Wiki FKKT - User contributions [en]

Pepcitrus

2026-05-12T10:41:22Z

Meri Škorjanc:

==Uvod==
Citrusi so ena najpomembnejših skupin sadnih rastlin, med katerimi imajo posebno mesto pomaranče kot vir vitaminov, mineralov, vlaknin in bioaktivnih spojin. Po podatkih projekta Pepcitrus se v Braziliji proizvede približno 70 % svetovnega pomarančnega soka in 29 % svežih pomaranč, namenjenih globalni porabi. Bolezni citrusov zato niso le biološki problem, temveč tudi gospodarska in družbena grožnja.
Eden glavnih izzivov v citrusni industriji so bakterijski in glivni patogeni. Projekt Pepcitrus se osredotoča na tri bolezni: greening oziroma Huanglongbing, ki ga povzročajo bakterije iz rodu Candidatus Liberibacter, ter bolezni green mold, ki ga povzroča Penicillium digitatum, in sour rot, ki ga povzroča Geotrichum candidum. Greening prizadene drevesa že v nasadu in s tem ogroža dolgoročno produktivnost nasadov, medtem ko green mold in sour rot povzročata izgube med skladiščenjem, transportom in prodajo plodov. Obstoječe metode nadzora pogosto vključujejo uporabo pesticidov, odstranjevanje okuženih dreves in fungicidno obdelavo plodov, pri čemer se pojavljajo vprašanja učinkovitosti, razvoja odpornosti, stroškov in vpliva na okolje.
==Opis projekta==
Projekt Pepcitrus kot možno rešitev za bolezni citrusov predlaga uporabo 21 aminokislin dolgega antimikrobnega peptida CTX, prvotno opisanega pri južnoameriški drevesni žabi Hypsiboas albopunctatus. Mehanizem delovanja vključuje vezavo pozitivno nabitega peptida na membrano mikroorganizma in tvorbo por. Posledica je izguba celovitosti membrane, uhajanje celične vsebine in smrt patogena. Ker bi bila za uporabo v kmetijstvu potrebna proizvodnja večjih količin peptida, projekt ni ostal le pri testiranju njegove aktivnosti, temveč je razvil strategije za njegovo rekombinantno izražanje v gensko spremenjenih mikroorganizmih. Ekipa je kot možne gostitelje obravnavala Escherichio coli, Saccharomyces cerevisiae in Aspergillus oryzae. Te komplementarne ekspresijske platforme so omogočile primerjavo učinkovitosti in ekonomske izvedljivosti proizvodnje.
==Eksperimentalni del==
===Proizvodnja CTX v E. coli===
Glavni izziv pri proizvodnji antimikrobnega peptida CTX je, da deluje toksično tudi na proizvodne mikroorganizme. Ena izmed glavnih strategij za preprečevanje tega problema je bila fuzija CTX s sfGFP, ki je stabilen, dobro topen, fluorescenčni reporterski protein. Ko je CTX povezan s sfGFP, je njegova protimikrobna aktivnost zmanjšana oziroma prikrita, kar olajša proizvodnjo v gostiteljskih celicah. V konstrukt so vključili tudi fleksibilni povezovalni del 3 × GS linker, ki omogoča prostorsko ločitev CTX od sfGFP, dve cepitveni mesti za proteazo TEV, ki obdajata CTX in omogočata njegovo natančno sprostitev, ter His-oznako, ki omogoča čiščenje proteina z IMAC afinitetno kromatografijo.
Za izražanje konstrukta pIGEM001–sfGFP–CTX v E. coli so uporabili osnovni ekspresijski vektor pJL1–sfGFP in insert K7-CTX, ki so ga pomnožili iz plazmida pUC K7CTX. Ekspresijski vektor so razdelili na dva fragmenta, da so olajšali PCR-amplifikacijo, nato pa so fragmente skupaj z insertom sestavili z metodo NEBuilder HiFi DNA Assembly. Ta metoda omogoča sestavljanje DNA-fragmentov s prekrivajočimi se homolognimi konci. S tako pripravljenim konstruktom so transformirali E. coli. Iz 1 L kulture so po IMAC afinitetni kromatografiji pridobili približno 20 mL očiščenega sfGFP–CTX. Po čiščenju je cepitev s proteazo TEV omogočila pridobitev majhnega CTX brez dodatnih oznak. Ker je CTX majhen peptid, približno 2,3 kDa, nosilni proteinski fragmenti pa so bistveno večji, približno 30 kDa, so izvedli ločevanje z ultrafiltracijo skozi membrano z mejo prehajanja 10 kDa. V filtratu, ki je vseboval CTX, so z merjenjem UV-absorbance kvantificirali približno 2 mg očiščenega CTX na liter kulture.

===Proizvodnja CTX v A. oryzae===
Za ekspresijo sfGFP–CTX v filamentozni glivi Aspergillus oryzae so izhajali iz že pripravljenega konstrukta pIGEM001, iz katerega so s PCR pomnožili fragment sfGFP–CTX. Pri tem so uporabili začetne oligonukleotide s homolognimi regijami za vstavitev v plazmid pUC57-IS1, in sicer v regijo IS1. Hkrati so pUC57-IS1 linearizirali z začetnimi oligonukleotidi, ki so prav tako vsebovali homologijo z insertom.
Potrjeni konstrukt pIGEM002, pripravljen v predhodnem klonirnem koraku z E. coli, so uporabili za transformacijo A. oryzae seva Ory7. Pred transformacijo so plazmid pIGEM002 razgradili z encimom SwaI in sprostili donorski DNA-fragment velikosti približno 3,5 kbp, namenjen homologni rekombinaciji v A. oryzae. Transformacija je bila izvedena po protokolu, ki temelji na pripravi protoplastov, vnosu DNA s pomočjo PEG–CaCl₂ postopka in CRISPR/Cas-usmerjeno integracijo, pri čemer se prekine gen uidA.
Po transformaciji so še preverjali transformante s potrditvenim PCR in naredili test ekspresije oziroma sekrecije sfGFP–CTX z SDS-PAGE in merjenjem fluorescence reporterskega GFP. Na podlagi kvantifikacije proteinov so ocenili sekrecijo približno 100 mg/L sfGFP–CTX. Čeprav niso imeli dovolj časa za čiščenje CTX iz sekretoma, bi bil to naslednji logični korak projekta. Ker CTX predstavlja približno 10 % mase sfGFP–CTX, to ustreza približno 10 mg/L CTX, kar je petkrat več kot pri E. coli. To je bilo doseženo že pri statični tekočinski kultivaciji, kar nakazuje, da bi se lahko izkoristki še bistveno izboljšali pri fermentaciji z mešanjem.
Proizvodnjo sfGFP–CTX so potrdili v obeh gostiteljih, E. coli in A. oryzae, kar kaže, da je strategija fuzije uspešna za prikrivanje toksičnosti peptida, ohranjanje rasti gostitelja in kasnejšo pridobitev CTX po cepitvi. Kljub temu so koraki cepitve s proteazo in nadaljnjega čiščenja lahko dragi in manj primerni za proizvodnjo v večjem merilu, zato je ekipa razvila alternativno strategijo v kvasovki Saccharomyces cerevisiae.

===Proizvodnja CTX v S. cerevisiae===
Pri kvaskovki S. cerevisiae so namesto znotrajceličnega izražanja uporabili pristop izražanja na površini. Za pripravo konstrukta so prejemni vektor razrezali z restrikcijskim encimom XhoI, zaporedje CTX pa pomnožili iz pIGEM001. Pri tem so insertu z začetnimi oligonukleotidi dodali mesti XhoI na 5′ in 3′ koncu, na 3′ koncu pa tudi zaporedje za SNAC-Tag. Fragmente so nato ligirali s T4-ligazo, konstrukt preverili v E. coli in ga uporabili za transformacijo S. cerevisiae. Na ta način so CTX povezali s sistemom za površinski prikaz preko Aga1p, ki je zasidran v celično steno kvasovke prek GPI-sidra. Uporaba SNAC-Tag je omogočila sprostitev CTX s površine celic v supernatant s kemijsko cepitvijo v prisotnosti Ni²⁺ ionov. Na podlagi meritev so ocenili, da bi bil izkoristek CTX lahko primerljiv z izkoristkom pri A. oryzae, kar podpira uporabo tega ekspresijskega sistema za bolj ekonomsko izvedljivo proizvodnjo CTX.
===Optimizirana proizvodnja CTX v A. oryzae===
Kot dodatno strategijo za povečanje proizvodnje CTX je ekipa ponovno uporabila Aspergillus oryzae, vendar tokrat CTX niso povezali s sfGFP, temveč z naravno močno izločanimi amilazami A, B in C. Modul K7–CTX so želeli vstaviti na C-konec vsake amilaze. Tako bi gliva še naprej proizvajala in izločala svoje naravne amilaze, hkrati pa bi bil nanje vezan tudi CTX. Za usmerjeno vstavitev so uporabili pristop CRISPR/Cas9 in homologno rekombinacijo z uporabo dveh gRNA, kjer ena tarči sredino gena, druga pa blizu stop kodona. Strategija dvojnega tarčenja je bila namenjena povečanju verjetnosti uspešne cepitve DNA in vstavitve donorske DNA. Prav tako so za preprečevanje ponovne cepitve po integraciji v zaporedje uvedli mutacijo W369F, ki pa je relativno konzervativna, saj sta obe aminokislini aromatski in hidrofobni. Kandidatne transformante so preverili s PCR, vendar v tem ciklu projekta uspešne integracije niso potrdili, kar kaže, da bi bilo treba sistem dodatno optimizirati, na primer izbiro gRNA ali pogoje transformacije. Kljub temu je strategija pomembna, ker izkorišča naravni sekrecijski potencial A. oryzae. Potencialno bi lahko omogočila učinkovitejšo proizvodnjo CTX in povezavo s fermentacijo v trdnem stanju (SSF) na pomarančnih olupkih z ocenjenim izkoristkom 830 mg CTX na kilogram pomarančnih olupkov. Tak pristop bi lahko dodatno zmanjšal proizvodne stroške in izboljšal okoljsko trajnost celotnega procesa.

==Podporni računalniški model==
Kot podporo eksperimentalnemu delu je ekipa razvila računalniški model širjenja okužbe greening v floemu, v katerega so vključili tudi obrambni odziv rastline in terapevtski učinek protimikrobnih spojin. S tem so lahko primerjali različne tipe ukrepanja, pri čemer so CTX modelirali kot baktericidno učinkovino, oksitetraciklin pa kot že preučevano antibiotično možnost z bakteriostatičnim učinkom. Model je tako služil kot virtualni laboratorij za preverjanje CTX kot potencialne terapije za že okužena drevesa.
==Diagnostika==
Poleg terapevtskega pristopa s CTX so v sklopu projekta razvili tudi diagnostično orodje, imenovano Sniffer. Zgodnja in zanesljiva diagnostika je pri bolezni Greening ključna, saj se okužena drevesa pogosto odkrijejo šele, ko je bolezen že razširjena. Klasične molekularne metode, kot je qPCR, so sicer natančne, vendar so časovno zahtevne, dražje in odvisne od laboratorijske infrastrukture, zato so želeli razviti bolj dostopen diagnostični pristop, ki bi bil uporaben tudi bližje mestu pridelave.
Orodje Sniffer zaznava hlapne organske spojine, ki jih oddajajo listi citrusov. Ker okužba spremeni metabolno stanje rastline, se spremeni tudi njen kemijski profil. Na podlagi meritev zdravih in okuženih listov ter analize s strojnim učenjem je prototip uspešno razlikoval med obema skupinama. Kljub obetavnim rezultatom sistem še ni pripravljen za terensko uporabo, saj bi potreboval večji nabor podatkov, validacijo v različnih okoljskih pogojih in dodatne tehnične izboljšave.
==Zaključek==
Rešitev projekta Pepcitrus ni le uporaba antimikrobnega peptida CTX, temveč celovit pristop sintezne biologije, ki vključuje načrtovanje genskega konstrukta, izražanje v različnih mikroorganizmih, testiranje njegove učinkovitosti in razvoj podpornega diagnostičnega orodja. CTX predstavlja obetavno alternativo za nadzor bolezni citrusov, še posebej v povezavi s proizvodnjo v A. oryzae in uporabo pomarančnih olupkov kot substrata. Kljub temu so za dejansko uporabo potrebne še dodatne raziskave, kot so testi na plodovih in rastlinah v realnih pogojih, ocena stabilnosti peptida, vpliva na netarčne mikroorganizme ter stroškov proizvodnje v velikem obsegu.
==Literatura==
(1) iGEM Teams. https://teams.igem.org/5560 (accessed 2026-05-10).

