločili podrobneje raziskati njihovo funkcijo znotraj Sallmonele Typhimurium. Želeli so odkriti ORFje (odprte bralne okvirje) sedaj še nepoznanih in nedoločenih malih proteinov. Pri tem so uporabili mnogo različnih orodji in znanstvenih metod, kot so: sPepFinder, Ribo-seq, TraDIS, Grad-seq, prenos western itd. Pridobili so 139 različnih sORF kandidatov, ki so jih poimenovali kot STsORF, čemur sledi še zaporedno število. Vseh 139 novo odkritih STsORFjev so dodali v zapis Salmonelle in tako število malih proteinov znotraj tega dvignili na 609 vnosov. Dodatno so raziskali 16 na novo odkritih STsORFjev, ki sta jih predvidela tako sPepFinder kot tudi Ribo-seq. Raziskali so tudi vpliv malih proteinov na virulentnost Salmonelle. Opazovali so izražanje sORFjev med infekcijo in ga primerjali z njihovo izraženostjo v vcepku. Ker se je v teh raziskavah mnogokrat pojavil protein MgrB so želeli dodatno proučiti njegov vpliv na virulentnost in prišli do njegove povezave z bičkom in geni povezani z gibljivostjo. Njegovo pomankanje namreč povzroči defekt v gibljivosti, ki je posledica motnje uravnavanja bička.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Teja Spruk: Bakterije, odporne na antibiotike: Fluorid kot rešitev ===&lt;br /&gt;
Zaradi vedno večje uporabe antibiotikov v medicinske in znanstvene namene, je odpornost nanje vedno večji problem. V naravnem okolju je vedno večja prisotnost antibiotikov in mikrobov, ki so nanje odporni, kar je posledica njihove uporabe pri selekciji v laboratorijih. Ta poteka tako, da celicam, za katere hočejo, da preživijo, vstavijo gen za odpornost na določen antibiotik. Nato jih dajo na gojišče s tem antibiotikom in tako preživijo le zaželene celice, ostale odmrejo. A vendar je veliko organizmov razvilo sistem, kako obiti naše antibiotike in tako je problem vedno večji. V raziskavi so razvili preprosto in učinkovito metodo za odpravo prekomerne uporabe le teh ter za omejevanje gensko spremenjenih organizmov. Ta zahteva zamenjavo antibiotikov v laboratoriju s fluoridom, ki je strupen za mikroorganizme. Ti so razvili gen FEX (angl. fluoride exporter) za zaščito celic z odstranjevanjem fluorida, ki ga najdemo v naravnem okolju. Raziskovalci so zato odstranili gen FEX in tako povzročili neodpornost na fluorid. GSO bi seveda v laboratoriju še vedno uspeval, saj tam uporabljajo destilirano vodo. Če pa bi ušel v naravo, bi umrl takoj, ko bi naletel na fluorid in s tem bi se preprečilo nadaljnje razmnoževanje.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Metka Rus: Zdravljenje motenj metabolizma lipidov in previsokega holesterola z genskim spreminjanjem na osnovi lipidnih nanodelcev ===&lt;br /&gt;
Cilj članka je optimizacija in testiranje lipidnega nanodelca, uporabljenega kot vektor za prenos sistema CRISPR-Cas9 v hematocite v jetrih. Sistem CRISPR-Cas9 je orodje za gensko spreminjanje v živih organizmih. V tem primeru je tarča genskega inženiringa gen Angptl3, ki kodira encim Angptl3. Ta encim vpliva na količino trigliceridov in holesterola v celicah, saj inhibira encim protein lipazo, ki le te razgrajuje. Z genskim inženiringom torej želimo doseči mutacijo na genu, ki bi zmanjšala koncentracijo encima Angptl3 in posledično zmanjšala koncentracijo holesterola in trigliceridov. Seveda pa ima sistem CRISPR-Cas9 svoja tveganja, na katera pa lahko delno vplivamo z vektorjem ki sistem prenaša do ciljne točke. Pojavlja se tveganje za mutacije v napačnih celicah in na napačnih lokusih, velik izziv pa je tudi doseči dovoljšno učinkovitost sistema oziroma doseči, da sistem res pride do cilja (v tem primeru do DNKja v hepatocitah). Vektorji za to nalogo že obstajajo a imajo veliko pomanjkljivosti. Primer je vektor MC-3, ki je že odobren s strani FDA. Dana raziskava skuša optimizirati in testirati lipidni nanodelec z osnovnim lipidoidom v ovojnici 306-O12B. Delovanje tega delca primerjajo z delovanjem delca MC-3 in izkaže se, da je tako specifičnost kot učinkovitost nanodelca z lipidoidom 306-O12B večja.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Pia Mencin: Povečana afiniteta hemoglobina do kisika ter okrepljen Bohrov učinek sta posledica prilagoditve pingvinov na vodno okolje===&lt;br /&gt;
Pingvini so razvili številne prilagoditve na vodno okolje, saj je to okolje v katerem si lovijo hrano. Daljši čas potopa pingvinom, poleg številnih drugih prilagoditev, omogočata povišana afiniteta hemoglobina (Hb) do kisika (O2) in okrepljen Bohrov učinek (tj. zmanjšana afiniteta Hb do O2 pri nizkem pH). Natančneje funkcionalno spremenjen Hb pingvinov omogoča da povečajo ekstrakcijo O2 iz pljuč in razkladanje O2 iz krvi, to jim zagotavlja da učinkoviteje izkoristijo svoje zaloge O2 vdihnjenega zraka in povečajo čas podvodnega iskanja hrane. Do tega odkritja so znanstveniki prišli s primerjavo Hb pingvinov in Hb najbližjih sorodnih organizmov pingvinov, ki se ne potapljajo. Rekonstruirali so Hb pingvinom najbližjega skupnega prednika (AncSphen) ter Hb starejšega prednika (AncPro), ki so si ga delili pingvini z njihovimi najbližjimi sorodniki, ki se ne potabljajo. S primerjavo prej omenjenih Hb so dokazali,  da je prišlo do povečanja afinitete Hb do O2 in okrepljenega Bohrovega učinka pri pingvinih in ne do zmanjšanja afinitete ter poslabšanja Bohrovega učinka pri pingvinom sorodnim organizmom, ki se ne potapljajo. To dokazuje da se je spremenjena funkcija Hb pingvinov razvila kot posledica prilagoditve na vodno okolje. Raziskave so tudi pokazale da so funkcionalne spremembe v Hb pingvinov posledica večkratnih substitucij aminokislin, ki ustvarjajo interakcije med podenotami in stabilizirajo R-stanje Hb.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Ana Maučec: Retrovirusne integracije v genom zarodnih celic prispevajo k povišani verjetnosti za razvoj raka pri gostitelju ===&lt;br /&gt;
Endogeni retrovirusni elementi so prisotni v genomu večine sesalcev in predstavljajo ostanke okužb zarodnih celic z eksogenimi virusi pred več milijoni let. Številne raziskave so retroviruse povezale z razvojem različnih rakavih obolenj pri sesalcih. Z evolucijskih razvojem gostitelja so se spreminjali tudi endogeni virusi, zato je neposredne škodljive učinke na gostiteljev genom, kot so moteno in prekomerno izražanje genov, težko zaznati. Retrovirus koal (KoRV) je trenutno edini znani virus, ki prehaja med eksogeno in endogeno obliko. Gre za zapleten proces, ki vključuje kopičenje mutacij v virusnem nukleotidnem zaporedju in rekombinacijo. Skozi veliko generacij postanejo endogeni retrovirusi fiksirani in neaktivni. Zaradi nadpovprečne pojavnosti raka v populaciji koal iz severne Avstralije, so znanstveniki predpostavili povezavo med malignimi obolenji in KoRV. V vzorcih desetih koal so v zdravem in tumorskem tkivu določili lokacijo in število integracijskih mest (IM) endogenih retrovirusov. V izbranih genih blizu IM so zaznali moteno izražanje genov in njihovo večjo ekspresijo. Največjo gostoto IM so zaznali v bližini onkogenov in predvidevajo, da večja transkripcijska aktivnost teh genov olajša integracije virusov na teh mestih. Retrovirusne »invazije« genomov sesalcev imajo na začetku številne škodljive posledice za gostitelje, a so skozi zgodovino pomembno prispevale k oblikovanju njihovih genomov, tudi človekovega.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Neža Peternel: Prehrana lahko spremeni proces trimetilacije H3K4 v semenčicah in posledično vpliva na izražanje fenotipa pri potomcih ===&lt;br /&gt;
Znano je, kako se različne bolezni in deformacije lahko dedujejo preko genskega zapisa, v zadnjih desetletjih pa se veliko raziskav ukvarja s tematiko prenosa epigenetskih informacij na potomce. Epigenetske spremembe so za razliko od genskih reverzibilne in ne posegajo v zapis DNA, temveč z različnimi označevalci vplivajo na specifično izražanje genov. Trimetilacija lizina 4 na histonski podenoti 3 (H3K4me3) je bila v semenčicah identificirana kot pomemben člen pri prenosu informacij na potomce, saj naj bi se izognila epigenetskemu reprogramiranju pred vgnezditvijo zarodka. V nedavnih raziskavah so ugotovili, da lahko pomanjkanje folata v prehrani privede do motenj v folatnem ciklu, kar posredno vpliva na procese metilacije in demetilacije. Abnormalnosti v vzorcih metilacije so bile prisotne predvsem blizu področij, kjer se nahajajo geni za pravilno izgradnjo kosti, tako pri očetu kot tudi pri potomcih, posledice pa so se kazale pri izražanju fenotipa potomcev. Pomanjkanje folata v kombinaciji s povečano ekspresijo gena za KDM1A je privedlo do še hujših deformacij. Kot možno razlago izognitve reprogramiranja H3K4me3 so navedli pogosto sovpadanje trimetiliziranih območij H3K4 z regijami za vezavo proteinov Smc1 in CTCF. S študijo so odgovorili na mnoga vprašanja v zvezi z mehanizmi epigenetskega dedovanja, hkrati pa odprli možnosti za nadaljnjo raziskovanje, predvsem glede popravljalnih mehanizmov, ki bi lahko preprečili prenos določenih epigenetskih vzorcev na potomce.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Zoran Džon Ivanić: Reprogramiranje za povrnitev mladostne epigenetske informacije in vida ===&lt;br /&gt;
Epigenom med drugim tvorijo tudi vzorci metilacije DNA, ki opredeljujejo identiteto celice in njeno funkcijo. Informacijska teorija staranja razlaga staranje kot izgubo epigenetske informacije kamor spada sprememba vzorcev metilacije. Raziskovalce zanima, ali je s povrnitvijo mladostnega vzorca metilacije v organizmu mogoče doseči regeneracijo. Z uporabo transkripcijskih faktorjev Yamanake OCT4, SOX2 in KLF4 (OSK) so uspešno pomladili genetsko aktivnost v fibroblastu stare miši. Na modelu poškodbe vidnega živca v miši pa je izraženje OSK omogočilo regeneracijo in proliferacijo aksonov. Poškodba živca spremeni metilacijo DNA na podoben način kot staranje. To spremembo OSK prepreči s povečanjem količine TET1 in TET2, encimov, ki katalizirata demetilacijo DNA. Preizkus OSK pri zdravljenju modela glavkoma pri miših je pokazal spodbudne rezultate. Glavkom je obolenje oči, za katero je značilno povečanje tlaka v očesu, izguba ganglijskih celic mrežnice (RGC) in aksonov v vidnem živcu. Izražanje OSK je povrnilo gostoto aksonov nazaj na zdrav nivo, kar je bilo zaznati v izboljšanju ostrine vida osebkov. Med vzroki za slabši vid je tudi staranje. Zdravljenje starih miši z OSK je slab vid popravilo. Pri tem je bilo odkrito, da se nivoji mRNA 464 genov s staranjem spremenijo, 90% teh pa se s pomočjo izražanja OSK povrne v mladostno stanje. Tako je z OSK mogoče pomladiti kompleksno tkivo in povrniti njegovo funkcijo.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Nik Vidmar: Molekularne superstrukture zmožne vstopati v nevrone in aktivirati nevronske receptorje ===&lt;br /&gt;
Z hitrim staranjem prebivalstva po svetu se pojavlja vedno večje število degenerativnih obolenj, ki pa predstavljajo tako ekonomsko kot druženo obremenitev. Zato je veliko poudarka v znanstvenem svetu na alternativnih metodah regenerativne medicine, ki bodo lahko v prihodnosti pomagale pri zdravljenju in preprečevanju degenerativnih obolenj. Veliko pozornosti je bilo v zadnjih letih posvečene raziskovanju proteinskih molekularnih superstruktur predvsem takih, kjer prevladujejo gostitelj-gost interakcije. V raziskavi so raziskovali potencialne aplikacije gostitelj-gost kompleksa med β-ciklodekstrinom in adamantanom na peptidnih amfifilih in ugotavljali kako je ta hidrogel vplival na aktivnost možganskih nevronov. Izkazalo se je, da je raziskovan biomaterial ugodno vplival na aktivacijo nevronov in da so se ti dobro razraščali skozi porozni gel. Raziskovali so tudi možnosti 3D tiskanja gela in uspeli najti ugodno metodo, ki ni imela negativnega vpliva na sam gel ali njegove interakcije z nevroni. Rezultati so pokazali, da bo verjetno mogoče v prihodnosti z različnimi biomaterijali zdraviti poškodbe živčnega sistema in degenerativne bolezni, saj bodo ti pomagali pri obnavljanju nevronov in spodbudili njihovo aktivnost.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Marko Kovačić: Neselektivna avtofagija pospeši prilagajanje kvasovk Saccharomyces cerevisiae na aerobno dihanje v nefermentacijskem mediju ===&lt;br /&gt;