Pepcitrus

2026-05-12T10:38:09Z

Meri Škorjanc: /* Rekombinantna proizvodnja CTX v mikroorganizmih */

==Uvod==
Citrusi so ena najpomembnejših skupin sadnih rastlin, med katerimi imajo posebno mesto pomaranče kot vir vitaminov, mineralov, vlaknin in bioaktivnih spojin. Po podatkih projekta Pepcitrus se v Braziliji proizvede približno 70 % svetovnega pomarančnega soka in 29 % svežih pomaranč, namenjenih globalni porabi. Bolezni citrusov zato niso le biološki problem, temveč tudi gospodarska in družbena grožnja.
Eden glavnih izzivov v citrusni industriji so bakterijski in glivni patogeni. Projekt Pepcitrus se osredotoča na tri bolezni: greening oziroma Huanglongbing, ki ga povzročajo bakterije iz rodu Candidatus Liberibacter, ter bolezni green mold, ki ga povzroča Penicillium digitatum, in sour rot, ki ga povzroča Geotrichum candidum. Greening prizadene drevesa že v nasadu in s tem ogroža dolgoročno produktivnost nasadov, medtem ko green mold in sour rot povzročata izgube med skladiščenjem, transportom in prodajo plodov. Obstoječe metode nadzora pogosto vključujejo uporabo pesticidov, odstranjevanje okuženih dreves in fungicidno obdelavo plodov, pri čemer se pojavljajo vprašanja učinkovitosti, razvoja odpornosti, stroškov in vpliva na okolje.
==Opis projekta==
Projekt Pepcitrus kot možno rešitev za bolezni citrusov predlaga uporabo 21 aminokislin dolgega antimikrobnega peptida CTX, prvotno opisanega pri južnoameriški drevesni žabi Hypsiboas albopunctatus. Mehanizem delovanja vključuje vezavo pozitivno nabitega peptida na membrano mikroorganizma in tvorbo por. Posledica je izguba celovitosti membrane, uhajanje celične vsebine in smrt patogena. Ker bi bila za uporabo v kmetijstvu potrebna proizvodnja večjih količin peptida, projekt ni ostal le pri testiranju njegove aktivnosti, temveč je razvil strategije za njegovo rekombinantno izražanje v gensko spremenjenih mikroorganizmih. Ekipa je kot možne gostitelje obravnavala Escherichio coli, Saccharomyces cerevisiae in Aspergillus oryzae. Te komplementarne ekspresijske platforme so omogočile primerjavo učinkovitosti in ekonomske izvedljivosti proizvodnje.

===Proizvodnja CTX v E. coli===
Glavni izziv pri proizvodnji antimikrobnega peptida CTX je, da deluje toksično tudi na proizvodne mikroorganizme. Ena izmed glavnih strategij za preprečevanje tega problema je bila fuzija CTX s sfGFP, ki je stabilen, dobro topen, fluorescenčni reporterski protein. Ko je CTX povezan s sfGFP, je njegova protimikrobna aktivnost zmanjšana oziroma prikrita, kar olajša proizvodnjo v gostiteljskih celicah. V konstrukt so vključili tudi fleksibilni povezovalni del 3 × GS linker, ki omogoča prostorsko ločitev CTX od sfGFP, dve cepitveni mesti za proteazo TEV, ki obdajata CTX in omogočata njegovo natančno sprostitev, ter His-oznako, ki omogoča čiščenje proteina z IMAC afinitetno kromatografijo.
Za izražanje konstrukta pIGEM001–sfGFP–CTX v E. coli so uporabili osnovni ekspresijski vektor pJL1–sfGFP in insert K7-CTX, ki so ga pomnožili iz plazmida pUC K7CTX. Ekspresijski vektor so razdelili na dva fragmenta, da so olajšali PCR-amplifikacijo, nato pa so fragmente skupaj z insertom sestavili z metodo NEBuilder HiFi DNA Assembly. Ta metoda omogoča sestavljanje DNA-fragmentov s prekrivajočimi se homolognimi konci. S tako pripravljenim konstruktom so transformirali E. coli. Iz 1 L kulture so po IMAC afinitetni kromatografiji pridobili približno 20 mL očiščenega sfGFP–CTX. Po čiščenju je cepitev s proteazo TEV omogočila pridobitev majhnega CTX brez dodatnih oznak. Ker je CTX majhen peptid, približno 2,3 kDa, nosilni proteinski fragmenti pa so bistveno večji, približno 30 kDa, so izvedli ločevanje z ultrafiltracijo skozi membrano z mejo prehajanja 10 kDa. V filtratu, ki je vseboval CTX, so z merjenjem UV-absorbance kvantificirali približno 2 mg očiščenega CTX na liter kulture.

===Proizvodnja CTX v A. oryzae===
Za ekspresijo sfGFP–CTX v filamentozni glivi Aspergillus oryzae so izhajali iz že pripravljenega konstrukta pIGEM001, iz katerega so s PCR pomnožili fragment sfGFP–CTX. Pri tem so uporabili začetne oligonukleotide s homolognimi regijami za vstavitev v plazmid pUC57-IS1, in sicer v regijo IS1. Hkrati so pUC57-IS1 linearizirali z začetnimi oligonukleotidi, ki so prav tako vsebovali homologijo z insertom.
Potrjeni konstrukt pIGEM002, pripravljen v predhodnem klonirnem koraku z E. coli, so uporabili za transformacijo A. oryzae seva Ory7. Pred transformacijo so plazmid pIGEM002 razgradili z encimom SwaI in sprostili donorski DNA-fragment velikosti približno 3,5 kbp, namenjen homologni rekombinaciji v A. oryzae. Transformacija je bila izvedena po protokolu, ki temelji na pripravi protoplastov, vnosu DNA s pomočjo PEG–CaCl₂ postopka in CRISPR/Cas-usmerjeno integracijo, pri čemer se prekine gen uidA.
Po transformaciji so še preverjali transformante s potrditvenim PCR in naredili test ekspresije oziroma sekrecije sfGFP–CTX z SDS-PAGE in merjenjem fluorescence reporterskega GFP. Na podlagi kvantifikacije proteinov so ocenili sekrecijo približno 100 mg/L sfGFP–CTX. Čeprav niso imeli dovolj časa za čiščenje CTX iz sekretoma, bi bil to naslednji logični korak projekta. Ker CTX predstavlja približno 10 % mase sfGFP–CTX, to ustreza približno 10 mg/L CTX, kar je petkrat več kot pri E. coli. To je bilo doseženo že pri statični tekočinski kultivaciji, kar nakazuje, da bi se lahko izkoristki še bistveno izboljšali pri fermentaciji z mešanjem.
Proizvodnjo sfGFP–CTX so potrdili v obeh gostiteljih, E. coli in A. oryzae, kar kaže, da je strategija fuzije uspešna za prikrivanje toksičnosti peptida, ohranjanje rasti gostitelja in kasnejšo pridobitev CTX po cepitvi. Kljub temu so koraki cepitve s proteazo in nadaljnjega čiščenja lahko dragi in manj primerni za proizvodnjo v večjem merilu, zato je ekipa razvila alternativno strategijo v kvasovki Saccharomyces cerevisiae.

===Proizvodnja CTX v S. cerevisiae===
Pri kvaskovki S. cerevisiae so namesto znotrajceličnega izražanja uporabili pristop izražanja na površini. Za pripravo konstrukta so prejemni vektor razrezali z restrikcijskim encimom XhoI, zaporedje CTX pa pomnožili iz pIGEM001. Pri tem so insertu z začetnimi oligonukleotidi dodali mesti XhoI na 5′ in 3′ koncu, na 3′ koncu pa tudi zaporedje za SNAC-Tag. Fragmente so nato ligirali s T4-ligazo, konstrukt preverili v E. coli in ga uporabili za transformacijo S. cerevisiae. Na ta način so CTX povezali s sistemom za površinski prikaz preko Aga1p, ki je zasidran v celično steno kvasovke prek GPI-sidra. Uporaba SNAC-Tag je omogočila sprostitev CTX s površine celic v supernatant s kemijsko cepitvijo v prisotnosti Ni²⁺ ionov. Na podlagi meritev so ocenili, da bi bil izkoristek CTX lahko primerljiv z izkoristkom pri A. oryzae, kar podpira uporabo tega ekspresijskega sistema za bolj ekonomsko izvedljivo proizvodnjo CTX.
===Optimizirana proizvodnja CTX v A. oryzae===
Kot dodatno strategijo za povečanje proizvodnje CTX je ekipa ponovno uporabila Aspergillus oryzae, vendar tokrat CTX niso povezali s sfGFP, temveč z naravno močno izločanimi amilazami A, B in C. Modul K7–CTX so želeli vstaviti na C-konec vsake amilaze. Tako bi gliva še naprej proizvajala in izločala svoje naravne amilaze, hkrati pa bi bil nanje vezan tudi CTX. Za usmerjeno vstavitev so uporabili pristop CRISPR/Cas9 in homologno rekombinacijo z uporabo dveh gRNA, kjer ena tarči sredino gena, druga pa blizu stop kodona. Strategija dvojnega tarčenja je bila namenjena povečanju verjetnosti uspešne cepitve DNA in vstavitve donorske DNA. Prav tako so za preprečevanje ponovne cepitve po integraciji v zaporedje uvedli mutacijo W369F, ki pa je relativno konzervativna, saj sta obe aminokislini aromatski in hidrofobni. Kandidatne transformante so preverili s PCR, vendar v tem ciklu projekta uspešne integracije niso potrdili, kar kaže, da bi bilo treba sistem dodatno optimizirati, na primer izbiro gRNA ali pogoje transformacije. Kljub temu je strategija pomembna, ker izkorišča naravni sekrecijski potencial A. oryzae. Potencialno bi lahko omogočila učinkovitejšo proizvodnjo CTX in povezavo s fermentacijo v trdnem stanju (SSF) na pomarančnih olupkih z ocenjenim izkoristkom 830 mg CTX na kilogram pomarančnih olupkov. Tak pristop bi lahko dodatno zmanjšal proizvodne stroške in izboljšal okoljsko trajnost celotnega procesa.

==Podporni računalniški model==
Kot podporo eksperimentalnemu delu je ekipa razvila računalniški model širjenja okužbe greening v floemu, v katerega so vključili tudi obrambni odziv rastline in terapevtski učinek protimikrobnih spojin. S tem so lahko primerjali različne tipe ukrepanja, pri čemer so CTX modelirali kot baktericidno učinkovino, oksitetraciklin pa kot že preučevano antibiotično možnost z bakteriostatičnim učinkom. Model je tako služil kot virtualni laboratorij za preverjanje CTX kot potencialne terapije za že okužena drevesa.
==Diagnostika==
Poleg terapevtskega pristopa s CTX so v sklopu projekta razvili tudi diagnostično orodje, imenovano Sniffer. Zgodnja in zanesljiva diagnostika je pri bolezni Greening ključna, saj se okužena drevesa pogosto odkrijejo šele, ko je bolezen že razširjena. Klasične molekularne metode, kot je qPCR, so sicer natančne, vendar so časovno zahtevne, dražje in odvisne od laboratorijske infrastrukture, zato so želeli razviti bolj dostopen diagnostični pristop, ki bi bil uporaben tudi bližje mestu pridelave.
Orodje Sniffer zaznava hlapne organske spojine, ki jih oddajajo listi citrusov. Ker okužba spremeni metabolno stanje rastline, se spremeni tudi njen kemijski profil. Na podlagi meritev zdravih in okuženih listov ter analize s strojnim učenjem je prototip uspešno razlikoval med obema skupinama. Kljub obetavnim rezultatom sistem še ni pripravljen za terensko uporabo, saj bi potreboval večji nabor podatkov, validacijo v različnih okoljskih pogojih in dodatne tehnične izboljšave.
==Zaključek==
Rešitev projekta Pepcitrus ni le uporaba antimikrobnega peptida CTX, temveč celovit pristop sintezne biologije, ki vključuje načrtovanje genskega konstrukta, izražanje v različnih mikroorganizmih, testiranje njegove učinkovitosti in razvoj podpornega diagnostičnega orodja. CTX predstavlja obetavno alternativo za nadzor bolezni citrusov, še posebej v povezavi s proizvodnjo v A. oryzae in uporabo pomarančnih olupkov kot substrata. Kljub temu so za dejansko uporabo potrebne še dodatne raziskave, kot so testi na plodovih in rastlinah v realnih pogojih, ocena stabilnosti peptida, vpliva na netarčne mikroorganizme ter stroškov proizvodnje v velikem obsegu.
==Literatura==
(1) iGEM Teams. https://teams.igem.org/5560 (accessed 2026-05-10).

Pepcitrus

2026-05-12T10:37:44Z

Meri Škorjanc: /* Antimikrobni peptid CTX */

==Uvod==
Citrusi so ena najpomembnejših skupin sadnih rastlin, med katerimi imajo posebno mesto pomaranče kot vir vitaminov, mineralov, vlaknin in bioaktivnih spojin. Po podatkih projekta Pepcitrus se v Braziliji proizvede približno 70 % svetovnega pomarančnega soka in 29 % svežih pomaranč, namenjenih globalni porabi. Bolezni citrusov zato niso le biološki problem, temveč tudi gospodarska in družbena grožnja.
Eden glavnih izzivov v citrusni industriji so bakterijski in glivni patogeni. Projekt Pepcitrus se osredotoča na tri bolezni: greening oziroma Huanglongbing, ki ga povzročajo bakterije iz rodu Candidatus Liberibacter, ter bolezni green mold, ki ga povzroča Penicillium digitatum, in sour rot, ki ga povzroča Geotrichum candidum. Greening prizadene drevesa že v nasadu in s tem ogroža dolgoročno produktivnost nasadov, medtem ko green mold in sour rot povzročata izgube med skladiščenjem, transportom in prodajo plodov. Obstoječe metode nadzora pogosto vključujejo uporabo pesticidov, odstranjevanje okuženih dreves in fungicidno obdelavo plodov, pri čemer se pojavljajo vprašanja učinkovitosti, razvoja odpornosti, stroškov in vpliva na okolje.
==Opis projekta==
Projekt Pepcitrus kot možno rešitev za bolezni citrusov predlaga uporabo 21 aminokislin dolgega antimikrobnega peptida CTX, prvotno opisanega pri južnoameriški drevesni žabi Hypsiboas albopunctatus. Mehanizem delovanja vključuje vezavo pozitivno nabitega peptida na membrano mikroorganizma in tvorbo por. Posledica je izguba celovitosti membrane, uhajanje celične vsebine in smrt patogena. Ker bi bila za uporabo v kmetijstvu potrebna proizvodnja večjih količin peptida, projekt ni ostal le pri testiranju njegove aktivnosti, temveč je razvil strategije za njegovo rekombinantno izražanje v gensko spremenjenih mikroorganizmih. Ekipa je kot možne gostitelje obravnavala Escherichio coli, Saccharomyces cerevisiae in Aspergillus oryzae. Te komplementarne ekspresijske platforme so omogočile primerjavo učinkovitosti in ekonomske izvedljivosti proizvodnje.