Raziskovalci s Tokijskega tehnološkega inštituta (Tokyo Tech) na Japonskem in univerze Monash v Avstraliji so se ukvarjali z vprašanjem, kako se uporabljajo metaboliti, pridobljeni v procesu avtofagije. Preučevali so rast kvasovk Saccharomyces Cerevisiae v glukoznem in etanolskem mediju. Po prenosu iz glukoznega v etanolski medij so kvasovke za pridobivanje energije namesto vrenja začele opravljati aerobno mitohondrijsko dihanje. Znanstveniki so ugotovili, da se mutirane kvasovke, ki niso sposobne opravljati neselektivne avtofagije, dlje prilagajajo na aerobno dihanje kot kvasovke, ki so zmožne opravljati avtofagijo. Z dodajanjem različnih hranil so ugotovili, da je aminokislina serin pomembna pri začetnem prilagajanju kvasovk na aerobno rast. Ob pomanjkanju aminokisline serin je bila poraba kisika v mitohondrijih nizka, ob dodatku serina pa se je le-ta povečala. Serin je pomemben za enoogljični metabolizem v mitohondrijih, ker zagotavlja enoogljično enoto, ki jo sprejme tetrahidrofolat (THF). Po sprejemu enoogljične enote se THF vključi v enoogljični metabolizem. Vezavo formilne skupine, pridobljene iz reakcij v enoogljičnem metabolizmu, na Met-tRNAfMet(iniciacijska tRNA) katalizira encim Fmt1. Formilacija iniciacijske tRNA poveča njeno afiniteto do mitohondrijskega iniciacijskega faktorja 2 (mIF2), ki je ključen pri povezovanju mitohondrijskih ribosomov, mRNA in fMet-tRNAfMet, torej pri procesu sinteze proteinov v mitohondrijih. Le-ti so ključni za pridobivanje energije z aerobnim dihanjem in za rast kvasovk.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Katja Resnik: Molekularna povezava med tveganjem za razvoj kolorektalnega raka in Neu5Gc ter njegovimi serumskimi protitelesi ===&lt;br /&gt;
Splošno znano je, da naj bi prehrana, še posebej pa uživanje rdečega in procesiranega mesa, vplivalo na povečano tveganje za nastanek raka danke in debelega črevesja pri človeku. Prav tako je s povečanim tveganjem povezana tudi povišana raven anti-Neu5Gc protiteles, ki imajo nalogo vezave Neu5Gc sialične kisline, ki vstopa v naše telo le s prehrano. Pred kratkim sta bila tako v raziskavi Univerze v Tel Avivu združena oba pogleda, in sicer so raziskovali vpliv prehrane na povišano raven anti-Neu5Gc protiteles in s tem na povečano tveganje za razvoj kolorektalnega raka. S pomočjo prostovoljcev, ki so oddali najmanj šest 24-urnih evidenc zaužite hrane in pijače, so naredili podrobno analizo vzorcev njihovih serumov in s tem izračunali ravni prisotnih anti-Neu5Gc protiteles, prav tako pa tudi podrobno analizo vzorcev zaužite hrane, s čimer so ugotovili prisotnost Neu5Gc v le-teh. Bila je ugotovljena povezava, da uživanje predvsem govejega in svinjskega mesa ter mlečnih izdelkov povzroča povišanje ravni anti-Neu5Gc protiteles, kar je omogočilo izračun indeksa za izračun vsebnosti Neu5Gc v določeni hrani, a na žalost raziskava še ni privedla do nobenih točnejših povezav s povečanim tveganjem za kolorektalni rak.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Klara Razboršek: Kako molekularni šaperoni Hsp70 razgrajujejo proteinske agregate, povezane s Parkinsonovo boleznijo === &lt;br /&gt;
Nastanek proteinskih agregatov in njihovo odlaganje v Lewyjeva telesca je značilno za različne nevrodegenerativne bolezni, kot je Parkinsonova bolezen. V tem primeru, se v celicah tvorijo amiloidna vlakna alfa-sinukleina, ki sama po sebi niso toksična, vendar so lahko vir toksičnih produktov. Mehanizem, ki je odgovoren za njihovo razčlembo je sestavljen iz šaperona Hsp70 in košaperonov DNAJB1 in Hsp110. Hsp70 (70-kDa heat shock protein) deluje v vseh življenjskih fazah proteinov od sinteze do razgradnje in je zaradi tega ključen za vzdrževanje homeostaze proteinov. Odgovoren je za razčlembno nepravilno zvitih proteinov, translokacijo polipeptidov v mitohondrije, kloroplaste in endoplazemski retikulum, razgradnjo proteinskih kompleksov in regulacijo proteinske aktivnosti. Košaperon DNAJB1 deluje kot usmerjevalni faktor, saj prepozna substrat preko lastnih šaperonskih reakcij in spodbudi hidrolizo ATP na Hsp70, kar omogoči vezavo Hsp70 na substrat. Poleg ključne vloge pri selekciji substrata, pa ima DNAJB1 še pomembno vlogo pri zaustavitvi mehanizma, saj zazna oligomerno stanje substrata. Da se ustvarijo dovolj močne entropične sile, ki omogočijo odcepljanje monomerov, se morajo šaperoni Hsp70 na substratu organizirati v skupke. To omogoča košaperon Hsp110, ki se veže na molekule Hsp70, ki niso povezane v skupke, in jih prenese v bližino drugih. Premeščanje ustvari močne vlečne sile, ki destabilizirajo amiloidna vlakna, kar privede do fragmentacije.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Karidia Kolbl: Mutacija na genu RORB pri zajčji vrsti &#039;&#039;sauteur d&#039;alfort&#039;&#039; povzroča okvaro v gibanju ===&lt;br /&gt;
Študija se osredotoča na francosko vrsto zajca &#039;&#039;sauteur d&#039;alfort&#039;&#039;, ki zaradi pojava mutacije ne more izvajati normalnih poskokov, ki so zanj značilni. Dinamično izmenjevanje ritmičnega premikanja sprednjih udov in bilateralnega sinhroničnega odskoka iz zadnjih udov zamenja dvig na sprednje in hoja po teh. Zanj je značilna tudi slepost, ki jo razvijejo v prvem letu starosti. Odkriti so želeli, kje se vzročna mutacija nahaja in kakšne so posledice v prisotnosti oz. številčnosti nekaterih pomembnih motoričnih nevronov. S tem namenom so križali homozigotna osebka z recesivnima in dominantnima aleloma. Za lociranje prisotnosti polimorfizmov so uporabili tehniko genskega kartiranja in &#039;&#039;sliding-window approach&#039;&#039;. Odkrili so, da se 95% mutacij nahaja na 1% deležu sekvenciranega genoma. Temu je sledila še podrobnejša analiza kromosoma 1, kjer je prišlo do zamenjave baz na intronu 9 in nastanka izoformov. Opazili so tudi zmanjšano koncentracijo nekaterih nevronov receptorske cone LTMR; RORB-pozitivnega nevrona ter nevronov SATB1/2, za katera so ob dodatnih raziskavah opazili upad in posledično okvaro gibanja pri miših. Nekaj besed so namenili tudi nevronu DMRT3, ki ima pomembno motorično vlogo in koordinira sinhronost zadnjih udov pri različnih živalskih vrstah.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Simona Kočeva: Kako bakterije se upirajo antibiotikem ===&lt;br /&gt;
Prilagoditev je temeljni biološki proces ki vodi organizme, da spremenijo svoje lastnosti in vedenje, da se bolje prilagodijo svojemu okolju pa naj gre za znamenito raznolikost ščinkavcev ali številne sorte bakterij s katerimi ljudje sobivajo. Medtem ko antibiotiki ljudem že dolgo pomagajo pri preprečevanju in zdravljenju bakterijskih okužb, pa se številne vrste bakterij vse bolj prilagajajo, da se uprejo antibiotičnemu zdravljenju. Ko so bili v več generacijah izpostavljeni manj smrtnim odmerkom antibiotika so raziskovalci ugotovili da so bakterije močno spremenile svojo obliko, tako da so postale širše in bolj ukrivljene. Druga stran te enačbe je da se bakterije lahko znajdejo tudi brez celične stene, ko pa jih imunski sistem težko zazna, ker človeške celice nimajo nobene svoje. Te spremembe oblike omogočajo bakterijam da premagajo stres zaradi antibiotikov in nadaljujejo s hitro rastjo. Te fizične spremembe omogočajo bakterijam, da dosežejo večjo ukrivljenost in nižje razmerje med površino in prostornino, kar bi omogočilo, da manj delcev antibiotikov prehaja skozi njihove celične površine ko rastejo. Ta vpogled ima velike posledice za zdravje ljudi in bo verjetno spodbudil številne nadaljnje molekularne študije o vlogi celične oblike na rast bakterij in odpornost na antibiotike.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Janja Bohte: Visokoločjivostno kvantitativno profiliranje številčnosti in modificiranosti tRNA z mim-tRNAseq ===&lt;br /&gt;
Prenašalne RNA (tRNA) so kratke molekule potrebne za prevajanje genskih informacij v proteinska zaporedja. Sestava združb teh molekul je ključnega pomena za učinkovito dekodiranje mRNA in integriteto proteoma. Številčnost tRNA lahko močno vpliva na celično fiziologijo, toda merjenje količine tRNA v celicah je omejeno s številnimi tehničnimi izzivi. Uspešne meritve številčnosti ovira velika podobnost med molekulami tRNA ter blokade pri sintezi cDNA, predvsem prezgodnja zaustavitev encima reverzna transkriptaza. Raziskovalci so premagali te omejitve s pomočjo mim-tRNAseq, ki temelji na metodi, ki se jo lahko uporabi za kvantificiranje tRNA v katerem koli organizmu z znanim genomom in bo pomagala izboljšati razumevanje prenašalne RNA. Skupaj so združili metodo za izdelavo knjižnice cDNA iz endogeno spremenjenih tRNA z novim računskim okvirom za poravnavo odčitkov, analizo podatkov in vizualizacijo. Razvili so tudi celovit in uporabniku prijazen računalniški nabor orodij, ki zagotavljajo meritve številčnosti tRNA, frakcij polnjenja in profilov sprememb z izjemno natančnostjo in ločljivostjo. Ker je njihov potek potek dela kritičen, preudaren in uporaben za katerikoli organizem z znanim genomom, predvidevajo, da bo pomagal pojasniti prej nerešljive vidike biologije tRNA.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Miha Razdevšek: Epigenetske spremembe povezane z Alzheimerjevo boleznijo ===&lt;br /&gt;
Nevrodegenerativne bolezni predstavlajo v današnji družbi velik socialni in ekonomski problem zaradi primanjkovanja zdravil, ki je posledica slabega poznavanja bolezni. Za Alzheimerjevo bolezen (Alzheimer&#039;s disease, AD) je značilna agregacija proteinov Aβ in proteina tau. Moj seminar govori o epigenetskih spremembah povezanih z AD. Z natančno transkriptomsko, proteomsko in epigenomsko anazlizo možgan so raziskovalci analizirali specifične epigenetske modifikacije ljudi z AD v primerjavi z zdravimi starimi in mladimi. Analiza transkriptoma je pri ljudeh z AD prikazala večjo ekspresivnost genov povezanih s transkripcijo in strukturo kromatina, vključujoč gene za histon acetil transferaze, ki acetilirajo histon 3 na liznu 9 in 27 (H3K9ac in H3K27ac). Po analizi proteoma so prav tako ugotovili močno povečanje H3K9ac in H3K27ac. Podroben pregled dinamičnosti epigenetskih sprememb je prikazal povečanje H3K9ac in H3K27ac, kar nakazuje na njuno značilno vlogo pri AD. Prav tako je bilo ugotovljeno, da deacetilacijam sledijo demetilacije, acetilacije pa ne vplivajo na metilacijsko dinamiko, kar nakazuje potencial specifičnih acetilacij pri epigenetskem zdravljenju. Svoje in vitro ugotovitve so na koncu raziskovalci potrdili na vinski mušici, kjer so z vzpostavitvijo H3K9ac in H3K27ac inducirali agregacijo proteina Aβ42, kar je vodilo v degeneracijo notranjega in zunanjega očesa. S svojo študijo so predvsem prikazali pomembno negativno vlogo epigenetskih sprememb H3K9ac in H3K27ac pri mehanizmu in razvoju AD.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Tea Amidović: Mosaicism and extensive mutation of human placentas ===&lt;br /&gt;
The natural form of the placenta is distinct from any other human organ and resembles that of a tumor, with much of the same genetic variations present in childhood cancers. Placentas can have chromosomal abnormalities that the fetus1 may not have. Confined placental mosaicism (CPM) is the cause of this genetic segregation. CPM is characterized as the occurrence of chromosomal anomalies in extra-embryonic tissue that are not present in fetal tissue. Using whole-genome sequencing of 86 bulk placental samples and 106 microdissections of placental tissue, this research studied the phylogeny of human placental cells as reconstructed from somatic mutations. In this research, the total number of substitutions used in bulk placental samples was 145. Clinical karyotyping may have observed a trisomy of chromosome 10 in all bulk samples with copy number shift.  In a case of mosaic trisomic rescue, direct support for this has been found. Results of this research discover large-scale mutagenesis in placental tissues and propose that mosaicism is a common characteristic of placental growth in embryogenesis.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Patricija Kolander: Jedrni kompleks DICER - circRNA povzroči deregulacijo mikro-RNA v celicah glioblastoma ===&lt;br /&gt;
Glioblastom je eden izmed najagresivnejših možganskih tumorjev pri človeku. Tumorske celice imajo v primerjavi z zdravimi bistveno manj izraženih mikro-RNA. Mikro-RNA so izredno pomembni regulatorji izražanja genov in lahko povzročijo njihovo utišanje, tako da se vežejo na komplementarno obveščevalno RNA in inhibirajo translacijo. Mikro-RNA lahko delujejo kot onkogeni – promovirajo nastanek raka ali pa delujejo kot zaviralci tumorjev. Z reguliranjem izražanja mikro-RNA rakave celice ohranijo sposobnost samoobnavljanja in proliferacije. V celicah glioblastoma je bilo odkritih bistveno več onkogeničnih mikro-RNA in precej manj tistih, ki zavirajo rast tumorjev. V raziskavi so dokazali, da v tumorskih celicah pride do spremembe v post-transkripcijskem zorenju mikro-RNA. Pri njem igra pomembno encim DICER, ki citoplazmi odreže zanko iz prekurzorske mikro-RNA, da nastane dvovijačni dupleks, ki se nato dokončno pretvori v zrelo mikro-RNA. V celicah glioblastoma pride do povečanega izražanja onkogena MALAT1 in njenega transkripta krožne RNA – circ2082. Ta v jedru tvori kompleks z RBM3 (RNA binding protein 3) in encimom DICER, ta pa posledično ne more potovati v citoplazmo, kjer v zdravi celici opravlja svojo nalogo. Znižanje izražanja circ2082 je vodilo do ponovne vzpostavitve ravnovesja mikro-RNA, kakršno je bilo v predrakavi celici, kar nakazuje na potencialne protirakave učinke targetiranja circ2082.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Lev Jošt: Znanstveniki si predstavljajo strukturo ključnega encima, ki tvori trigliceride ===&lt;br /&gt;