==Rekombinantna proizvodnja CTX v mikroorganizmih==
===Proizvodnja CTX v E. coli===
Glavni izziv pri proizvodnji antimikrobnega peptida CTX je, da deluje toksično tudi na proizvodne mikroorganizme. Ena izmed glavnih strategij za preprečevanje tega problema je bila fuzija CTX s sfGFP, ki je stabilen, dobro topen, fluorescenčni reporterski protein. Ko je CTX povezan s sfGFP, je njegova protimikrobna aktivnost zmanjšana oziroma prikrita, kar olajša proizvodnjo v gostiteljskih celicah. V konstrukt so vključili tudi fleksibilni povezovalni del 3 × GS linker, ki omogoča prostorsko ločitev CTX od sfGFP, dve cepitveni mesti za proteazo TEV, ki obdajata CTX in omogočata njegovo natančno sprostitev, ter His-oznako, ki omogoča čiščenje proteina z IMAC afinitetno kromatografijo.
Za izražanje konstrukta pIGEM001–sfGFP–CTX v E. coli so uporabili osnovni ekspresijski vektor pJL1–sfGFP in insert K7-CTX, ki so ga pomnožili iz plazmida pUC K7CTX. Ekspresijski vektor so razdelili na dva fragmenta, da so olajšali PCR-amplifikacijo, nato pa so fragmente skupaj z insertom sestavili z metodo NEBuilder HiFi DNA Assembly. Ta metoda omogoča sestavljanje DNA-fragmentov s prekrivajočimi se homolognimi konci. S tako pripravljenim konstruktom so transformirali E. coli. Iz 1 L kulture so po IMAC afinitetni kromatografiji pridobili približno 20 mL očiščenega sfGFP–CTX. Po čiščenju je cepitev s proteazo TEV omogočila pridobitev majhnega CTX brez dodatnih oznak. Ker je CTX majhen peptid, približno 2,3 kDa, nosilni proteinski fragmenti pa so bistveno večji, približno 30 kDa, so izvedli ločevanje z ultrafiltracijo skozi membrano z mejo prehajanja 10 kDa. V filtratu, ki je vseboval CTX, so z merjenjem UV-absorbance kvantificirali približno 2 mg očiščenega CTX na liter kulture.

===Proizvodnja CTX v A. oryzae===
Za ekspresijo sfGFP–CTX v filamentozni glivi Aspergillus oryzae so izhajali iz že pripravljenega konstrukta pIGEM001, iz katerega so s PCR pomnožili fragment sfGFP–CTX. Pri tem so uporabili začetne oligonukleotide s homolognimi regijami za vstavitev v plazmid pUC57-IS1, in sicer v regijo IS1. Hkrati so pUC57-IS1 linearizirali z začetnimi oligonukleotidi, ki so prav tako vsebovali homologijo z insertom.
Potrjeni konstrukt pIGEM002, pripravljen v predhodnem klonirnem koraku z E. coli, so uporabili za transformacijo A. oryzae seva Ory7. Pred transformacijo so plazmid pIGEM002 razgradili z encimom SwaI in sprostili donorski DNA-fragment velikosti približno 3,5 kbp, namenjen homologni rekombinaciji v A. oryzae. Transformacija je bila izvedena po protokolu, ki temelji na pripravi protoplastov, vnosu DNA s pomočjo PEG–CaCl₂ postopka in CRISPR/Cas-usmerjeno integracijo, pri čemer se prekine gen uidA.
Po transformaciji so še preverjali transformante s potrditvenim PCR in naredili test ekspresije oziroma sekrecije sfGFP–CTX z SDS-PAGE in merjenjem fluorescence reporterskega GFP. Na podlagi kvantifikacije proteinov so ocenili sekrecijo približno 100 mg/L sfGFP–CTX. Čeprav niso imeli dovolj časa za čiščenje CTX iz sekretoma, bi bil to naslednji logični korak projekta. Ker CTX predstavlja približno 10 % mase sfGFP–CTX, to ustreza približno 10 mg/L CTX, kar je petkrat več kot pri E. coli. To je bilo doseženo že pri statični tekočinski kultivaciji, kar nakazuje, da bi se lahko izkoristki še bistveno izboljšali pri fermentaciji z mešanjem.
Proizvodnjo sfGFP–CTX so potrdili v obeh gostiteljih, E. coli in A. oryzae, kar kaže, da je strategija fuzije uspešna za prikrivanje toksičnosti peptida, ohranjanje rasti gostitelja in kasnejšo pridobitev CTX po cepitvi. Kljub temu so koraki cepitve s proteazo in nadaljnjega čiščenja lahko dragi in manj primerni za proizvodnjo v večjem merilu, zato je ekipa razvila alternativno strategijo v kvasovki Saccharomyces cerevisiae.

===Proizvodnja CTX v S. cerevisiae===
Pri kvaskovki S. cerevisiae so namesto znotrajceličnega izražanja uporabili pristop izražanja na površini. Za pripravo konstrukta so prejemni vektor razrezali z restrikcijskim encimom XhoI, zaporedje CTX pa pomnožili iz pIGEM001. Pri tem so insertu z začetnimi oligonukleotidi dodali mesti XhoI na 5′ in 3′ koncu, na 3′ koncu pa tudi zaporedje za SNAC-Tag. Fragmente so nato ligirali s T4-ligazo, konstrukt preverili v E. coli in ga uporabili za transformacijo S. cerevisiae. Na ta način so CTX povezali s sistemom za površinski prikaz preko Aga1p, ki je zasidran v celično steno kvasovke prek GPI-sidra. Uporaba SNAC-Tag je omogočila sprostitev CTX s površine celic v supernatant s kemijsko cepitvijo v prisotnosti Ni²⁺ ionov. Na podlagi meritev so ocenili, da bi bil izkoristek CTX lahko primerljiv z izkoristkom pri A. oryzae, kar podpira uporabo tega ekspresijskega sistema za bolj ekonomsko izvedljivo proizvodnjo CTX.
===Optimizirana proizvodnja CTX v A. oryzae===
Kot dodatno strategijo za povečanje proizvodnje CTX je ekipa ponovno uporabila Aspergillus oryzae, vendar tokrat CTX niso povezali s sfGFP, temveč z naravno močno izločanimi amilazami A, B in C. Modul K7–CTX so želeli vstaviti na C-konec vsake amilaze. Tako bi gliva še naprej proizvajala in izločala svoje naravne amilaze, hkrati pa bi bil nanje vezan tudi CTX. Za usmerjeno vstavitev so uporabili pristop CRISPR/Cas9 in homologno rekombinacijo z uporabo dveh gRNA, kjer ena tarči sredino gena, druga pa blizu stop kodona. Strategija dvojnega tarčenja je bila namenjena povečanju verjetnosti uspešne cepitve DNA in vstavitve donorske DNA. Prav tako so za preprečevanje ponovne cepitve po integraciji v zaporedje uvedli mutacijo W369F, ki pa je relativno konzervativna, saj sta obe aminokislini aromatski in hidrofobni. Kandidatne transformante so preverili s PCR, vendar v tem ciklu projekta uspešne integracije niso potrdili, kar kaže, da bi bilo treba sistem dodatno optimizirati, na primer izbiro gRNA ali pogoje transformacije. Kljub temu je strategija pomembna, ker izkorišča naravni sekrecijski potencial A. oryzae. Potencialno bi lahko omogočila učinkovitejšo proizvodnjo CTX in povezavo s fermentacijo v trdnem stanju (SSF) na pomarančnih olupkih z ocenjenim izkoristkom 830 mg CTX na kilogram pomarančnih olupkov. Tak pristop bi lahko dodatno zmanjšal proizvodne stroške in izboljšal okoljsko trajnost celotnega procesa.
==Podporni računalniški model==
Kot podporo eksperimentalnemu delu je ekipa razvila računalniški model širjenja okužbe greening v floemu, v katerega so vključili tudi obrambni odziv rastline in terapevtski učinek protimikrobnih spojin. S tem so lahko primerjali različne tipe ukrepanja, pri čemer so CTX modelirali kot baktericidno učinkovino, oksitetraciklin pa kot že preučevano antibiotično možnost z bakteriostatičnim učinkom. Model je tako služil kot virtualni laboratorij za preverjanje CTX kot potencialne terapije za že okužena drevesa.
==Diagnostika==
Poleg terapevtskega pristopa s CTX so v sklopu projekta razvili tudi diagnostično orodje, imenovano Sniffer. Zgodnja in zanesljiva diagnostika je pri bolezni Greening ključna, saj se okužena drevesa pogosto odkrijejo šele, ko je bolezen že razširjena. Klasične molekularne metode, kot je qPCR, so sicer natančne, vendar so časovno zahtevne, dražje in odvisne od laboratorijske infrastrukture, zato so želeli razviti bolj dostopen diagnostični pristop, ki bi bil uporaben tudi bližje mestu pridelave.
Orodje Sniffer zaznava hlapne organske spojine, ki jih oddajajo listi citrusov. Ker okužba spremeni metabolno stanje rastline, se spremeni tudi njen kemijski profil. Na podlagi meritev zdravih in okuženih listov ter analize s strojnim učenjem je prototip uspešno razlikoval med obema skupinama. Kljub obetavnim rezultatom sistem še ni pripravljen za terensko uporabo, saj bi potreboval večji nabor podatkov, validacijo v različnih okoljskih pogojih in dodatne tehnične izboljšave.
==Zaključek==
Rešitev projekta Pepcitrus ni le uporaba antimikrobnega peptida CTX, temveč celovit pristop sintezne biologije, ki vključuje načrtovanje genskega konstrukta, izražanje v različnih mikroorganizmih, testiranje njegove učinkovitosti in razvoj podpornega diagnostičnega orodja. CTX predstavlja obetavno alternativo za nadzor bolezni citrusov, še posebej v povezavi s proizvodnjo v A. oryzae in uporabo pomarančnih olupkov kot substrata. Kljub temu so za dejansko uporabo potrebne še dodatne raziskave, kot so testi na plodovih in rastlinah v realnih pogojih, ocena stabilnosti peptida, vpliva na netarčne mikroorganizme ter stroškov proizvodnje v velikem obsegu.
==Literatura==
(1) iGEM Teams. https://teams.igem.org/5560 (accessed 2026-05-10).

Pepcitrus

2026-05-12T10:33:19Z

Meri Škorjanc: /* Proizvodnja CTX v A. oryzae */

==Uvod==
Citrusi so ena najpomembnejših skupin sadnih rastlin, med katerimi imajo posebno mesto pomaranče kot vir vitaminov, mineralov, vlaknin in bioaktivnih spojin. Po podatkih projekta Pepcitrus se v Braziliji proizvede približno 70 % svetovnega pomarančnega soka in 29 % svežih pomaranč, namenjenih globalni porabi. Bolezni citrusov zato niso le biološki problem, temveč tudi gospodarska in družbena grožnja.
Eden glavnih izzivov v citrusni industriji so bakterijski in glivni patogeni. Projekt Pepcitrus se osredotoča na tri bolezni: greening oziroma Huanglongbing, ki ga povzročajo bakterije iz rodu Candidatus Liberibacter, ter bolezni green mold, ki ga povzroča Penicillium digitatum, in sour rot, ki ga povzroča Geotrichum candidum. Greening prizadene drevesa že v nasadu in s tem ogroža dolgoročno produktivnost nasadov, medtem ko green mold in sour rot povzročata izgube med skladiščenjem, transportom in prodajo plodov. Obstoječe metode nadzora pogosto vključujejo uporabo pesticidov, odstranjevanje okuženih dreves in fungicidno obdelavo plodov, pri čemer se pojavljajo vprašanja učinkovitosti, razvoja odpornosti, stroškov in vpliva na okolje.
==Antimikrobni peptid CTX==
Projekt Pepcitrus kot možno rešitev za bolezni citrusov predlaga uporabo 21 aminokislin dolgega antimikrobnega peptida CTX, prvotno opisanega pri južnoameriški drevesni žabi Hypsiboas albopunctatus. Mehanizem delovanja vključuje vezavo pozitivno nabitega peptida na membrano mikroorganizma in tvorbo por. Posledica je izguba celovitosti membrane, uhajanje celične vsebine in smrt patogena. Ker bi bila za uporabo v kmetijstvu potrebna proizvodnja večjih količin peptida, projekt ni ostal le pri testiranju njegove aktivnosti, temveč je razvil strategije za njegovo rekombinantno izražanje v gensko spremenjenih mikroorganizmih. Ekipa je kot možne gostitelje obravnavala Escherichio coli, Saccharomyces cerevisiae in Aspergillus oryzae. Te komplementarne ekspresijske platforme so omogočile primerjavo učinkovitosti in ekonomske izvedljivosti proizvodnje.
==Rekombinantna proizvodnja CTX v mikroorganizmih==
===Proizvodnja CTX v E. coli===
Glavni izziv pri proizvodnji antimikrobnega peptida CTX je, da deluje toksično tudi na proizvodne mikroorganizme. Ena izmed glavnih strategij za preprečevanje tega problema je bila fuzija CTX s sfGFP, ki je stabilen, dobro topen, fluorescenčni reporterski protein. Ko je CTX povezan s sfGFP, je njegova protimikrobna aktivnost zmanjšana oziroma prikrita, kar olajša proizvodnjo v gostiteljskih celicah. V konstrukt so vključili tudi fleksibilni povezovalni del 3 × GS linker, ki omogoča prostorsko ločitev CTX od sfGFP, dve cepitveni mesti za proteazo TEV, ki obdajata CTX in omogočata njegovo natančno sprostitev, ter His-oznako, ki omogoča čiščenje proteina z IMAC afinitetno kromatografijo.
Za izražanje konstrukta pIGEM001–sfGFP–CTX v E. coli so uporabili osnovni ekspresijski vektor pJL1–sfGFP in insert K7-CTX, ki so ga pomnožili iz plazmida pUC K7CTX. Ekspresijski vektor so razdelili na dva fragmenta, da so olajšali PCR-amplifikacijo, nato pa so fragmente skupaj z insertom sestavili z metodo NEBuilder HiFi DNA Assembly. Ta metoda omogoča sestavljanje DNA-fragmentov s prekrivajočimi se homolognimi konci. S tako pripravljenim konstruktom so transformirali E. coli. Iz 1 L kulture so po IMAC afinitetni kromatografiji pridobili približno 20 mL očiščenega sfGFP–CTX. Po čiščenju je cepitev s proteazo TEV omogočila pridobitev majhnega CTX brez dodatnih oznak. Ker je CTX majhen peptid, približno 2,3 kDa, nosilni proteinski fragmenti pa so bistveno večji, približno 30 kDa, so izvedli ločevanje z ultrafiltracijo skozi membrano z mejo prehajanja 10 kDa. V filtratu, ki je vseboval CTX, so z merjenjem UV-absorbance kvantificirali približno 2 mg očiščenega CTX na liter kulture.