Drugi do zadnji korak biosinteze trigliceridov katalizirajo na magneziju bazirane lipin/fosfatidne kisline fosfataze oz. lipin/PAP, ki hidrolizirajo fosfatidno kislino v diacilglicerol. K definiciji lipinov so pripomogle tudi raziskave na mutiranih miših, ki nosijo mutacije gena, ki kodira nov jedrski protein, poimenovan lipin. Lipin/PAP so v splošnem presnovni encimi, ki uravnavajo tudi shranjevanje in mobilizacijo energije, avtofagijo in sintezo maščobnih kislin. Arhitektura lipin/PAP se razlikuje, vendar pa vsi encimi ohranjajo dve bistveni regiji, in sicer N-Lip in C-Lip. Znano je, da območji N-Lip in C-Lip, povezani z linkerjem, tvorita razcepljeno imunoglobinu podobno domeno, ki skupaj s katalitično domeno (in njenim aktivnim mestom), tvori kristalno strukturo lipina. Pri tvorjenju strukture, N-Lip ne ustvari lastne domene, temveč se rajši skupaj s prvimi 45 ostanki C-Lip zloži v Ig-podobno domeno, preostali del C-Lip pa tvori katalitično domeneno, pri kateri je vredno omeniti še še položaja C1 in C2, v katera so vstavljeni kratki peptidi. Ig-podobna domena pa se pakira in hkrati stabilizira katalitično domeno. Z oznakami od A–G označimo β-verige, ki jo gradijo in v človeških lipinih je to &amp;quot;razcepljena&amp;quot; domena, ki se mora rekombinirati, da tvori funkcionalni encim. V enem od poskusov dokazovanja te domenske arhitekture so ustavrili konstrukte mišjega lipina 1 in mišjega lipina 2, ki sta neposredno stopili N-lip in C-lip območje. Analiza pokaže tudi, da regija C-konca vsebuje prej neprepoznano domeno ki je ohranjena pri kvasu, miših in ljudeh&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
	<entry>
		<id>https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Temelji_biokemije_2023_-_seminar&amp;diff=18288</id>
		<title>Temelji biokemije 2023 - seminar</title>
		<link rel="alternate" type="text/html" href="https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=Temelji_biokemije_2023_-_seminar&amp;diff=18288"/>
		<updated>2021-04-11T08:55:52Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Lev Jošt: /* Seznam seminarjev */&lt;/p&gt;
&lt;hr /&gt;
&lt;div&gt;[http://www.example.com link title]= Temelji biokemije- seminar =&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Seminarje vodi prof. dr. Brigita Lenarčič. Seminarji so obvezni.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Ocena seminarjev (6-10) predstavlja enako število odstotkov, ki se prišteje h končni pisni oceni izpita. &lt;br /&gt;
Stran na strežniku s seminarskimi nalogami je zaščitena.&lt;br /&gt;
Uporabniško ime je: tbk, password pa: samozame## &amp;quot;##&amp;quot; sta dve številki, ki ju izveste na predavanjih.&lt;br /&gt;
Tudi za urejanje Wiki strani potrebujete geslo, ki se od zgornjega razlikuje. Postopek pridobitve Wiki uporabniškega imena in gesla je opisan [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Main_Page tukaj].&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Seznam seminarjev ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
{| {{table}}&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Ime in priimek&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Naslov seminarja&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Povezava&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Rok za oddajo&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Rok za recenzijo&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Datum predstavitve&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Recenzent 1&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Recenzent 2&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
| align=&amp;quot;center&amp;quot; style=&amp;quot;background:#f0f0f0;&amp;quot;|&#039;&#039;&#039;Recenzent 3&#039;&#039;&#039;&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Anna Scott||Moj naslov v slovenščini||https://www.sciencedaily.com/releases/2019/02/190214100038.htm||05.03.||08.03.||11.03.||r1||r2||r3&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Gašper Struna||Kako sistem toksin-antitoksin vpliva na odpornost bakterij na antibiotike ||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210201144911.htm||05.03.||08.03.||11.03.||David Valte||Klara Kolenc||Boštjan Kramberger&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Pia Špehar||Mehanizem delovanja proteina omogoča odpornost na zdravila proti raku||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/12/201229080253.htm||05.03.||08.03.||11.03.||Sofija Stevanović||Gaja Starc||Nuša Brdnik&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Tinkara Butara||Kako rastline zaznajo napad herbivorov||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210216133437.htm||05.03.||08.03.||11.03.||Klara Ažbe||Mark Loborec||Ema Kavčič&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Pia Trošt||Barvna povezava v sposobnosti korale, da  preživi višje temperature||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210221154616.htm||05.03.||08.03.||11.03.||Mia Kobal||Vanja Ivošević||Urša Štefan&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Živa Urh||Zmanjšanje transkripcijske aktivnosti povzroči stresno pogojena jedrna kondenzacija NELF ||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210210170104.htm||05.03.||08.03.||11.03.||Andraž Rotar||Petja Premrl||Maj Priveršek&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Urša Zevnik||FOXO3, gen povezan z dolgoživostjo, ščiti možganske matične celice pred stresom||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210219155903.htm||12.03.||15.03.||18.03.||Gašper Struna||David Valte||Klara Kolenc&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Nika Ferk||Formulacije na osnovi biomaterialov za boj proti virusnim nalezljivim boleznim||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210209113902.htm||12.03.||15.03.||18.03.||Pia Špehar||Sofija Stevanović||Gaja Starc&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Nataša Vujović||Kako se HER2 pozitivne celice raka dojk izognejo terapijam, ki vključujejo T celice||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210223135516.htm&lt;br /&gt;