===Proizvodnja CTX v A. oryzae===
Za ekspresijo sfGFP–CTX v filamentozni glivi Aspergillus oryzae so izhajali iz že pripravljenega konstrukta pIGEM001, iz katerega so s PCR pomnožili fragment sfGFP–CTX. Pri tem so uporabili začetne oligonukleotide s homolognimi regijami za vstavitev v plazmid pUC57-IS1, in sicer v regijo IS1. Hkrati so pUC57-IS1 linearizirali z začetnimi oligonukleotidi, ki so prav tako vsebovali homologijo z insertom.
Potrjeni konstrukt pIGEM002, pripravljen v predhodnem klonirnem koraku z E. coli, so uporabili za transformacijo A. oryzae seva Ory7. Pred transformacijo so plazmid pIGEM002 razgradili z encimom SwaI in sprostili donorski DNA-fragment velikosti približno 3,5 kbp, namenjen homologni rekombinaciji v A. oryzae. Transformacija je bila izvedena po protokolu, ki temelji na pripravi protoplastov, vnosu DNA s pomočjo PEG–CaCl₂ postopka in CRISPR/Cas-usmerjeno integracijo, pri čemer se prekine gen uidA.
Po transformaciji so še preverjali transformante s potrditvenim PCR in naredili test ekspresije oziroma sekrecije sfGFP–CTX z SDS-PAGE in merjenjem fluorescence reporterskega GFP. Na podlagi kvantifikacije proteinov so ocenili sekrecijo približno 100 mg/L sfGFP–CTX. Čeprav niso imeli dovolj časa za čiščenje CTX iz sekretoma, bi bil to naslednji logični korak projekta. Ker CTX predstavlja približno 10 % mase sfGFP–CTX, to ustreza približno 10 mg/L CTX, kar je petkrat več kot pri E. coli. To je bilo doseženo že pri statični tekočinski kultivaciji, kar nakazuje, da bi se lahko izkoristki še bistveno izboljšali pri fermentaciji z mešanjem.
Proizvodnjo sfGFP–CTX so potrdili v obeh gostiteljih, E. coli in A. oryzae, kar kaže, da je strategija fuzije uspešna za prikrivanje toksičnosti peptida, ohranjanje rasti gostitelja in kasnejšo pridobitev CTX po cepitvi. Kljub temu so koraki cepitve s proteazo in nadaljnjega čiščenja lahko dragi in manj primerni za proizvodnjo v večjem merilu, zato je ekipa razvila alternativno strategijo v kvasovki Saccharomyces cerevisiae.

===Proizvodnja CTX v S. cerevisiae===
Pri kvaskovki S. cerevisiae so namesto znotrajceličnega izražanja uporabili pristop izražanja na površini. Za pripravo konstrukta so prejemni vektor razrezali z restrikcijskim encimom XhoI, zaporedje CTX pa pomnožili iz pIGEM001. Pri tem so insertu z začetnimi oligonukleotidi dodali mesti XhoI na 5′ in 3′ koncu, na 3′ koncu pa tudi zaporedje za SNAC-Tag. Fragmente so nato ligirali s T4-ligazo, konstrukt preverili v E. coli in ga uporabili za transformacijo S. cerevisiae. Na ta način so CTX povezali s sistemom za površinski prikaz preko Aga1p, ki je zasidran v celično steno kvasovke prek GPI-sidra. Uporaba SNAC-Tag je omogočila sprostitev CTX s površine celic v supernatant s kemijsko cepitvijo v prisotnosti Ni²⁺ ionov. Na podlagi meritev so ocenili, da bi bil izkoristek CTX lahko primerljiv z izkoristkom pri A. oryzae, kar podpira uporabo tega ekspresijskega sistema za bolj ekonomsko izvedljivo proizvodnjo CTX.
===Optimizirana proizvodnja CTX v A. oryzae===
Kot dodatno strategijo za povečanje proizvodnje CTX je ekipa ponovno uporabila Aspergillus oryzae, vendar tokrat CTX niso povezali s sfGFP, temveč z naravno močno izločanimi amilazami A, B in C. Modul K7–CTX so želeli vstaviti na C-konec vsake amilaze. Tako bi gliva še naprej proizvajala in izločala svoje naravne amilaze, hkrati pa bi bil nanje vezan tudi CTX. Za usmerjeno vstavitev so uporabili pristop CRISPR/Cas9 in homologno rekombinacijo z uporabo dveh gRNA, kjer ena tarči sredino gena, druga pa blizu stop kodona. Strategija dvojnega tarčenja je bila namenjena povečanju verjetnosti uspešne cepitve DNA in vstavitve donorske DNA. Prav tako so za preprečevanje ponovne cepitve po integraciji v zaporedje uvedli mutacijo W369F, ki pa je relativno konzervativna, saj sta obe aminokislini aromatski in hidrofobni. Kandidatne transformante so preverili s PCR, vendar v tem ciklu projekta uspešne integracije niso potrdili, kar kaže, da bi bilo treba sistem dodatno optimizirati, na primer izbiro gRNA ali pogoje transformacije. Kljub temu je strategija pomembna, ker izkorišča naravni sekrecijski potencial A. oryzae. Potencialno bi lahko omogočila učinkovitejšo proizvodnjo CTX in povezavo s fermentacijo v trdnem stanju (SSF) na pomarančnih olupkih z ocenjenim izkoristkom 830 mg CTX na kilogram pomarančnih olupkov. Tak pristop bi lahko dodatno zmanjšal proizvodne stroške in izboljšal okoljsko trajnost celotnega procesa.
==Podporni računalniški model==
Kot podporo eksperimentalnemu delu je ekipa razvila računalniški model širjenja okužbe greening v floemu, v katerega so vključili tudi obrambni odziv rastline in terapevtski učinek protimikrobnih spojin. S tem so lahko primerjali različne tipe ukrepanja, pri čemer so CTX modelirali kot baktericidno učinkovino, oksitetraciklin pa kot že preučevano antibiotično možnost z bakteriostatičnim učinkom. Model je tako služil kot virtualni laboratorij za preverjanje CTX kot potencialne terapije za že okužena drevesa.
==Diagnostika==
Poleg terapevtskega pristopa s CTX so v sklopu projekta razvili tudi diagnostično orodje, imenovano Sniffer. Zgodnja in zanesljiva diagnostika je pri bolezni Greening ključna, saj se okužena drevesa pogosto odkrijejo šele, ko je bolezen že razširjena. Klasične molekularne metode, kot je qPCR, so sicer natančne, vendar so časovno zahtevne, dražje in odvisne od laboratorijske infrastrukture, zato so želeli razviti bolj dostopen diagnostični pristop, ki bi bil uporaben tudi bližje mestu pridelave.
Orodje Sniffer zaznava hlapne organske spojine, ki jih oddajajo listi citrusov. Ker okužba spremeni metabolno stanje rastline, se spremeni tudi njen kemijski profil. Na podlagi meritev zdravih in okuženih listov ter analize s strojnim učenjem je prototip uspešno razlikoval med obema skupinama. Kljub obetavnim rezultatom sistem še ni pripravljen za terensko uporabo, saj bi potreboval večji nabor podatkov, validacijo v različnih okoljskih pogojih in dodatne tehnične izboljšave.
==Zaključek==
Rešitev projekta Pepcitrus ni le uporaba antimikrobnega peptida CTX, temveč celovit pristop sintezne biologije, ki vključuje načrtovanje genskega konstrukta, izražanje v različnih mikroorganizmih, testiranje njegove učinkovitosti in razvoj podpornega diagnostičnega orodja. CTX predstavlja obetavno alternativo za nadzor bolezni citrusov, še posebej v povezavi s proizvodnjo v A. oryzae in uporabo pomarančnih olupkov kot substrata. Kljub temu so za dejansko uporabo potrebne še dodatne raziskave, kot so testi na plodovih in rastlinah v realnih pogojih, ocena stabilnosti peptida, vpliva na netarčne mikroorganizme ter stroškov proizvodnje v velikem obsegu.
==Literatura==
(1) iGEM Teams. https://teams.igem.org/5560 (accessed 2026-05-10).

Pepcitrus

2026-05-12T10:29:39Z

Meri Škorjanc: /* Proizvodnja CTX v E. coli */

==Uvod==
Citrusi so ena najpomembnejših skupin sadnih rastlin, med katerimi imajo posebno mesto pomaranče kot vir vitaminov, mineralov, vlaknin in bioaktivnih spojin. Po podatkih projekta Pepcitrus se v Braziliji proizvede približno 70 % svetovnega pomarančnega soka in 29 % svežih pomaranč, namenjenih globalni porabi. Bolezni citrusov zato niso le biološki problem, temveč tudi gospodarska in družbena grožnja.
Eden glavnih izzivov v citrusni industriji so bakterijski in glivni patogeni. Projekt Pepcitrus se osredotoča na tri bolezni: greening oziroma Huanglongbing, ki ga povzročajo bakterije iz rodu Candidatus Liberibacter, ter bolezni green mold, ki ga povzroča Penicillium digitatum, in sour rot, ki ga povzroča Geotrichum candidum. Greening prizadene drevesa že v nasadu in s tem ogroža dolgoročno produktivnost nasadov, medtem ko green mold in sour rot povzročata izgube med skladiščenjem, transportom in prodajo plodov. Obstoječe metode nadzora pogosto vključujejo uporabo pesticidov, odstranjevanje okuženih dreves in fungicidno obdelavo plodov, pri čemer se pojavljajo vprašanja učinkovitosti, razvoja odpornosti, stroškov in vpliva na okolje.
==Antimikrobni peptid CTX==
Projekt Pepcitrus kot možno rešitev za bolezni citrusov predlaga uporabo 21 aminokislin dolgega antimikrobnega peptida CTX, prvotno opisanega pri južnoameriški drevesni žabi Hypsiboas albopunctatus. Mehanizem delovanja vključuje vezavo pozitivno nabitega peptida na membrano mikroorganizma in tvorbo por. Posledica je izguba celovitosti membrane, uhajanje celične vsebine in smrt patogena. Ker bi bila za uporabo v kmetijstvu potrebna proizvodnja večjih količin peptida, projekt ni ostal le pri testiranju njegove aktivnosti, temveč je razvil strategije za njegovo rekombinantno izražanje v gensko spremenjenih mikroorganizmih. Ekipa je kot možne gostitelje obravnavala Escherichio coli, Saccharomyces cerevisiae in Aspergillus oryzae. Te komplementarne ekspresijske platforme so omogočile primerjavo učinkovitosti in ekonomske izvedljivosti proizvodnje.
==Rekombinantna proizvodnja CTX v mikroorganizmih==
===Proizvodnja CTX v E. coli===
Glavni izziv pri proizvodnji antimikrobnega peptida CTX je, da deluje toksično tudi na proizvodne mikroorganizme. Ena izmed glavnih strategij za preprečevanje tega problema je bila fuzija CTX s sfGFP, ki je stabilen, dobro topen, fluorescenčni reporterski protein. Ko je CTX povezan s sfGFP, je njegova protimikrobna aktivnost zmanjšana oziroma prikrita, kar olajša proizvodnjo v gostiteljskih celicah. V konstrukt so vključili tudi fleksibilni povezovalni del 3 × GS linker, ki omogoča prostorsko ločitev CTX od sfGFP, dve cepitveni mesti za proteazo TEV, ki obdajata CTX in omogočata njegovo natančno sprostitev, ter His-oznako, ki omogoča čiščenje proteina z IMAC afinitetno kromatografijo.
Za izražanje konstrukta pIGEM001–sfGFP–CTX v E. coli so uporabili osnovni ekspresijski vektor pJL1–sfGFP in insert K7-CTX, ki so ga pomnožili iz plazmida pUC K7CTX. Ekspresijski vektor so razdelili na dva fragmenta, da so olajšali PCR-amplifikacijo, nato pa so fragmente skupaj z insertom sestavili z metodo NEBuilder HiFi DNA Assembly. Ta metoda omogoča sestavljanje DNA-fragmentov s prekrivajočimi se homolognimi konci. S tako pripravljenim konstruktom so transformirali E. coli. Iz 1 L kulture so po IMAC afinitetni kromatografiji pridobili približno 20 mL očiščenega sfGFP–CTX. Po čiščenju je cepitev s proteazo TEV omogočila pridobitev majhnega CTX brez dodatnih oznak. Ker je CTX majhen peptid, približno 2,3 kDa, nosilni proteinski fragmenti pa so bistveno večji, približno 30 kDa, so izvedli ločevanje z ultrafiltracijo skozi membrano z mejo prehajanja 10 kDa. V filtratu, ki je vseboval CTX, so z merjenjem UV-absorbance kvantificirali približno 2 mg očiščenega CTX na liter kulture.