||12.03.||15.03.||18.03.||Tinkara Butara||Klara Ažbe||Mark Loborec&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Thaler Nuša Kos||Hitra evolucija litičnih genov  v enoverižnih RNA bakteriofagih||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210205121236.htm||12.03.||15.03.||18.03.||Pia Trošt||Mia Kobal||Vanja Ivošević&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Sara Borišek||Dieta z visoko vsebnostjo maščob lahko prekomerno aktivira destruktivni protein NOX-2||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/03/210302075358.htm||12.03.||15.03.||18.03.||Živa Urh||Andraž Rotar||Petja Premrl&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Lana Bajec||Inhibicija encima 15-PGDH pomlajuje mišice in povečuje mišično moč ||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/12/201210145751.htm||19.03.||22.03.||25.03.||Urša Zevnik||Gašper Struna||David Valte&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Leila Bohorč||Dokaz o obstoju različnih mehanizmov delovanja majhnih molekul, ki inhibirajo vstop filovirusov v celico||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210208134421.htm||19.03.||22.03.||25.03.||Nika Ferk||Pia Špehar||Sofija Stevanović&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Špela Rapuš||Kako mikobakterije tvorijo membranske vezikle||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/01/210114163907.htm||19.03.||22.03.||25.03.||Nataša Vujović||Tinkara Butara||Klara Ažbe&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Pavletič Primož Šenica||Nov način preprečevanja širjenja malarije z gensko spremenjenimi komarji||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/11/201103140613.htm||19.03.||22.03.||25.03.||Thaler Nuša Kos||Pia Trošt||Mia Kobal&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Ivana Vukšinić||Sekvestracija žvepla v času pomanjkanja hranil pospeši nastanek mnogoceličnega organizma||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210224143527.htm||19.03.||22.03.||25.03.||Ela Kovač||Živa Urh||Andraž Rotar&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Zarja Weingerl||Odkritje novih malih proteinov v Salmonelli in njihov vpliv na bakterijsko virulenco||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/12/201216104643.htm||26.03.||29.03.||01.04.||Lana Bajec||Urša Zevnik||Gašper Struna&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Teja Spruk||Bakterije, odporne na antibiotike: Fluorid kot rešitev||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/01/210104141521.htm||26.03.||29.03.||01.04.||Leila Bohorč||Nika Ferk||Pia Špehar&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Magdalena Ilievska||Spomin brez možganov - Kako enocelični sluzni kalup pametno sprejema odločitve brez centralnega živčnega sistema. ||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210223121643.htm||26.03.||29.03.||01.04.||Špela Rapuš||Nataša Vujović||Tinkara Butara&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Metka Rus||Gensko spreminjanje jetrnih celic s pomočjo proteinskih nanodelcev z namenom zniževanja holesterola||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/03/210301151545.htm||26.03.||29.03.||01.04.||Pavletič Primož Šenica||Thaler Nuša Kos||Pia Trošt&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Pia Sotlar||Zdravljenje s sistemom za urejanje genoma, ki temelji na metodi CRISPR, uničuje rakave celice||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/11/201118161129.htm||26.03.||29.03.||01.04.||Ivana Vukšinić||Ela Kovač||Živa Urh&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Nik Vidmar||Molekularne superstrukture zmožne vstopati v nevrone in aktivirati nevronske receptorje||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210223110435.htm||02.04.||05.04.||08.04.||Zarja Weingerl||Lana Bajec||Urša Zevnik&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Ana Maučec||Retrovirusne integracije v genom zarodnih celic prispevajo k povišani verjetnosti za razvoj raka pri gostitelju||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210226103805.htm||02.04.||05.04.||08.04.||Teja Spruk||Leila Bohorč||Nika Ferk&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Neža Peternel||Prehrana lahko spremeni proces trimetilacije H3K4 v semenčicah in posledično vpliva na izražanje fenotipa pri potomcih||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/03/210316132129.htm||02.04.||05.04.||08.04.||Magdalena Ilievska||Špela Rapuš||Nataša Vujović&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Zoran Džon Ivanić||Reprogramiranje za povrnitev mladostne epigenetske informacije in vida||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/12/201202114531.htm||02.04.||05.04.||08.04.||Metka Rus||Pavletič Primož Šenica||Thaler Nuša Kos&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Pia Mencin||Povečana afiniteta hemoglobina do kisika ter okrepljen Bohrov učinek sta posledica prilagoditve pingvinov na vodno okolje||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/03/210323103854.htm||02.04.||05.04.||08.04.||Pia Sotlar||Ivana Vukšinić||Ela Kovač&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Marko Kovačić||Neselektivna avtofagija pospeši prilagajanje kvasovk Saccharomyces cerevisiae na aerobno dihanje v nefermentacijskem mediju ||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/12/201210112157.htm||09.04.||12.04.||15.04.||Nik Vidmar||Zarja Weingerl||Lana Bajec&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Karidia Kolbl||Mutacija na genu RORB pri zajčji vrsti &amp;quot;&#039;&#039;sauteur d&#039;alfort&#039;&#039;&amp;quot; povzroča okvaro v gibanju||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/03/210325150205.htm||09.04.||12.04.||15.04.||Ana Maučec||Teja Spruk||Leila Bohorč&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Klara Razboršek||Kako molekularni šaperoni Hsp70 razgrajujejo proteinske agregate, povezane s Parkinsonovo boleznijo||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/11/201111122815.htm||09.04.||12.04.||15.04.||Neža Peternel||Magdalena Ilievska||Sara Borišek&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Katja Resnik||Molekularna povezava med tveganjem za kolorektalni rak in Neu5Gc ter njegovimi serumskimi protitelesi||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/10/201022151749.htm||09.04.||12.04.||15.04.||Zoran Džon Ivanić||Metka Rus||Pavletič Primož Šenica&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Simona Kocheva||Kako bakterije se upirajo antibiotikem||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/01/210130092739.htm||09.04.||12.04.||15.04.||Pia Mencin||Pia Sotlar||Ivana Vukšinić&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Miha Razdevšek||Epigenetske spremembe povezane z Alzheimerjevo boleznijo||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/09/200928152907.htm||16.04.||19.04.||22.04.||Marko Kovačić||Nik Vidmar||Zarja Weingerl&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Janja Bohte||Visokoločljivostno kvantitativno profiliranje številčnosti in modificiranosti tRNA z mim-tRNAseq ||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/02/210226140455.htm||16.04.||19.04.||22.04.||Karidia Kolbl||Ana Maučec||Teja Spruk&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Tea Amidović||Mozaicizem in obsežne mutacije (človeške) placente&lt;br /&gt;