===Proizvodnja CTX v A. oryzae===
Za ekspresijo sfGFP–CTX v filamentozni glivi Aspergillus oryzae so izhajali iz že pripravljenega konstrukta pIGEM001, iz katerega so s PCR pomnožili fragment sfGFP–CTX. Pri tem so uporabili začetne oligonukleotide s homolognimi regijami za vstavitev v plazmid pUC57-IS1, in sicer v regijo IS1, pri čemer se prekine gen uidA. Hkrati so pUC57-IS1 linearizirali z začetnimi oligonukleotidi, ki so prav tako vsebovali homologijo z insertom.
Potrjeni konstrukt pIGEM002, pripravljen v predhodnem klonirnem koraku z E. coli, so uporabili za transformacijo A. oryzae seva Ory7. Pred transformacijo so plazmid pIGEM002 razgradili z encimom SwaI in sprostili donorski DNA-fragment velikosti približno 3,5 kbp, namenjen homologni rekombinaciji v A. oryzae. Transformacija je bila izvedena po protokolu, ki temelji na pripravi protoplastov, vnosu DNA s pomočjo PEG–CaCl₂ postopka in CRISPR/Cas-usmerjeno integracijo.
Po transformaciji so še preverjali transformante s potrditvenim PCR in naredili test ekspresije oziroma sekrecije sfGFP–CTX z SDS-PAGE in merjenjem fluorescence reporterskega GFP. Na podlagi kvantifikacije proteinov so ocenili sekrecijo približno 100 mg/L sfGFP–CTX. Čeprav niso imeli dovolj časa za čiščenje CTX iz sekretoma, bi bil to naslednji logični korak projekta. Ker CTX predstavlja približno 10 % mase sfGFP–CTX, to ustreza približno 10 mg/L CTX, kar je petkrat več kot pri E. coli. To je bilo doseženo že pri statični tekočinski kultivaciji, kar nakazuje, da bi se lahko izkoristki še bistveno izboljšali pri fermentaciji z mešanjem.
Proizvodnjo sfGFP–CTX so potrdili v obeh gostiteljih, E. coli in A. oryzae, kar kaže, da je strategija fuzije uspešna za prikrivanje toksičnosti peptida, ohranjanje rasti gostitelja in kasnejšo pridobitev CTX po cepitvi. Kljub temu so koraki cepitve s proteazo in nadaljnjega čiščenja lahko dragi in manj primerni za proizvodnjo v večjem merilu, zato je ekipa razvila alternativno strategijo v kvasovki Saccharomyces cerevisiae.
===Proizvodnja CTX v S. cerevisiae===
Pri kvaskovki S. cerevisiae so namesto znotrajceličnega izražanja uporabili pristop izražanja na površini. Za pripravo konstrukta so prejemni vektor razrezali z restrikcijskim encimom XhoI, zaporedje CTX pa pomnožili iz pIGEM001. Pri tem so insertu z začetnimi oligonukleotidi dodali mesti XhoI na 5′ in 3′ koncu, na 3′ koncu pa tudi zaporedje za SNAC-Tag. Fragmente so nato ligirali s T4-ligazo, konstrukt preverili v E. coli in ga uporabili za transformacijo S. cerevisiae. Na ta način so CTX povezali s sistemom za površinski prikaz preko Aga1p, ki je zasidran v celično steno kvasovke prek GPI-sidra. Uporaba SNAC-Tag je omogočila sprostitev CTX s površine celic v supernatant s kemijsko cepitvijo v prisotnosti Ni²⁺ ionov. Na podlagi meritev so ocenili, da bi bil izkoristek CTX lahko primerljiv z izkoristkom pri A. oryzae, kar podpira uporabo tega ekspresijskega sistema za bolj ekonomsko izvedljivo proizvodnjo CTX.
===Optimizirana proizvodnja CTX v A. oryzae===
Kot dodatno strategijo za povečanje proizvodnje CTX je ekipa ponovno uporabila Aspergillus oryzae, vendar tokrat CTX niso povezali s sfGFP, temveč z naravno močno izločanimi amilazami A, B in C. Modul K7–CTX so želeli vstaviti na C-konec vsake amilaze. Tako bi gliva še naprej proizvajala in izločala svoje naravne amilaze, hkrati pa bi bil nanje vezan tudi CTX. Za usmerjeno vstavitev so uporabili pristop CRISPR/Cas9 in homologno rekombinacijo z uporabo dveh gRNA, kjer ena tarči sredino gena, druga pa blizu stop kodona. Strategija dvojnega tarčenja je bila namenjena povečanju verjetnosti uspešne cepitve DNA in vstavitve donorske DNA. Prav tako so za preprečevanje ponovne cepitve po integraciji v zaporedje uvedli mutacijo W369F, ki pa je relativno konzervativna, saj sta obe aminokislini aromatski in hidrofobni. Kandidatne transformante so preverili s PCR, vendar v tem ciklu projekta uspešne integracije niso potrdili, kar kaže, da bi bilo treba sistem dodatno optimizirati, na primer izbiro gRNA ali pogoje transformacije. Kljub temu je strategija pomembna, ker izkorišča naravni sekrecijski potencial A. oryzae. Potencialno bi lahko omogočila učinkovitejšo proizvodnjo CTX in povezavo s fermentacijo v trdnem stanju (SSF) na pomarančnih olupkih z ocenjenim izkoristkom 830 mg CTX na kilogram pomarančnih olupkov. Tak pristop bi lahko dodatno zmanjšal proizvodne stroške in izboljšal okoljsko trajnost celotnega procesa.
==Podporni računalniški model==
Kot podporo eksperimentalnemu delu je ekipa razvila računalniški model širjenja okužbe greening v floemu, v katerega so vključili tudi obrambni odziv rastline in terapevtski učinek protimikrobnih spojin. S tem so lahko primerjali različne tipe ukrepanja, pri čemer so CTX modelirali kot baktericidno učinkovino, oksitetraciklin pa kot že preučevano antibiotično možnost z bakteriostatičnim učinkom. Model je tako služil kot virtualni laboratorij za preverjanje CTX kot potencialne terapije za že okužena drevesa.
==Diagnostika==
Poleg terapevtskega pristopa s CTX so v sklopu projekta razvili tudi diagnostično orodje, imenovano Sniffer. Zgodnja in zanesljiva diagnostika je pri bolezni Greening ključna, saj se okužena drevesa pogosto odkrijejo šele, ko je bolezen že razširjena. Klasične molekularne metode, kot je qPCR, so sicer natančne, vendar so časovno zahtevne, dražje in odvisne od laboratorijske infrastrukture, zato so želeli razviti bolj dostopen diagnostični pristop, ki bi bil uporaben tudi bližje mestu pridelave.
Orodje Sniffer zaznava hlapne organske spojine, ki jih oddajajo listi citrusov. Ker okužba spremeni metabolno stanje rastline, se spremeni tudi njen kemijski profil. Na podlagi meritev zdravih in okuženih listov ter analize s strojnim učenjem je prototip uspešno razlikoval med obema skupinama. Kljub obetavnim rezultatom sistem še ni pripravljen za terensko uporabo, saj bi potreboval večji nabor podatkov, validacijo v različnih okoljskih pogojih in dodatne tehnične izboljšave.
==Zaključek==
Rešitev projekta Pepcitrus ni le uporaba antimikrobnega peptida CTX, temveč celovit pristop sintezne biologije, ki vključuje načrtovanje genskega konstrukta, izražanje v različnih mikroorganizmih, testiranje njegove učinkovitosti in razvoj podpornega diagnostičnega orodja. CTX predstavlja obetavno alternativo za nadzor bolezni citrusov, še posebej v povezavi s proizvodnjo v A. oryzae in uporabo pomarančnih olupkov kot substrata. Kljub temu so za dejansko uporabo potrebne še dodatne raziskave, kot so testi na plodovih in rastlinah v realnih pogojih, ocena stabilnosti peptida, vpliva na netarčne mikroorganizme ter stroškov proizvodnje v velikem obsegu.
==Literatura==
(1) iGEM Teams. https://teams.igem.org/5560 (accessed 2026-05-10).

Pepcitrus

2026-05-12T10:20:26Z

Meri Škorjanc:

==Uvod==
Citrusi so ena najpomembnejših skupin sadnih rastlin, med katerimi imajo posebno mesto pomaranče kot vir vitaminov, mineralov, vlaknin in bioaktivnih spojin. Po podatkih projekta Pepcitrus se v Braziliji proizvede približno 70 % svetovnega pomarančnega soka in 29 % svežih pomaranč, namenjenih globalni porabi. Bolezni citrusov zato niso le biološki problem, temveč tudi gospodarska in družbena grožnja.
Eden glavnih izzivov v citrusni industriji so bakterijski in glivni patogeni. Projekt Pepcitrus se osredotoča na tri bolezni: greening oziroma Huanglongbing, ki ga povzročajo bakterije iz rodu Candidatus Liberibacter, ter bolezni green mold, ki ga povzroča Penicillium digitatum, in sour rot, ki ga povzroča Geotrichum candidum. Greening prizadene drevesa že v nasadu in s tem ogroža dolgoročno produktivnost nasadov, medtem ko green mold in sour rot povzročata izgube med skladiščenjem, transportom in prodajo plodov. Obstoječe metode nadzora pogosto vključujejo uporabo pesticidov, odstranjevanje okuženih dreves in fungicidno obdelavo plodov, pri čemer se pojavljajo vprašanja učinkovitosti, razvoja odpornosti, stroškov in vpliva na okolje.
==Antimikrobni peptid CTX==
Projekt Pepcitrus kot možno rešitev za bolezni citrusov predlaga uporabo 21 aminokislin dolgega antimikrobnega peptida CTX, prvotno opisanega pri južnoameriški drevesni žabi Hypsiboas albopunctatus. Mehanizem delovanja vključuje vezavo pozitivno nabitega peptida na membrano mikroorganizma in tvorbo por. Posledica je izguba celovitosti membrane, uhajanje celične vsebine in smrt patogena. Ker bi bila za uporabo v kmetijstvu potrebna proizvodnja večjih količin peptida, projekt ni ostal le pri testiranju njegove aktivnosti, temveč je razvil strategije za njegovo rekombinantno izražanje v gensko spremenjenih mikroorganizmih. Ekipa je kot možne gostitelje obravnavala Escherichio coli, Saccharomyces cerevisiae in Aspergillus oryzae. Te komplementarne ekspresijske platforme so omogočile primerjavo učinkovitosti in ekonomske izvedljivosti proizvodnje.
==Rekombinantna proizvodnja CTX v mikroorganizmih==
===Proizvodnja CTX v E. coli===
Glavni izziv pri proizvodnji antimikrobnega peptida CTX je, da deluje toksično tudi na proizvodne mikroorganizme. Ena izmed glavnih strategij za preprečevanje tega problema je bila fuzija CTX s sfGFP, ki je stabilen, dobro topen, fluorescenčni reporterski protein. Ko je CTX povezan s sfGFP, je njegova protimikrobna aktivnost zmanjšana oziroma prikrita, kar olajša proizvodnjo v gostiteljskih celicah. V konstrukt so vključili tudi fleksibilni povezovalni del 3 × GS linker, ki omogoča prostorsko ločitev CTX od sfGFP, dve cepitveni mesti za proteazo TEV, ki obdajata CTX in omogočata njegovo natančno sprostitev, ter His-oznako, ki omogoča čiščenje proteina z IMAC afinitetno kromatografijo.
Za izražanje konstrukta pIGEM001–sfGFP–CTX v E. coli so uporabili osnovni ekspresijski vektor pJL1–sfGFP in insert K7-CTX, ki so ga pomnožili iz plazmida pUC K7CTX. Ekspresijski vektor so razdelili na dva fragmenta, da so olajšali PCR-amplifikacijo, nato pa so fragmente skupaj z insertom sestavili z metodo NEBuilder HiFi DNA Assembly. Ta metoda omogoča sestavljanje DNA-fragmentov s prekrivajočimi se homolognimi konci. Tako pripravljen konstrukt so transformirali v E. coli. Iz 1 L kulture so po IMAC afinitetni kromatografiji pridobili približno 20 mL očiščenega sfGFP–CTX. Po čiščenju je cepitev s proteazo TEV omogočila pridobitev majhnega CTX brez dodatnih oznak. Ker je CTX majhen peptid, približno 2,3 kDa, nosilni proteinski fragmenti pa so bistveno večji, približno 30 kDa, so izvedli ločevanje z ultrafiltracijo skozi membrano z mejo prehajanja 10 kDa. V filtratu, ki je vseboval CTX, so z merjenjem UV-absorbance kvantificirali približno 2 mg očiščenega CTX na liter kulture.
===Proizvodnja CTX v A. oryzae===
Za ekspresijo sfGFP–CTX v filamentozni glivi Aspergillus oryzae so izhajali iz že pripravljenega konstrukta pIGEM001, iz katerega so s PCR pomnožili fragment sfGFP–CTX. Pri tem so uporabili začetne oligonukleotide s homolognimi regijami za vstavitev v plazmid pUC57-IS1, in sicer v regijo IS1, pri čemer se prekine gen uidA. Hkrati so pUC57-IS1 linearizirali z začetnimi oligonukleotidi, ki so prav tako vsebovali homologijo z insertom.
Potrjeni konstrukt pIGEM002, pripravljen v predhodnem klonirnem koraku z E. coli, so uporabili za transformacijo A. oryzae seva Ory7. Pred transformacijo so plazmid pIGEM002 razgradili z encimom SwaI in sprostili donorski DNA-fragment velikosti približno 3,5 kbp, namenjen homologni rekombinaciji v A. oryzae. Transformacija je bila izvedena po protokolu, ki temelji na pripravi protoplastov, vnosu DNA s pomočjo PEG–CaCl₂ postopka in CRISPR/Cas-usmerjeno integracijo.
Po transformaciji so še preverjali transformante s potrditvenim PCR in naredili test ekspresije oziroma sekrecije sfGFP–CTX z SDS-PAGE in merjenjem fluorescence reporterskega GFP. Na podlagi kvantifikacije proteinov so ocenili sekrecijo približno 100 mg/L sfGFP–CTX. Čeprav niso imeli dovolj časa za čiščenje CTX iz sekretoma, bi bil to naslednji logični korak projekta. Ker CTX predstavlja približno 10 % mase sfGFP–CTX, to ustreza približno 10 mg/L CTX, kar je petkrat več kot pri E. coli. To je bilo doseženo že pri statični tekočinski kultivaciji, kar nakazuje, da bi se lahko izkoristki še bistveno izboljšali pri fermentaciji z mešanjem.
Proizvodnjo sfGFP–CTX so potrdili v obeh gostiteljih, E. coli in A. oryzae, kar kaže, da je strategija fuzije uspešna za prikrivanje toksičnosti peptida, ohranjanje rasti gostitelja in kasnejšo pridobitev CTX po cepitvi. Kljub temu so koraki cepitve s proteazo in nadaljnjega čiščenja lahko dragi in manj primerni za proizvodnjo v večjem merilu, zato je ekipa razvila alternativno strategijo v kvasovki Saccharomyces cerevisiae.
===Proizvodnja CTX v S. cerevisiae===
Pri kvaskovki S. cerevisiae so namesto znotrajceličnega izražanja uporabili pristop izražanja na površini. Za pripravo konstrukta so prejemni vektor razrezali z restrikcijskim encimom XhoI, zaporedje CTX pa pomnožili iz pIGEM001. Pri tem so insertu z začetnimi oligonukleotidi dodali mesti XhoI na 5′ in 3′ koncu, na 3′ koncu pa tudi zaporedje za SNAC-Tag. Fragmente so nato ligirali s T4-ligazo, konstrukt preverili v E. coli in ga uporabili za transformacijo S. cerevisiae. Na ta način so CTX povezali s sistemom za površinski prikaz preko Aga1p, ki je zasidran v celično steno kvasovke prek GPI-sidra. Uporaba SNAC-Tag je omogočila sprostitev CTX s površine celic v supernatant s kemijsko cepitvijo v prisotnosti Ni²⁺ ionov. Na podlagi meritev so ocenili, da bi bil izkoristek CTX lahko primerljiv z izkoristkom pri A. oryzae, kar podpira uporabo tega ekspresijskega sistema za bolj ekonomsko izvedljivo proizvodnjo CTX.
===Optimizirana proizvodnja CTX v A. oryzae===
Kot dodatno strategijo za povečanje proizvodnje CTX je ekipa ponovno uporabila Aspergillus oryzae, vendar tokrat CTX niso povezali s sfGFP, temveč z naravno močno izločanimi amilazami A, B in C. Modul K7–CTX so želeli vstaviti na C-konec vsake amilaze. Tako bi gliva še naprej proizvajala in izločala svoje naravne amilaze, hkrati pa bi bil nanje vezan tudi CTX. Za usmerjeno vstavitev so uporabili pristop CRISPR/Cas9 in homologno rekombinacijo z uporabo dveh gRNA, kjer ena tarči sredino gena, druga pa blizu stop kodona. Strategija dvojnega tarčenja je bila namenjena povečanju verjetnosti uspešne cepitve DNA in vstavitve donorske DNA. Prav tako so za preprečevanje ponovne cepitve po integraciji v zaporedje uvedli mutacijo W369F, ki pa je relativno konzervativna, saj sta obe aminokislini aromatski in hidrofobni. Kandidatne transformante so preverili s PCR, vendar v tem ciklu projekta uspešne integracije niso potrdili, kar kaže, da bi bilo treba sistem dodatno optimizirati, na primer izbiro gRNA ali pogoje transformacije. Kljub temu je strategija pomembna, ker izkorišča naravni sekrecijski potencial A. oryzae. Potencialno bi lahko omogočila učinkovitejšo proizvodnjo CTX in povezavo s fermentacijo v trdnem stanju (SSF) na pomarančnih olupkih z ocenjenim izkoristkom 830 mg CTX na kilogram pomarančnih olupkov. Tak pristop bi lahko dodatno zmanjšal proizvodne stroške in izboljšal okoljsko trajnost celotnega procesa.
==Podporni računalniški model==
Kot podporo eksperimentalnemu delu je ekipa razvila računalniški model širjenja okužbe greening v floemu, v katerega so vključili tudi obrambni odziv rastline in terapevtski učinek protimikrobnih spojin. S tem so lahko primerjali različne tipe ukrepanja, pri čemer so CTX modelirali kot baktericidno učinkovino, oksitetraciklin pa kot že preučevano antibiotično možnost z bakteriostatičnim učinkom. Model je tako služil kot virtualni laboratorij za preverjanje CTX kot potencialne terapije za že okužena drevesa.
==Diagnostika==
Poleg terapevtskega pristopa s CTX so v sklopu projekta razvili tudi diagnostično orodje, imenovano Sniffer. Zgodnja in zanesljiva diagnostika je pri bolezni Greening ključna, saj se okužena drevesa pogosto odkrijejo šele, ko je bolezen že razširjena. Klasične molekularne metode, kot je qPCR, so sicer natančne, vendar so časovno zahtevne, dražje in odvisne od laboratorijske infrastrukture, zato so želeli razviti bolj dostopen diagnostični pristop, ki bi bil uporaben tudi bližje mestu pridelave.
Orodje Sniffer zaznava hlapne organske spojine, ki jih oddajajo listi citrusov. Ker okužba spremeni metabolno stanje rastline, se spremeni tudi njen kemijski profil. Na podlagi meritev zdravih in okuženih listov ter analize s strojnim učenjem je prototip uspešno razlikoval med obema skupinama. Kljub obetavnim rezultatom sistem še ni pripravljen za terensko uporabo, saj bi potreboval večji nabor podatkov, validacijo v različnih okoljskih pogojih in dodatne tehnične izboljšave.
==Zaključek==
Rešitev projekta Pepcitrus ni le uporaba antimikrobnega peptida CTX, temveč celovit pristop sintezne biologije, ki vključuje načrtovanje genskega konstrukta, izražanje v različnih mikroorganizmih, testiranje njegove učinkovitosti in razvoj podpornega diagnostičnega orodja. CTX predstavlja obetavno alternativo za nadzor bolezni citrusov, še posebej v povezavi s proizvodnjo v A. oryzae in uporabo pomarančnih olupkov kot substrata. Kljub temu so za dejansko uporabo potrebne še dodatne raziskave, kot so testi na plodovih in rastlinah v realnih pogojih, ocena stabilnosti peptida, vpliva na netarčne mikroorganizme ter stroškov proizvodnje v velikem obsegu.
==Literatura==
(1) iGEM Teams. https://teams.igem.org/5560 (accessed 2026-05-10).

Pepcitrus

2026-05-12T10:16:32Z

Meri Škorjanc: Created page with "==1. Uvod== Citrusi so ena najpomembnejših skupin sadnih rastlin, med katerimi imajo posebno mesto pomaranče kot vir vitaminov, mineralov, vlaknin in bioaktivnih spojin. Po podatkih projekta Pepcitrus se v Braziliji proizvede približno 70 % svetovnega pomarančnega soka in 29 % svežih pomaranč, namenjenih globalni porabi. Bolezni citrusov zato niso le biološki problem, temveč tudi gospodarska in družbena grožnja. Eden glavnih izzivov v citrusni industriji so bak..."

==1. Uvod==
Citrusi so ena najpomembnejših skupin sadnih rastlin, med katerimi imajo posebno mesto pomaranče kot vir vitaminov, mineralov, vlaknin in bioaktivnih spojin. Po podatkih projekta Pepcitrus se v Braziliji proizvede približno 70 % svetovnega pomarančnega soka in 29 % svežih pomaranč, namenjenih globalni porabi. Bolezni citrusov zato niso le biološki problem, temveč tudi gospodarska in družbena grožnja.
Eden glavnih izzivov v citrusni industriji so bakterijski in glivni patogeni. Projekt Pepcitrus se osredotoča na tri bolezni: greening oziroma Huanglongbing, ki ga povzročajo bakterije iz rodu Candidatus Liberibacter, ter bolezni green mold, ki ga povzroča Penicillium digitatum, in sour rot, ki ga povzroča Geotrichum candidum. Greening prizadene drevesa že v nasadu in s tem ogroža dolgoročno produktivnost nasadov, medtem ko green mold in sour rot povzročata izgube med skladiščenjem, transportom in prodajo plodov. Obstoječe metode nadzora pogosto vključujejo uporabo pesticidov, odstranjevanje okuženih dreves in fungicidno obdelavo plodov, pri čemer se pojavljajo vprašanja učinkovitosti, razvoja odpornosti, stroškov in vpliva na okolje.
==2. Antimikrobni peptid CTX==
Projekt Pepcitrus kot možno rešitev za bolezni citrusov predlaga uporabo 21 aminokislin dolgega antimikrobnega peptida CTX, prvotno opisanega pri južnoameriški drevesni žabi Hypsiboas albopunctatus. Mehanizem delovanja vključuje vezavo pozitivno nabitega peptida na membrano mikroorganizma in tvorbo por. Posledica je izguba celovitosti membrane, uhajanje celične vsebine in smrt patogena. Ker bi bila za uporabo v kmetijstvu potrebna proizvodnja večjih količin peptida, projekt ni ostal le pri testiranju njegove aktivnosti, temveč je razvil strategije za njegovo rekombinantno izražanje v gensko spremenjenih mikroorganizmih. Ekipa je kot možne gostitelje obravnavala Escherichio coli, Saccharomyces cerevisiae in Aspergillus oryzae. Te komplementarne ekspresijske platforme so omogočile primerjavo učinkovitosti in ekonomske izvedljivosti proizvodnje.
==3. Rekombinantna proizvodnja CTX v mikroorganizmih==
==3.1. Proizvodnja CTX v E. coli==
Glavni izziv pri proizvodnji antimikrobnega peptida CTX je, da deluje toksično tudi na proizvodne mikroorganizme. Ena izmed glavnih strategij za preprečevanje tega problema je bila fuzija CTX s sfGFP, ki je stabilen, dobro topen, fluorescenčni reporterski protein. Ko je CTX povezan s sfGFP, je njegova protimikrobna aktivnost zmanjšana oziroma prikrita, kar olajša proizvodnjo v gostiteljskih celicah. V konstrukt so vključili tudi fleksibilni povezovalni del 3 × GS linker, ki omogoča prostorsko ločitev CTX od sfGFP, dve cepitveni mesti za proteazo TEV, ki obdajata CTX in omogočata njegovo natančno sprostitev, ter His-oznako, ki omogoča čiščenje proteina z IMAC afinitetno kromatografijo.
Za izražanje konstrukta pIGEM001–sfGFP–CTX v E. coli so uporabili osnovni ekspresijski vektor pJL1–sfGFP in insert K7-CTX, ki so ga pomnožili iz plazmida pUC K7CTX. Ekspresijski vektor so razdelili na dva fragmenta, da so olajšali PCR-amplifikacijo, nato pa so fragmente skupaj z insertom sestavili z metodo NEBuilder HiFi DNA Assembly. Ta metoda omogoča sestavljanje DNA-fragmentov s prekrivajočimi se homolognimi konci. Tako pripravljen konstrukt so transformirali v E. coli. Iz 1 L kulture so po IMAC afinitetni kromatografiji pridobili približno 20 mL očiščenega sfGFP–CTX. Po čiščenju je cepitev s proteazo TEV omogočila pridobitev majhnega CTX brez dodatnih oznak. Ker je CTX majhen peptid, približno 2,3 kDa, nosilni proteinski fragmenti pa so bistveno večji, približno 30 kDa, so izvedli ločevanje z ultrafiltracijo skozi membrano z mejo prehajanja 10 kDa. V filtratu, ki je vseboval CTX, so z merjenjem UV-absorbance kvantificirali približno 2 mg očiščenega CTX na liter kulture.
==3.2. Proizvodnja CTX v A. oryzae==
Za ekspresijo sfGFP–CTX v filamentozni glivi Aspergillus oryzae so izhajali iz že pripravljenega konstrukta pIGEM001, iz katerega so s PCR pomnožili fragment sfGFP–CTX. Pri tem so uporabili začetne oligonukleotide s homolognimi regijami za vstavitev v plazmid pUC57-IS1, in sicer v regijo IS1, pri čemer se prekine gen uidA. Hkrati so pUC57-IS1 linearizirali z začetnimi oligonukleotidi, ki so prav tako vsebovali homologijo z insertom.
Potrjeni konstrukt pIGEM002, pripravljen v predhodnem klonirnem koraku z E. coli, so uporabili za transformacijo A. oryzae seva Ory7. Pred transformacijo so plazmid pIGEM002 razgradili z encimom SwaI in sprostili donorski DNA-fragment velikosti približno 3,5 kbp, namenjen homologni rekombinaciji v A. oryzae. Transformacija je bila izvedena po protokolu, ki temelji na pripravi protoplastov, vnosu DNA s pomočjo PEG–CaCl₂ postopka in CRISPR/Cas-usmerjeno integracijo.
Po transformaciji so še preverjali transformante s potrditvenim PCR in naredili test ekspresije oziroma sekrecije sfGFP–CTX z SDS-PAGE in merjenjem fluorescence reporterskega GFP. Na podlagi kvantifikacije proteinov so ocenili sekrecijo približno 100 mg/L sfGFP–CTX. Čeprav niso imeli dovolj časa za čiščenje CTX iz sekretoma, bi bil to naslednji logični korak projekta. Ker CTX predstavlja približno 10 % mase sfGFP–CTX, to ustreza približno 10 mg/L CTX, kar je petkrat več kot pri E. coli. To je bilo doseženo že pri statični tekočinski kultivaciji, kar nakazuje, da bi se lahko izkoristki še bistveno izboljšali pri fermentaciji z mešanjem.
Proizvodnjo sfGFP–CTX so potrdili v obeh gostiteljih, E. coli in A. oryzae, kar kaže, da je strategija fuzije uspešna za prikrivanje toksičnosti peptida, ohranjanje rasti gostitelja in kasnejšo pridobitev CTX po cepitvi. Kljub temu so koraki cepitve s proteazo in nadaljnjega čiščenja lahko dragi in manj primerni za proizvodnjo v večjem merilu, zato je ekipa razvila alternativno strategijo v kvasovki Saccharomyces cerevisiae.
==3.3. Proizvodnja CTX v S. cerevisiae==
Pri kvaskovki S. cerevisiae so namesto znotrajceličnega izražanja uporabili pristop izražanja na površini. Za pripravo konstrukta so prejemni vektor razrezali z restrikcijskim encimom XhoI, zaporedje CTX pa pomnožili iz pIGEM001. Pri tem so insertu z začetnimi oligonukleotidi dodali mesti XhoI na 5′ in 3′ koncu, na 3′ koncu pa tudi zaporedje za SNAC-Tag. Fragmente so nato ligirali s T4-ligazo, konstrukt preverili v E. coli in ga uporabili za transformacijo S. cerevisiae. Na ta način so CTX povezali s sistemom za površinski prikaz preko Aga1p, ki je zasidran v celično steno kvasovke prek GPI-sidra. Uporaba SNAC-Tag je omogočila sprostitev CTX s površine celic v supernatant s kemijsko cepitvijo v prisotnosti Ni²⁺ ionov. Na podlagi meritev so ocenili, da bi bil izkoristek CTX lahko primerljiv z izkoristkom pri A. oryzae, kar podpira uporabo tega ekspresijskega sistema za bolj ekonomsko izvedljivo proizvodnjo CTX.
==3.4. Optimizirana proizvodnja CTX v A. oryzae==
Kot dodatno strategijo za povečanje proizvodnje CTX je ekipa ponovno uporabila Aspergillus oryzae, vendar tokrat CTX niso povezali s sfGFP, temveč z naravno močno izločanimi amilazami A, B in C. Modul K7–CTX so želeli vstaviti na C-konec vsake amilaze. Tako bi gliva še naprej proizvajala in izločala svoje naravne amilaze, hkrati pa bi bil nanje vezan tudi CTX. Za usmerjeno vstavitev so uporabili pristop CRISPR/Cas9 in homologno rekombinacijo z uporabo dveh gRNA, kjer ena tarči sredino gena, druga pa blizu stop kodona. Strategija dvojnega tarčenja je bila namenjena povečanju verjetnosti uspešne cepitve DNA in vstavitve donorske DNA. Prav tako so za preprečevanje ponovne cepitve po integraciji v zaporedje uvedli mutacijo W369F, ki pa je relativno konzervativna, saj sta obe aminokislini aromatski in hidrofobni. Kandidatne transformante so preverili s PCR, vendar v tem ciklu projekta uspešne integracije niso potrdili, kar kaže, da bi bilo treba sistem dodatno optimizirati, na primer izbiro gRNA ali pogoje transformacije. Kljub temu je strategija pomembna, ker izkorišča naravni sekrecijski potencial A. oryzae. Potencialno bi lahko omogočila učinkovitejšo proizvodnjo CTX in povezavo s fermentacijo v trdnem stanju (SSF) na pomarančnih olupkih z ocenjenim izkoristkom 830 mg CTX na kilogram pomarančnih olupkov. Tak pristop bi lahko dodatno zmanjšal proizvodne stroške in izboljšal okoljsko trajnost celotnega procesa.
==4. Podporni računalniški model==
Kot podporo eksperimentalnemu delu je ekipa razvila računalniški model širjenja okužbe greening v floemu, v katerega so vključili tudi obrambni odziv rastline in terapevtski učinek protimikrobnih spojin. S tem so lahko primerjali različne tipe ukrepanja, pri čemer so CTX modelirali kot baktericidno učinkovino, oksitetraciklin pa kot že preučevano antibiotično možnost z bakteriostatičnim učinkom. Model je tako služil kot virtualni laboratorij za preverjanje CTX kot potencialne terapije za že okužena drevesa.
==5. Diagnostika==
Poleg terapevtskega pristopa s CTX so v sklopu projekta razvili tudi diagnostično orodje, imenovano Sniffer. Zgodnja in zanesljiva diagnostika je pri bolezni Greening ključna, saj se okužena drevesa pogosto odkrijejo šele, ko je bolezen že razširjena. Klasične molekularne metode, kot je qPCR, so sicer natančne, vendar so časovno zahtevne, dražje in odvisne od laboratorijske infrastrukture, zato so želeli razviti bolj dostopen diagnostični pristop, ki bi bil uporaben tudi bližje mestu pridelave.
Orodje Sniffer zaznava hlapne organske spojine, ki jih oddajajo listi citrusov. Ker okužba spremeni metabolno stanje rastline, se spremeni tudi njen kemijski profil. Na podlagi meritev zdravih in okuženih listov ter analize s strojnim učenjem je prototip uspešno razlikoval med obema skupinama. Kljub obetavnim rezultatom sistem še ni pripravljen za terensko uporabo, saj bi potreboval večji nabor podatkov, validacijo v različnih okoljskih pogojih in dodatne tehnične izboljšave.
==6. Zaključek==
Rešitev projekta Pepcitrus ni le uporaba antimikrobnega peptida CTX, temveč celovit pristop sintezne biologije, ki vključuje načrtovanje genskega konstrukta, izražanje v različnih mikroorganizmih, testiranje njegove učinkovitosti in razvoj podpornega diagnostičnega orodja. CTX predstavlja obetavno alternativo za nadzor bolezni citrusov, še posebej v povezavi s proizvodnjo v A. oryzae in uporabo pomarančnih olupkov kot substrata. Kljub temu so za dejansko uporabo potrebne še dodatne raziskave, kot so testi na plodovih in rastlinah v realnih pogojih, ocena stabilnosti peptida, vpliva na netarčne mikroorganizme ter stroškov proizvodnje v velikem obsegu.
==7. Literatura==
(1) iGEM Teams. https://teams.igem.org/5560 (accessed 2026-05-10).

Seminarji SB 2025/26

2026-05-12T10:13:29Z

Meri Škorjanc:

V študijskem letu 2025/26 študenti in študentke pri Sintezni biologiji predstavljajo naslednje teme:

RAZISKOVALNI ČLANKI

(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do izhodiščnega članka na spletu.) 
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/OrthologTransformer OrthologTransformer] (Tim David Agrež)
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Genetsko_kodirani_biosenzor_za_spremljanje_depolimerizacije_morskih_polisarahidov Genetsko kodirani biosenzor za spremljanje depolimerizacije morskih polisarahidov] (Vanja Vogrič)
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Komunikacije_na_podlagi_RNA_v_heterogenih_populacijah_mimetičnih_celic Komunikacije na podlagi RNA v heterogenih populacijah mimetičnih celic] (Marcel Tušek)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Na%C4%8Drtovanje_oscilatorjev_proteinov_na_membrani_vodenih_s_%C5%A1umom_v_%C5%BEivih_celicah Načrtovanje oscilatorjev proteinov na membrani vodenih s šumom v živih celicah] (Varvara Titova)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Samoinducibilno_molekulsko_stikalo_za_biosintezo_hialuronske_kisline_z_nizko_molekulsko_maso Samoinducibilno molekulsko stikalo za biosintezo hialuronske kisline z nizko molekulsko maso] (Nejc Horvat)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Reprogramiranje_metabolizma_bakterije_E.coli_za_fiksacijo_CO₂ Reprogramiranje metabolizma bakterije E. coli za fiksacijo CO₂] (Ana Kastelic)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Organokataliziran_nastanek_protocelic_od_spodaj_navzgor Organokataliziran nastanek protocelic od spodaj navzgor] (Maruša Kristan)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Programabilen_ribocim_za_prenos_signala_RNA Programabilen ribocim za prenos signala RNA] (Klemen Klopčič)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Vnos CU-bogatega elementa v 3′ UTR poveča stabilnost in izražanje sintetične mRNA In Vivo] (Lea Jarm)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Preoblikovanje_centralnega_metabolizma_pri_Komagataella_phaffii_za_učinkovito_sintezo_D-manoze Preoblikovanje centralnega metabolizma pri Komagataella phaffii za učinkovito sintezo D-manoze] (Špela Auer)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Medvrstni_prenos_kromosomov_v_kvasovkah_vodi_do_izboljšanja_fenotipa_in_raznolikih_transkripcijskih_odzivov Medvrstni prenos kromosomov v kvasovkah vodi do izboljšanja fenotipa in raznolikih transkripcijskih odzivov] (Anja Novak)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Logično_vezje_IN,_ki_vključuje_sistem_CRISPR/Cas9_in_HCR_za_natančno_detekcijo_ctDNA Logično vezje IN, ki vključuje sistem CRISPR/Cas9 in HCR za natančno detekcijo ctDNA] (Tiara Pšeničnik)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Ekspresijska_kaseta_za_sintezo_heterolognih_proteinov_v_Y._lipolytica Ekspresijska kaseta za sintezo heterolognih proteinov v Y. lipolytica] (Tonja Oman Sušnik)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Uravnavanje_evolucijskega_potenciala_s_številom_kopij_plazmida_in_regulatorno_arhitekturo Uravnavanje evolucijskega potenciala s številom kopij plazmida in regulatorno arhitekturo] (Neža Pezo Zupančič)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Vpliv_sestave_gojišča_na_delovanje_vezja_na_osnovi_izločevalnega_sistema_tipa_III Vpliv sestave gojišča na delovanje vezja na osnovi izločevalnega sistema tipa III] (Jana Bregar)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Bakterijski_senzor_zelene_svetlobe,_specifičen_za_stacionarno_fazo_rasti,_za_povečanje_proizvodnje_metabolitov Bakterijski senzor zelene svetlobe, specifičen za stacionarno fazo rasti, za povečanje proizvodnje metabolitov] (Vid Kozel)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Načrtovanje_genetskih_programov_v_sesalskih_celicah_z_uporabo_računalniskega_orodja_GCAD Načrtovanje genetskih programov v sesalskih celicah z uporabo računalniškega orodja GCAD] (Filip Petrovič)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Vpliv_optogenetske_stimulacije_na_izražanje_nevronskih_genov_v_človeških_mezenhimskih_matičnih_celicah,_pridobljenih_iz_kostnega_mozga_in_maščobnega_tkiva Vpliv optogenetske stimulacije na izražanje nevronskih genov v človeških mezenhimskih matičnih celicah, pridobljenih iz kostnega mozga in maščobnega tkiva] (Andreja Dimovska)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Cikel_načrtovanja,_izdelave,_testiranja_in_učenja_(DBTL)_pri_razvoju_celičnega_biosenzorja_za_piruvat_na_osnovi_transkripcijskega_faktorja Cikel načrtovanja, izdelave, testiranja in učenja (DBTL) pri razvoju celičnega biosenzorja za piruvat na osnovi transkripcijskega faktorja] (Lenart Bogataj)

NAGRAJENI ŠTUDENTSKI PROJEKTI

(Vpišite naslov seminarja v slovenščini in ga povežite z novo stranjo, kjer bo povzetek. Na tej novi strani naj bo pod naslovom povezava do wiki strani študentske ekipe, katere projekt opisujete.)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/NomNomNylon NomNomNylon] (Rebeka Ribič)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/FoCas FoCas] (Amber Bervar)
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/TasAnchor TasAnchor] (Jasna Čarman)
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/SKIPPIT SKIPPIT] (Brina Klinar)
# [http://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/InkSight InkSight] (Lucija Kovaček)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php?title=KunPeng KunPeng] (Lara Ferjančič)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/NRPieceS NRPieceS] (Katarina Gomiršek)
# [https://wiki.fkkt.uni-lj.si/index.php/Pepcitrus Pepcitrus] (Meri Škorjanc)

(zgornji primer nadomestite s prvim letošnjim seminarjem iz študentskih projektov)

Povzetki v slovenščini naj imajo 1200-1500 besed (viri v to vsoto ne štejejo). Povzetek je treba objaviti dva dni pred predstavitvijo do polnoči (za seminarje v sredo torej najkasneje v ponedeljek do 23:59). Predstavitev seminarja naj bo dolga 15 minut (13-17). Sledila bo približno 5-minutna razprava.