||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/03/210310122521.htm||16.04.||19.04.||22.04.||Klara Razboršek||Neža Peternel||Magdalena Ilievska&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Patricija Kolander||||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/01/210108131103.htm||16.04.||19.04.||22.04.||Katja Resnik||Zoran Džon Ivanić||Metka Rus&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Lev Jošt||Znanstveniki si predstavljajo strukturo ključnega encima, ki tvori trigliceride||https://www.sciencedaily.com/releases/2020/03/200311082935.htm||16.04.||19.04.||22.04.||Simona Kocheva||Pia Mencin||Pia Sotlar&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Tina Zajec||||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/03/210317141631.htm||30.04.||03.05.||06.05.||Miha Razdevšek||Marko Kovačić||Nik Vidmar&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Tina Urh||||||30.04.||03.05.||06.05.||Janja Bohte||Karidia Kolbl||Ana Maučec&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Žan Žnidar||||||30.04.||03.05.||06.05.||Tea Amidović||Klara Razboršek||Neža Peternel&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Boštjan Kramberger||||https://www.nature.com/articles/s41467-021-21185-5?fbclid=IwAR2jbjZ3amUYlXu2j8l94OQTS7ram6kTx9ZRekmN6ncmNCUyjsRuV3DF0mk||30.04.||03.05.||06.05.||Patricija Kolander||Katja Resnik||Zoran Džon Ivanić&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Nuša Brdnik||||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/04/210408131455.htm||30.04.||03.05.||06.05.||Lev Jošt||Simona Kocheva||Pia Mencin&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Ema Kavčič||||||07.05.||10.05.||13.05.||Tina Zajec||Miha Razdevšek||Marko Kovačić&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Urša Štefan||||||07.05.||10.05.||13.05.||Tina Urh||Janja Bohte||Karidia Kolbl&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Maj Priveršek||||||07.05.||10.05.||13.05.||Žan Žnidar||Tea Amidović||Klara Razboršek&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Klara Kolenc||||||07.05.||10.05.||13.05.||Boštjan Kramberger||Patricija Kolander||Katja Resnik&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Gaja Starc||||||07.05.||10.05.||13.05.||Nuša Brdnik||Lev Jošt||Simona Kocheva&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Mark Loborec||||||14.05.||17.05.||20.05.||Ema Kavčič||Tina Zajec||Miha Razdevšek&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Vanja Ivošević||||||14.05.||17.05.||20.05.||Urša Štefan||Tina Urh||Janja Bohte&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Petja Premrl||||||14.05.||17.05.||20.05.||Maj Priveršek||Žan Žnidar||Tea Amidović&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| David Valte||||||14.05.||17.05.||20.05.||Klara Kolenc||Boštjan Kramberger||Patricija Kolander&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Sofija Stevanović||||||14.05.||17.05.||20.05.||Gaja Starc||Nuša Brdnik||Lev Jošt&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Klara Ažbe||||||21.05.||24.05.||27.05.||Mark Loborec||Ema Kavčič||Tina Zajec&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Mia Kobal||||||21.05.||24.05.||27.05.||Vanja Ivošević||Urša Štefan||Tina Urh&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Andraž Rotar||||||21.05.||24.05.||27.05.||Petja Premrl||Maj Priveršek||Žan Žnidar&lt;br /&gt;
|-&lt;br /&gt;
| Ela Kovač||Veganska prehrana pri otrocih preoblikuje metabolizem in vpliva na zmanjšan nivo esencialnih hranil||https://www.sciencedaily.com/releases/2021/01/210121132300.htm||21.05.||24.05.||27.05.||Sara Borišek||Špela Rapuš||Tinkara Butara&lt;br /&gt;
|-}&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Naloga==&lt;br /&gt;
* samostojno pripraviti seminar, katerega tema je novica iz področja biokemije na portalu [http://www.sciencedaily.com ScienceDaily], ki je bila objavljena kasneje kot 1. avgusta 2020. Osnova za seminar naj bo znanstveni članek, ki je podlaga za to novico. Poleg tega članka za seminar uporabite še najmanj pet drugih virov, od teh vsaj še dva druga znanstvena članka, ki se navezujeta na to vsebino. &lt;br /&gt;
* članke na temo lahko iščete [https://scholar.google.com/ z Google učenjakom].&lt;br /&gt;
* naslov izbrane teme in povezavo do novice vpišite v tabelo seminarjev takoj ko ste si izbrali temo, najkasneje pa en teden pred rokom za oddajo &lt;br /&gt;
* [[TBK2021 Povzetki seminarjev|Povzetek seminarja]] opišete na wikiju v približno 200 besedah - najkasneje do dne, ko morate oddati seminar recenzentom. &lt;br /&gt;
* Povezavo do povzetka vnesete v tabelo seminarjev tekočega letnika.&lt;br /&gt;
* Seminar pripravite v obliki seminarske naloge (pisava Cambria, font 11, enojni razmak, 2,5 cm robovi; tekst naj obsega okoli 1000  besed), vsebuje naj 1-2 sliki. Slika mora imeti legendo in v besedilu mora biti na ustreznem mestu sklic na sliko. Vse uporabljene vire citirajte v tekstu, kot npr. (Nobel, 2010), na koncu pa navedite točen seznam literature, kot je opisano spodaj!&lt;br /&gt;
*Celotni seminar naj obsega 2 strani A4 formata (po možnosti dvostransko tiskanje).&lt;br /&gt;
* Seminar oddajte do datuma oddaje, ki je naveden v tabeli v elektronski obliki z uporabo [http://bio.ijs.si/~zajec/tbk/poslji/ tega obrazca].&lt;br /&gt;
* vsi seminarji so v elektronski obliki dostopni [http://bio.ijs.si/~zajec/tbk/poslji//bioseminar/ tukaj].&lt;br /&gt;
* Recenzenti do dneva določenega v tabeli določijo popravke in podajo oceno pisnega dela, v predpisanem formatu elektronskega obrazca na internetu.&lt;br /&gt;
* Ustna predstavitev sledi na dan, ki je vpisan v tabeli. Za predstavitev je na voljo 10 minut. Recenzenti morajo biti na predstavitvi prisotni. Prvi recenzent vodi predstavitve in razpravo ter skrbi za to, da vse poteka v zastavljenih časovnih okvirih.&lt;br /&gt;
* Predstavitvi sledi razprava do 5 minut. Sledijo vprašanja prisotnih, recenzenti postavijo vsak vsaj dve vprašanji in na koncu podajo oceno predstavitve.&lt;br /&gt;
* En dan pred predstavitvijo na strežnik oddajte tudi končno verzijo. Na dan predstavitve morate oddati tudi končno (popravljeno) in natisnjeno verzijo seminarja v enem izvodu.&lt;br /&gt;
* Seminarska naloga in povzetek na wikiju morajo biti v slovenskem jeziku!&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==&amp;lt;font color=green&amp;gt;Imena datotek&amp;lt;/font&amp;gt;==&lt;br /&gt;
Prosim vas, da vse datoteke, ki jih pošiljate, poimenujete po spodnjih pravilih. Ne uporabljajte ČŽŠčžš!&lt;br /&gt;
Poslati morate naslednje datoteke:&lt;br /&gt;
* TBK_2021_Priimek_Ime.doc(x) za seminar, npr. TBK_2021_Guncar_Gregor.docx&lt;br /&gt;
* TBK_2021_Priimek_ime_final.doc(x) za končno verzijo seminarja&lt;br /&gt;
* TBK_2021_Priimek_Ime_rec_Priimek2.doc(x) za recenzijo, kjer je Priimek2 priimek recenzenta, npr. TBK_2021_Guncar_Gregor_rec_Scott.docx (če se pišete Scott in odajate recenzijo za seminar, ki ga je napisal Gunčar)&lt;br /&gt;
* TBK_2021_Priimek_Ime.pdf za prezentacijo (PowerPoint -&amp;gt; Shrani kot PDF), npr TBK_2021_Guncar_Gregor.pdf&lt;br /&gt;
* TBK_2021_Priimek_Ime_clanek.pdf za datoteko PDF, ki vsebuje izvirni članek, npr. TBK_2021_Guncar_Gregor_clanek.pdf&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Ocenjevanje seminarjev==&lt;br /&gt;
Recenzenti ocenijo seminar tako, da izpolnijo [[https://docs.google.com/forms/d/1Hdg2OHCyG24qwLTnFt09yZTng46RIwaIiUqnKOdsJxQ/viewform recenzentsko poročilo]] na spletu.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Mnenje o predstavitvi ==&lt;br /&gt;
Vsak posameznik &#039;&#039;&#039;mora&#039;&#039;&#039; oceniti seminar tako, da odda svoje [https://docs.google.com/forms/d/1VvE-jaKikfiDO5Gdybqgp9mf_0uJZfBbIK8PLXKDaS0/viewform  mnenje] najkasneje v enem tednu po predstavitvi. Kdor na seminarju ni bil prisoten, mnenja &#039;&#039;&#039;ne sme&#039;&#039;&#039; oddati.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Urejanje spletnih strani na wikiju==&lt;br /&gt;
Wiki so razvili zato, da lahko spletne vsebine ureja vsakdo. Ukazi so preprosti, dokler si ne zamislite česa prav posebnega. Vseeno pa je Word v primerjavi z wikijem pravo čudežno orodje... Če imate težave z oblikovanjem besedila, si preberite poglavje o urejanju wiki-strani na Wikipediji ([http://en.wikipedia.org/wiki/Help:Editing tule] v angleščini in [http://sl.wikipedia.org/wiki/Wikipedija:Urejanje_strani tu] v slovenščini). Pomaga tudi, če pogledate, kako je zapisana kakšna stran, ki se vam zdi v redu: kliknite na zavihek &#039;Uredite stran&#039; in si poglejte, kako so vpisane povezave, kako nov odstavek in podobno. &#039;&#039;Na koncu seveda pod oknom za urejanje kliknite na &#039;Prekliči&#039;.&#039;&#039;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Faktor vpliva==&lt;br /&gt;
Faktor vpliva (angl. impact factor) neke revije pove, kolikokrat so bili v poprečju citirani članki v tej reviji v dveh letih skupaj pred objavo tega faktorja. Faktorje vpliva za posamezno revijo lahko najdete v [http://www.cobiss.si/scripts/cobiss?command=CONNECT&amp;amp;base=JCR COBISS-u]. V polje &amp;quot;Naslov revije&amp;quot; vnesite ime revije, za katero želite izvedeti faktor vpliva, in pritisnite na gumb POIŠČI. V skrajnem desnem stolpcu se bodo izpisali faktorji vpliva za revije, ki ustrezajo vašim iskalnim kriterijem. Zadetkov za posamezno revijo je več zato, ker so navedeni faktorji vpliva za posamezno leto. Za tekoče leto faktorji vpliva še niso objavljeni, zato se orientirajte po faktorjih vpliva zadnjih par let. Če faktorja vpliva za vašo izbrano revijo ne najdete v bazi COBISS, potem izberite članek iz kakšne druge revije.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
==Citiranje virov==&lt;br /&gt;
Citiranje je možno po več shemah, važno je, da se v seminarju držite ene same. Temeljno načelo je, da je treba vir navesti na tak način, da ga je mogoče nedvoumno poiskati. Sicer pa ima vsaka revija lahko svoj način citiranja, ki ga je treba pri pisanju članka upoštevati.&amp;lt;br&amp;gt;&#039;&#039;&#039;Citiranje knjig:&#039;&#039;&#039;&amp;lt;br&amp;gt;Priimek, I. &#039;&#039;Naslov&#039;&#039;. Kraj: Založba, letnica.&amp;lt;br&amp;gt;Priimek, I. &#039;&#039;Naslov: podnaslov&#039;&#039;. Izdaja. Kraj: Založba, letnica. Zbirka, številka. ISBN.&amp;lt;br&amp;gt;Boyer, R. &#039;&#039;Temelji biokemije&#039;&#039;. Ljubljana: Študentska založba, 2005.&amp;lt;br&amp;gt;Glick BR in Pasternak JJ. &#039;&#039;Molecular biotechnology: principles and applications of recombinant DNA&#039;&#039;. 3. izdaja. Washington: ASM Press, 2003. ISBN 1-55581-269-4.&amp;lt;br&amp;gt;Če so avtorji trije, je beseda in med drugim in tretjim avtorjem. Če so avtorji več kot trije, napišemo samo prvega in dopišemo &#039;&#039;et al&#039;&#039;. (in drugi, po latinsko). Vse, kar je latinsko, pišemo poševno (npr. tudi imena rastlin in živali, pojme &#039;&#039;in vivo&#039;&#039;, &#039;&#039;in vitro&#039;&#039; ipd.). &amp;lt;br&amp;gt;&#039;&#039;&#039;Citiranje člankov:&#039;&#039;&#039;&amp;lt;br&amp;gt;Priimek, I. Naslov. &#039;&#039;Naslov revije&#039;&#039;, letnica, letnik, številka, strani.&amp;lt;br&amp;gt;Lartigue C. &#039;&#039;et al&#039;&#039;. Genome transplantation in bacteria: changing one species to another. &#039;&#039;Science&#039;&#039;, 2007, letn. 317, str. 632-638.Alternativni način citiranja (predvsem v družboslovju) je po pravilih APA, kjer članke citirajo takole:&amp;lt;br&amp;gt;Priimek, I. (letnica, številka). Naslov. Naslov revije, strani.&amp;lt;br&amp;gt;Lartigue C. &#039;&#039;et al.&#039;&#039; (2007, 317) Genome transplantation in bacteria: changing one species to another. &#039;&#039;Science&#039;&#039;, 632-638.Revija Science uporablja skrajšani zapis:&amp;lt;br&amp;gt;C. Lartigue &#039;&#039;et al&#039;&#039;. Science 317, 632 (2007)&amp;lt;br&amp;gt;V diplomah na FKKT je treba navesti vire tako, da izpišete tudi naslov citiranega dela in strani od-do (ne samo začetne).&amp;lt;br&amp;gt;&#039;&#039;&#039;Citiranje spletnih virov:&#039;&#039;&#039;&amp;lt;br&amp;gt;Priimek, I. &#039;&#039;Naslov dokumenta&#039;&#039;. Izdaja. Kraj: Založnik, letnica. Datum zadnjega popravljanja. [Datum citiranja.] spletni naslov&amp;lt;br&amp;gt;strangeguitars. &#039;&#039;On the brink of artificial life&#039;&#039;. 6. 10. 2007. [citirano 13. 11. 2007] http://www.metafilter.com/65331/On-the-brink-of-artificial-life&amp;lt;br&amp;gt;Navedemo čim več podatkov; pogosto vseh iz pravila ne boste našli.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>Lev Jošt</name></author>
	</entry>
</feed>