Terminski razpored je razviden iz preglednice na strežniku Google Drive (dostopno samo študentom tekočega letnika).

Kako je videti končni seznam seminarjev, lahko preverite pri lanskem letniku: [[Seminarji_SB_2024/25]].

2026-BNT-seminar

2026-04-14T20:04:35Z

Meri Škorjanc:

= Bionanotehnologija 2026- seminar =
doc. dr. Gregor Gunčar, K2.022

== Seznam seminarjev ==
V tabelo] prosim vpišite temo vašega projekta in kratko oznako.

{| class="wikitable"
! datum predstavitve !! naslov !! kratka koda projekta !! predstavlja !! recenzent 1 !! recenzent 2
|-
| 18/03/2025 || Bionanotehnološki pristop k dolgoročnemu arhiviranju digitalnih podatkov z DNA zaporedjem || DNArchive || Kozel, Vid || Bajramovikj, Denis || Ribič, Rebeka
|-
| 18/03/2025 || Sistem za adsorpcijo in razgradnjo gliadina (uporaba v medicini in prehranski industriji) || GlutenBlock || Horvat, Nejc || Šenica Pavletič, Primož || Hvalec, Jan
|-
| 18/03/2025 || Zaščita titanovih implantantov s samoobnovljivim nanofilmom || ImplantShield || Perc, Anže || Agrež, Tim-David || Klopčič, Klemen
|-
| 18/03/2025 || Bionanosenzorski obliž za merjenje cirkadianega ritma preko sline || CircAlign || Kovaček, Lucija || Bervar, Amber || Mohar, Teja
|-
| 25/03/2025 || Mazilo z odzivnimi nanodelci za selektivno zdravljenje atopijskega dermatitisa || SmartDerm || Pezo Zupančič, Neža || Habot, Hanna || Vogrič, Vanja
|-
| 25/03/2025 || Verižica za zaznavanje drog || SafeSip || Bogataj, Lenart || Jarm, Lea || Bajramovikj, Denis
|-
| 25/03/2025 || Nalepka za kožo za neinvazivno spremljanje hidracijskega stanja preko znoja|| HydraShow || Ferjančič, Lara || Todorovska, Milena || Šenica Pavletič, Primož
|-
| 25/03/2025 || Injekcija za hitrejšo rekonstrukcijo sprednje križne vezi (ACL) || RegelAcl || Briševac, Tea || Klinar, Brina || Agrež, Tim-David
|-
| 01/04/2025 || Kontaktne leče za zdravljenje migrene || MigraLens || Pšeničnik, Tiara || Kozel, Vid || Bervar, Amber
|-
| 01/04/2025 || Zaščitna nanoprevleka proti adheziji bakterij v prebavilih || FloraCoat || Jukić, Lea || Horvat, Nejc || Habot, Hanna
|-
| 01/04/2025 || Personalizirana indukcija in moduliranje spanja z uporabo nanoteles || NanoNap || Petrovič, Filip || Perc, Anže || Jarm, Lea
|-
| 01/04/2025 || Sistem za predčasno zaznavanje cvetenja cianobakterij || BloomSense || Novak, Anja || Kovaček, Lucija || Todorovska, Milena
|-
| 01/04/2025 || Sistem za začasno dodatno oskrbo s kisikom pri ovirani ventilaciji || Atmos || Oman Sušnik, Tonja || Pezo Zupančič, Neža || Klinar, Brina
|-
| 08/04/2025 || Pristop k zdravljenju neonatalne zlatenice || ZlatoHome || Auer, Špela || Bogataj, Lenart || Kozel, Vid
|-
| 08/04/2025 || Pametni venski graft za regeneracijo in spremljanje žil || VitaVein || Dimovska, Andreja || Ferjančič, Lara || Horvat, Nejc
|-
| 08/04/2025 || Injekcija za regeneracijo zob || ReDent || Gomiršek, Katarina || Briševac, Tea || Perc, Anže
|-
| 08/04/2025 || Detektor Salmonelle v jajcih (doma, male farme) || EggGuard || Titova, Varvara || Pšeničnik, Tiara || Kovaček, Lucija
|-
| 08/04/2025 || Zaščitna mreža za okna, ki filtrira onesnažen zrak || NanoNet || Kristan, Maruša || Jukić, Lea || Pezo Zupančič, Neža
|-
| 15/04/2025 || Sistemska zaščita pred komarji || DermVeil || Škorjanc, Meri || Petrovič, Filip || Bogataj, Lenart
|-
| 15/04/2025 || NFC biosenzor za zaznavanje kvarjenja jagodičevja na osnovi detekcije etanola z PQQ-ADH
|| PredictaBerry || Bregar, Jana || Novak, Anja || Ferjančič, Lara
|-
| 15/04/2025 || Filter za vodo, onesnaženo s težkimi kovinami || NanoFilter || Smrečnik, Meta || Oman Sušnik, Tonja || Briševac, Tea
|-
| 15/04/2025 || Encimski reaktor za razgrajevanje nanoplastike v pitni vodi || Aquazyme || Tušek, Marcel || Auer, Špela || Pšeničnik, Tiara
|-
| 15/04/2025 || || || Zupan, Zala || Dimovska, Andreja || Jukić, Lea
|-
| 22/04/2025 || Mikrofluidni nanosenzorski sistem za zgodnje zaznavanje bolezni mačk preko analize urina || LitterLab || Lešnik, Tjaša || Gomiršek, Katarina || Petrovič, Filip
|-
| 22/04/2025 || Z nanotelesi usmerjena terapija z iRNA proti varoji || BeeOProtect || Čarman, Jasna || Titova, Varvara || Novak, Anja
|-
| 22/04/2025 || || || Ribič, Rebeka || Kristan, Maruša || Oman Sušnik, Tonja
|-
| 06/05/2025 || || || Hvalec, Jan || Škorjanc, Meri || Auer, Špela
|-
| 06/05/2025 || Zdravljenje Glikogenoze tip 1A z dostavo zdravila v hepatocite || GlucozymeShuttle || Klopčič, Klemen || Bregar, Jana || Dimovska, Andreja
|-
| 06/05/2025 || || || Mohar, Teja || Smrečnik, Meta || Gomiršek, Katarina
|-
| 06/05/2025 || || || Vogrič, Vanja || Tušek, Marcel || Titova, Varvara
|-
| 13/05/2025 || || || Bajramovikj, Denis || Zupan, Zala || Kristan, Maruša
|-
| 13/05/2025 || || || Šenica Pavletič, Primož || Lešnik, Tjaša || Škorjanc, Meri
|-
| 13/05/2025 || || || Agrež, Tim-David || Čarman, Jasna || Bregar, Jana
|-
| 13/05/2025 || || || Bervar, Amber || Ribič, Rebeka || Smrečnik, Meta
|-
| 20/05/2025 || || || Habot, Hanna || Hvalec, Jan || Tušek, Marcel
|-
| 20/05/2025 || || || Jarm, Lea || Klopčič, Klemen || Zupan, Zala
|-
| 20/05/2025 || || || Todorovska, Milena || Mohar, Teja || Lešnik, Tjaša
|-
| 20/05/2025 || || || Klinar, Brina || Vogrič, Vanja || Čarman, Jasna
|-
| 27/05/2025 || || || kratke predstavitve || ||
|}

==Naloga==
Pripravite projektno nalogo iz področja Bionanotehnologije. Najpomembnejša je originalna ideja za nek izvedljiv projekt, ki pa mora biti takšen, da pritegne investitorje. Ker je pomembno tudi kako boste to naredili, morate predstaviti tudi metodo in ne samo ideje. Natančno morate vedeti, kako boste projekt izvedli.

Predlagana struktura teksta:
* Uvod
* Predstavitev problema, znanstvena izhodišča, cilji
* Izvedba projekta, metodologija, tehnike, materiali, vprašanja, hipoteze
* Literatura

Za pripravo seminarja velja naslednje: 
* Elektronska verzija seminarja: avtor, naslov projekta, razširjeni povzetek projekta- 350-400 besed (brez literature) in grafični povzetek (čez približno pol strani). Vse naj bo na maksimalno dveh straneh, a ne sme vsebovati manj kot 350 besed (sem se ne šteje literatura).
* Elektronsko verzijo seminarja oddajte '''dva dni pred predstavitvijo,''' kasneje pa boste vsebino še prekopirali na za to določeno spletno stran, predstavitev pa eno uro pred seminarjem na [http://bio.ijs.si/~zajec/poslji/ strežnik].
* Vsi seminarji so v elektronski obliki dostopni [http://bio.ijs.si/~zajec/poslji/bioseminar/ tukaj].
* Ustna predstavitev sledi na dan, ki je vpisan v tabeli. Predstavitev naj bo dolga 15 minut. Recenzenti morajo biti na predstavitvi prisotni.
* Predstavitvi sledi razprava. Recenzenta morata predlagati vsaj eno izboljšavo predstavljenega projekta.

==Imena datotek==
Prosim vas, da vse datoteke poimenujete po naslednjem modelu:
* 25_nano_Priimek.doc za seminar, npr. 25_nano_Craik_Venter.doc
* 25_nano_Priimek.ppt za prezentacijo, npr. 25_nano_Craik_Venter.ppt

==Urejanje spletnih strani na wikiju==
Wiki so razvili zato, da lahko spletne vsebine ureja vsakdo. Ukazi so preprosti, dokler si ne zamislite česa prav posebnega. Vseeno pa je Word v primerjavi z wikijem pravo čudežno orodje... Če imate težave z oblikovanjem besedila, si preberite poglavje o urejanju wiki-strani na Wikipediji ([http://en.wikipedia.org/wiki/Help:Editing tule] v angleščini in [http://sl.wikipedia.org/wiki/Wikipedija:Urejanje_strani tu] v slovenščini). Pomaga tudi, če pogledate, kako je zapisana kakšna stran, ki se vam zdi v redu: kliknite na zavihek 'Uredite stran' in si poglejte, kako so vpisane povezave, kako nov odstavek in podobno. ''Na koncu seveda pod oknom za urejanje kliknite na 'Prekliči'.''

==Citiranje virov==
Citiranje je možno po več shemah, važno je, da se držite ene same. V seminarskih nalogah in diplomskih nalogah FKKT uprabljajte shemo citiranja, ki je pobarvana zeleno.
Temeljno načelo je, da je treba vir navesti na tak način, da ga je mogoče nedvoumno poiskati.
Za citate v naravoslovju je najpogostejše citiranje po pravilniku ISO 690. [http://www.zveza-zotks.si/gzm/dokumenti/literatura.html Pravila], ki upoštevajo omenjeni standard, so pripravili pri ZTKS. Sicer pa ima vsaka revija lahko svoj način citiranja, ki ga je treba pri pisanju članka upoštevati. 
'''Citiranje knjig:''' 
Priimek, I. ''Naslov''. Kraj: Založba, letnica. 
Priimek, I. ''Naslov: podnaslov''. Izdaja. Kraj: Založba, letnica. Zbirka, številka. ISBN. 

Boyer, R. ''Temelji biokemije''. Ljubljana: Študentska založba, 2005. 
Glick BR in Pasternak JJ. ''Molecular biotechnology: principles and applications of recombinant DNA''. 3. izdaja. Washington: ASM Press, 2003. ISBN 1-55581-269-4. 
Če so avtorji trije, je beseda in med drugim in tretjim avtorjem. Če so avtorji več kot trije, napišemo samo prvega in dopišemo ''et al''. (in drugi, po latinsko). Vse, kar je latinsko, pišemo poševno (npr. tudi imena rastlin in živali, pojme ''in vivo'', ''in vitro'' ipd.).

'''Citiranje člankov:''' 
Priimek, I. Naslov. ''Naslov revije'', letnica, letnik, številka, strani. 
Lartigue, C., Glass, J. I., Alperovich, N., Pieper, R., Parmar, P. P., Hutchison III, C. A., Smith, H. O. in Venter, J. C.
Genome transplantation in bacteria: changing one species to another. ''Science'', 2007, 317, str. 632-638.

Alternativni način citiranja (predvsem v družboslovju) je po pravilih APA, kjer članke citirajo takole: 
Priimek, I. (letnica, številka). Naslov. Naslov revije, strani. 
Lartigue C. ''et al.'' (2007, 317) Genome transplantation in bacteria: changing one species to another. ''Science'', 632-638.

Revija Science uporablja skrajšani zapis: 
C. Lartigue ''et al''. Science 317, 632 (2007) 

V diplomah na FKKT je treba navesti vire tako, da izpišete tudi naslov citiranega dela in strani od-do (ne samo začetne). Navesti morate tudi vse avtorje dela, razen v primeru, ko jih je 10 ali več. Takrat navedite le prvih devet, za ostale pa uporabite okrajšavo in sod. (in sodelavci). Pred zadnjim avtorjem naj bo vedno besedica "in".

'''Citiranje spletnih virov:''' 
Priimek, I. ''Naslov dokumenta''. Izdaja. Kraj: Založnik, letnica. Datum zadnjega popravljanja. [Datum citiranja.] spletni naslov 
strangeguitars. ''On the brink of artificial life''. 6. 10. 2007. [citirano 13. 11. 2007] http://www.metafilter.com/65331/On-the-brink-of-artificial-life 
Navedemo čim več podatkov; pogosto vseh iz pravila ne boste našli.